- •Практикум по нормальной физиологии
- •Часть I
- •Введение
- •Вопросы для подготовки:
- •Показатели системы крови взрослого человека (по данным г.П. Матвейкова, 1986; а.И. Воробьева, 2005 г.)
- •Показатели системы крови у детей различного возраста
- •Лабораторные работы:
- •1. Подсчёт количества эритроцитов в периферической крови человека пробирочным методом по Николаеву
- •2. Подсчёт количества лейкоцитов в периферической крови человека пробирочным методом по Николаеву
- •3. Приготовление мазков и подсчет лейкоцитарной формулы в периферической крови человека.
- •Движение мазка
- •Движение мазка
- •Занятие № 2: Основные константы крови и механизмы их саморегуляции. Клинико-физиологические методы исследования крови. Виды и соединения гемоглобина. Скорость оседания эритроцитов.
- •Вопросы для подготовки:
- •Расчет индексов эритроцитов.
- •Расчет кислородной ёмкости крови.
- •Определение скорости оседания эритроцитов
- •Изучение осмотической резистентности эритроцитов.
- •Анализ различных видов гемолиза.
- •Решение ситуационных задач: анализ гемограмм.
- •13. Определение группы крови и резус-факторной принадлежности методом цоликлонов.
- •14. Определение свертываемости крови по способу Бюркера
- •Методы исследования физиологических функций и образцы ситуационных задач
- •Вопросы для подготовки:
- •Оформить в протоколе:
- •Лабораторные работы:
- •1. Механизм дыхания. Объёмы и ёмкости лёгких. Влияние радиуса просвета дыхательных путей на лёгочную вентиляцию (Виртуальный физиологический эксперимент)
- •2. Влияние давления в плевральной полости на вентиляцию лёгких (Виртуальный физиологический эксперимент)
- •3. Влияние сурфактанта на вентиляцию лёгких (Виртуальный физиологический эксперимент)
- •Вычисление величины должной жизненной ёмкости легких (джел)
- •Спирометрия: определение величины жизненной емкости легких и ее составных частей.
- •6. Пневмотахометрия.
- •7. Пневмография
- •8. Спирография.
- •Занятие № 2: Транспорт газов кровью. Функциональная система транспорта кислорода. Регуляция дыхания.
- •Вопросы для подготовки:
- •Оформить в протоколе:
- •О формить в протоколе:
- •Лабораторные работы:
- •9. Определение минутного объема дыхания в покое и после мышечной нагрузки
- •10. Определение максимальной минутной вентиляции легких
- •После максимального вдоха и выдоха (Пробы Штанге и Сабреса-Генча)
- •6. Решение ситуационных задач. Методы исследования физиологических функций и образцы ситуационных задач
- •Профильные задачи для студентов лечебного факультета
- •Профильные задачи для студентов педиатрического факультета
- •Список вопросов для коллоквиума по теме «Дыхание»
- •Занятие № 1: Физиологические свойства сердечной мышцы. Нагнетательная функция сердца Нейрогуморальная регуляция деятельности сердца
- •Вопросы для подготовки:
- •Оформить:
- •Лабораторные работы:
- •1. Воздействие электрических стимулов на сердечную деятельность (Виртуальный физиологический эксперимент)
- •2. Воздействие медикаментов и химических медиаторов на деятельность сердца (Виртуальный физиологический эксперимент)
- •3. Воздействие возбуждения блуждающего нерва на сердечную деятельность (Виртуальный физиологический эксперимент)
- •4. Опыт станниуса (Виртуальный физиологический эксперимент)
- •5. Глазо-сердечный рефлекс данини-ашнера.
- •Занятие № 2: Современные клинико-физиологические методы исследования звуковых и электрических явлений сердца. Аускультация сердца. Электрокардиография и ее значение.
- •Вопросы для подготовки:
- •Лабораторные работы:
- •6. Аускультация сердца. (выслушивание тонов сердца)
- •7. Электрокардиография.
- •Регистрация и анализ электрокардиограммы при помощи системы Biopac Student Lab
- •Вопросы для подготовки:
- •Оформить:
- •Графическая регистрация артериального пульса (сфигмограмма). Лабораторные работы:
- •8. Влияние давления и вязкости жидкости, а также радиуса и длины сосуда на движение жидкости по сосуду (Виртуальный физиологический эксперимент)
- •9. Влияние минутного сердечного выброса, периферического сопротивления и эластичности сосудов на артериальное давление (Виртуальный физиологический эксперимент)
- •10. Воздействие адреналина, ацетилхолина, атропина и адреналина на основе атропина на артериальное давление (Виртуальный физиологический эксперимент)
- •11. Измерение артериального давления по способу короткова у человека.
- •Занятие № 4: Саморегуляция кровяного давления. Регионарные особенности кровообращения. Механизмы формирования системной гемодинамики. Регуляция работы сердечно-сосудистой системы.
- •Вопросы для подготовки:
- •Оформить:
- •Лабораторные работы:
- •12. Определение систолического (ударного) и минутного объемов крови расчетным методом
- •13. Влияние физической нагрузки на частоту пульса.
- •Ход работы:
- •15. Функциональные пробы: мартина, шеллонга, гориневского
- •Орто-клино-статическая проба по Шеллонгу
- •Клино-статическая проба с физической нагрузкой
- •Исследование ортостатического рефлекса.
- •Исследование клиностатического рефлекса.
- •Темы рефератов
- •Методы исследования физиологических функций и образцы ситуационных задач
- •Профильные задачи для студентов лечебного факультета
- •Профильные задачи для студентов педиатрического факультета
- •Для заметок:
- •Список вопросов для коллоквиума по теме «Кровообращение»
- •Занятие № 1: Функции органов пищеварения. Методы исследования и общие принципы регуляции пищеварительной системы. Пищеварение в полости рта, желудка и 12-перстной кишки
- •Вопросы для подготовки:
- •2. Демонстрация действия липазы поджелудочной железы в зависимости от наличия или отсутствия жёлчи (Виртуальный физиологический эксперимент)
- •3. Влияние уровня рн на действие пепсина (Виртуальный физиологический эксперимент)
- •Роль желудочного сока в процессах протеолиза.
- •Занятие № 2: Пищеварение в тонком и толстом кишечнике. Понятие о пищевом центре. Функциональная система питания
- •Вопросы для подготовки:
- •Оформить:
- •Лабораторные работы:
- •Опыт мембранного (пристеночного) пищеварения (демонстрация).
- •Методы исследования физиологических функций и образцы ситуационных задач
- •Профильные задачи для студентов педиатрического факультета
- •Темы рефератов
- •Дополнительной:
- •Практикум по нормальной физиологии
- •Часть I
- •Сдано в набор . Подписано в печать .
3. Приготовление мазков и подсчет лейкоцитарной формулы в периферической крови человека.
Все лейкоциты делятся на две группы: гранулоциты и агранулоциты. К гранулоцитам относятся: базофилы, эозинофилы, нейтрофилы. Агранулоциты: лимфоциты и моноциты.
ГРАНУЛОЦИТЫ |
АГРАНУЛОЦИТЫ |
|||||
базофилы |
эозинофилы |
нейтрофилы |
лимфоциты |
моноциты |
||
юные |
п/я |
с/я |
||||
до 1% |
1-5% |
0-1% |
2-5% |
45-70% |
20-40% |
2-10% |
Абсолютное (количественное) содержