Добавил:
kiopkiopkiop18@yandex.ru t.me/Prokururor I Вовсе не секретарь, но почту проверяю Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:

Ординатура / Хирургия / @xirurgi_2025 / @xirurgi_2025 - 1279 - файл

.pdf
Скачиваний:
0
Добавлен:
29.08.2026
Размер:
3 Мб
Скачать
https://t.me/medicina_free
кулы воды адсорбируются на гидроксильных группах макромолекул, что сопровождается разрывом водородных связей и изменением меха­нических свойств целлюлозных волокон. Вода поглощается макромо­лекулами, расположенными в аморфных участках волокон, и гидро­ксильными группами, находящимися на поверхности кристаллических участков. Влажность хлопкового волокна зависит от изменения отно­сительной влажности и температуры окружающей среды, с которой волокно соприкасается. С уменьшением влажности хлопковое волокно подсыхает и, наоборот, с увеличением ее – увлажняется. Химически очищенное хлопковое волокно поглощает меньше влаги, чем неочи­щенное. Поглощение влаги волокном во времени протекает неравно­мерно. Сухое волокно сначала очень быстро поглощает влагу, затем этот процесс замедляется.
«Целоформ» - сорбент из хлопковой целлюлозы - вещество белого цвета, порошкообразной мягкой консистенции, гигроскопичное, с раз­мером волокон 20-50 мкм, выгодно отличается от других сорбентов хорошей сорбционной ѐмкостью к биологическим жидкостям (кровь) и биологической инертностью по отношению к тканям организма [24,
76, 89].
Биологическая активность сорбента из хлопковой целлюлозы. Как уже отмечалось выше, разрыв волокон хлопковой целлюлозы в усло­виях компрессионно-сдвигового воздействия приводит к образованию свободно-радикальных фрагментов с концевыми атомами кислорода или углерода (- 0* и – С*). Эти концевые атомы связаны с фрагмен­том β-глюкозы и остальной частью макромолекулы целлюлозы. При взаимодействии с бактериальными клетками эти свободно­радикальные фрагменты могут встраиваться в мембрану клетки с об­разованием ковалентных связей. В результате бактериальная клетка, связанная с макромолекулой, фактически обездвиживается и теряет способность к перемещению и контакту с тканями организма челове­ка. В результате такого обездвиживания и нарушения обменных про­цессов через мембрану бактериальной клетки она погибает, т.е. на­блюдается бактерицидное действие механохимически активированной целлюлозы.
Параллельно может протекать процесс сталкивания движущейся бактериальной клетки, которая не вступила во взаимодействие со сво­бодно-радикальными фрагментами, с иглообразными фрагментами
31
https://t.me/medicina_free
целлюлозы. Это неизбежно будет приводить к разрыву мембран бак­териальных клеток и также их гибели.
В целом бактерицидность механохимически активированной цел­люлозы будет зависеть от этих двух факторов и теоретически мало­предсказуема.
При нанесении «Целоформа» на инфицированную раневую по­верхность может происходить и частичное рассасывание порошка целлюлозы. Ранее указывалось, что макромолекулы целлюлозы, со­держащие фрагменты β-глюкозы не поддаются воздействию пищева­рительных ферментов человека, но тем не менее легко усваиваются в пищеварительном тракте жвачных животных. С одной стороны, сам процесс пережевывания целлюлозных волокон и есть механохимиче­ское их активирование. Но, с другой стороны, бактериальная микро­флора пищеварительной системы жвачных животных обеспечивает расщепление макромолекул целлюлозы с образованием глюкозы. Эти бактерии чрезвычайно распространены в природе и реально приводят к нагноению ран, однако в природе посредством своих ферментов они осуществляют окисление больших количеств целлюлозы мертвых рас­тений и возвращают в атмосферу углекислый газ, необходимый для фотосинтеза. Роль этих гнилостных бактерий очень велика, так как при их отсутствии в природе за очень короткое время накопились бы несоизмеримые количества целлюлозы и исчез бы весь запас углеки­слого газа в атмосфере.
Фермент, вырабатываемый гнилостными бактериями – целлюлаза, гидролизует целлюлозу в целлобиозу, которая далее легко гидролизу­ется до глюкозы. По-видимому, в условиях инфицированных ран именно этот процесс может приводить к рассасыванию порошковой механохимически активированной целлюлозы. Образующаяся целло­биоза также содержит свободный радикал, чем усиливает бактерицид­ные свойства.
Результаты контрольных токсикологических испытаний и морфо­логических исследований. Изучение подострой токсичности проводи-
лось в условиях нанесения порошка «Целоформ» на кожную рану и подкожно подопытным животным – белым крысам. На протяжении всего периода наблюдения не отмечено гибели подопытных живот­ных, изменений внешнего вида, поведения, поедаемости корма, двига­тельной активности по сравнению с контрольной группой животных.
32
https://t.me/medicina_free
При обследовании животных с помощью лабораторных методов ис­следования изменений гематологических и биохимических показате­лей не выявлено [76]. На вскрытии животных макроскопически не вы­явлено патологических изменений внутренних органов и тканей под­опытных животных. Коэффициенты масс внутренних органов под­опытных животных не имели статистически достоверных отличий от аналогичных показателей животных контрольной группы.
По результатам эксперимента на белых крысах с использованием провокационной внутрикожной пробы, сенсибилизирующего действия вытяжки из порошка, о наличии которого судили по реакции деграну­ляции тучных клеток (РДТК), и раздражающего действия на кожу не обнаружено.
После вскрытия животных макроскопически не выявлено патоло­гических изменений внутренних органов и тканей подопытных живот­ных. Коэффициенты масс внутренних органов подопытных животных не имели статистически достоверных отличий от аналогичных показа­телей контрольных животных.
Гистологическое исследование тканевой реакции показало, что во­круг волокон «Целоформа» в глубокой части дермы, жировой клетчат­ке и мышцах образовались гранулемы инородных тел. Изменений во внутренних органах не обнаружено.
Вытяжки из образцов не проявляли гемолитического действия на опытах «ин витро» с изолированными эритроцитами кроликов: гемо­лиз составил 0,2% при допустимом значении менее 2%.
Таким образом, «Целоформ» не токсичен, стерилен, отвечает тре­бованиям нормативной документации [76].
Биоцидные и фунгицидные свойства «Целоформа». Для исследова- ния бактериальной микрофлоры использовался метод «колодцев», ос­нованный на диффузионных свойствах веществ, общепринятый для определения активности антисептических препаратов [76] .
Исследование фунгицидной активности «Целоформа» проводили по ГОСТ 9.051-75 (Метод Б, устанавливающий наличие у компонента фунгицидных и фунгистатических свойств и влияние внешних загряз­нений на грибоустойчивость компонента) [76].
В результате испытаний на наиболее распространенных видах бак­терий установлены бактерицидные свойства «Целоформа» в отноше­нии музейных штаммов Staphylococcus aureus, Staphylococcus
33
https://t.me/medicina_free
epidermidis, Streptococcus pyogenes (в средней степени); Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae, Pseudomonas aeruginosa (в умеренной сте- пени); а также бактериостатические в отношении Bacillus subtilis, Ba­cillus megaterium.
На свежевыделенных клинических штаммах Staphylococcus aureus, Staphylococcus epidermidis, Pseudomonas aeruginosa, Streptococcus faecalis, полученных от больных с внутриротовыми воспалительными
заболеваниями, препарат проявлял слабые бактериостатические свой­ства, на клинических же штаммах Echerichia coli и Proteus spp. бакте­риостатические свойства были более выраженными.
Во всех случаях при выращивании штаммов в течение восьми суток на агаризованной среде не отмечено обрастания нанесенных на среду порций порошка «Целоформ».
При воздействии музейных штаммов грибов Aspergillus niger,
Penicillium tardum, Trichophyton rubrum, Candida albicans, Rhodotorula rubra установлена грибоустойчивость препарата целлюлозы 1-2 балла
(высокая степень), а также и некоторая степень фунгицистатических свойств в отношении плесневых грибов рода Mucor. В отношении па­тогенных клинических штаммов грибов Candida albicans фунгицидных свойств «Целоформ» не проявил, но адгезии грибных клеток на волок­нах не отмечено.
При хранении образцов «Целоформа» изучалась их общая обсеме­ненность. В течение всего срока наблюдения (1 месяц при 30°С) общая обсемененность бактериальной и грибковой микрофлорой не увеличи­лась. В контрольном варианте на фильтровальной бумаге общая обсе­мененность увеличилась на 50% [76].
4.1.2. Характеристика клинических групп
Проведен ретроспективный анализ историй болезни 285 больных ООГВЗ (мужчин – 147, женщин – 138), находившихся на лечении в отделении челюстно-лицевой хирургии больницы скорой медицин­ской помощи №1 г. Казани в 2006-2009 гг. Для оценки эффективности лечения были выбраны больные одонтогенными поверхностными флегмонами одной области или пространства (поднижнечелюстные, подподбородочные, поджевательные, крыловидно-нижнечелюстные) в возрасте 20-49 лет (мужчин – 55, женщин - 47) (табл. 4.1 и 4.2), всего
34
Возрастные
группы
Мужчины
Женщины
Оба пола
абс. % абс.
%
абс.
%
20 - 29 лет
13
22,2
7
17,8
20
20,5
30 - 39 лет
24
40,0
18
42,9
42
41,1
40 - 49 лет
23
37,8
17
39,3
40
38,4
Итого
60
100
42
100
102
100
Возрастные
группы
Мужчины
Женщины
Оба пола
абс. % абс.
%
абс.
%
20 - 29 лет
13
65,0
7
35,0
20
100
30 - 39 лет
24
57,1
18
42,9
42
100
40 - 49 лет
23
57,5
17
42,5
40
100
Итого
60
58,8
41,2
38,4
102
100
https://t.me/medicina_free
102 человека, из которых 60 пациентов составили основную (ОГ) и 42 – группу сравнения (ГС). Эффективность лечения оценивали по субъ­ективным ощущениям больных, клиническим наблюдениям и резуль­татам гистологического исследования.
Таблица 4.1
Распределение исследуемых лиц по возрастным группам
в зависимости от пола
Таблица 4.2
Распределение исследуемых лиц внутри возрастных групп
в зависимости от пола
Для изучения структуры и сорбционных свойств сырья (хлопковой хирургической ваты) и модифицированной хлопковой целлюлозы
4.2. Методы исследования
35
https://t.me/medicina_free
(МХЦ) были использованы следующие методы исследования: микро­скопический, гравиметрический, рентгенофазовый.
4.2.1 Атомно-силовая микроскопия
Использовался атомно-силовой микроскоп типа Multi mode V фир­мы «Veeco» (США) – увеличение 400х. Для оценки состояния поверх­ности нанесенных покрытий осуществляли микрофотографирование с увеличением 150х на специальной установке с микроскопом типа МБА в отраженном свете. Общий вид установки представлен на рис. 4.3. Микрофотографирование проводили на цифровую фотокамеру.
Рис. 4.3. Установка для микрофотографирования поверхности
Атомно-силовое сканирование поверхности осуществляли с помощью атомно-силового микроскопа с платиновой иглой. Схема микроскопа представлена на рис. 4.4.
образцов
36
https://t.me/medicina_free
Рис. 4.4. Схема атомно-силового микроскопа
Принцип работы атомного силового микроскопа состоит в сле-
дующем. Очень тонкая игла-зонд с острием толщиной в несколько атомов перемещается над поверхностью объекта на расстоянии поряд­ка нескольких нанометров. В соответствии с законами квантовой ме­ханики возникает «туннельный эффект»: электроны преодолевают барьер между объектом и иглой, и в цепи «образец–игла» начинает течь ток. Величина его чрезвычайно сильно зависит от расстояния ме­жду концом иглы и поверхностью объекта, так сильно, что даже при уменьшении промежутка всего на один нанометр ток возрастает при­мерно на порядок. Поэтому, следя за величиной тока при перемеще­нии иглы вдоль поверхности, можно изучать ее рельеф. Иглу изготав­ливают из платиновой проволочки, откусывая ее маникюрными нож­ницами или специальными кусачками с режущими поверхностями из твердого сплава.
4.2.2. Гравиметрический метод исследования
«Целоформ» испытан нами на сорбционную емкость по отношению к воде и крови. Определение сорбционной емкости проводили грави­метрическим методом. Навеску порошка сорбента (1 г) помещали в
37
https://t.me/medicina_free
шоттовский стаканчик объемом 20 мл. В чашку Петри наливали жид­кость в количестве, чтобы ее поверхность была выше стеклянного фильтра шоттовского стаканчика на несколько миллиметров. Предва­рительно стаканчик с пробой порошка взвешивали на аналитических весах. Затем его погружали в жидкость. Происходило смачивание
нижнего слоя порошка, а за счет капиллярных сил жидкость быстро смачивала весь порошок.
Опыты проводили следующим образом. Взвешивали шоттовский стаканчик вместе с порошком сорбента на аналитических весах и по­сле контакта его с жидкостью каждые 5 минут извлекали стаканчик из жидкости, ставили на лист фильтровальной бумаги для удаления из­лишков несорбированной жидкости и снова взвешивали. Разность веса стаканчика после сорбции и первоначального веса стаканчика с сухим порошком сразу давала величину сорбционной емкости порошка в граммах жидкости на 1 г порошка.
4.2.3. Рентгенофазовый метод исследования
Рентгенофазовый анализ образцов «Целоформа» проводили на ди­фрактометре «ДРОН-УМ-1» с CuKa излучением при Fe – фильтре и следующих параметрах съемки: ширина первой и второй щели – 0,5 мм, ширина щели перед счетчиком – 0,5 мм, масштаб дифрактограммы – 10 соответствует 12 мм. Плоскость образца была установлена на оси гониометра с точностью до 0,1 мм, погрешность при определении ну­ля счетчика не превышала 1 мм.
4.2.4. Метод электронного парамагнитного резонанса
С использованием спектрометра Bruker ESP300 (Германия) изучали особенности состава сорбента «Целоформ». Для этого все измеряемые образцы сырья (хирургическая вата) и сорбента помещали в особо чистые ампулы, сертифицированные фирмой-изготовителем спектро­метра ЭПР. Отбор проб осуществлялся исходя из размера рабочей об­ласти ампулы спектрометра. В указанном объеме образцы должны иметь гомогенную структуру, в случае ярко выраженной гетерогенной структуры, требуется разделение образца на гомогенные области, вы­ходящее за рамки данной методики. Образцы должны иметь низкое
38
22 33
220
 
https://t.me/medicina_free
нерезонансное поглощение в области СВЧ-спектрометра. Порошок в ампулу насыпался путем вдавливания открытого конца ампулы в по­рошкообразный образец. После заполнения рабочего объема ампулы в нее вставляли кварцевую вату (из ОСЧ-кварца) и с помощью длинного стеклянного стержня утрамбовывали порошок в ампуле.
При проведении измерений соблюдали следующие условия:
- температура окружающего воздуха 213 ºС.
- относительная влажность не более 80%
- напряжение питания переменного тока
- частота питающей сети переменного тока 501 Гц.
При проведении измерений выполняли следующие операции, сле­дуя указаниям руководства пользователя:
1. Помещали ампулу с образцом в резонатор спектрометра и на-
страивали СВЧ-тракт.
2. Выбирали следующие настройки:
начальное магнитное поле 100 Гс (минимально возможное значе- ние для ЭПР спектрометра);
конечное магнитное поле 10000 Гс (максимально возможное зна- чение для ЭПР спектрометра);
время развертки примерно 10 мин;
величина модуляции 10 Гс (максимально возможное значение для
ЭПР спектрометра);
усиление 60 dB;
постоянная времени 80 мс.
3. Записывали спектр ЭПР.
4. Выделяли области спектра ЭПР, где наблюдался сигнал.
5. Записывали данные области, изменяя параметры спектрометра
для получения неискаженного сигнала ЭПР с максимальным отноше­нием сигнал/шум (зависят от ширины и интенсивности линий).
Линии спектра ЭПР для спектрометров, работающих в стационар­ном режиме представляют собой производную резонансного поглоще­ния ЭПР (рис. 4.5, красная линия).
В.
39
https://t.me/medicina_free
Рис. 4.5. Характерная линия спектра ЭПР для спектрометров,
работающих в стационарном режиме
Из записанной линии спектра ЭПР можно определить три первич­ных параметра парамагнитного центра: g-фактор, пиковую интенсив­ность I и пиковую ширину H. Для этого соединяют горизонтальной линией области спектра с минимальным сигналом ЭПР (тонкая сплошная черная линия на рис. 1). Пересечение записанной линии спектра ЭПР с этой линией даст значение положения линии спектра ЭПР - H0 . Затем из экстремумов записанной линии спектра ЭПР опус­кают две вертикальные линии (тонкие пунктирные черные линии на рисунке 1). Измеряя расстояние между ними по горизонтали, опреде­ляют пиковую ширину H. А измеряя расстояние между ними по вер­тикали, определяют пиковую интенсивность I. Следует учитывать, что не все спектрометры учитывают усиление прибора при записи спектра ЭПР, в случае такого спектрометра параметр I необходимо умножить на коэффициент усиления спектрометра.
Зная значения положения линии спектра ЭПР H0 и частоты спек­трометра , необходимо вычислить g-фактор по формуле
40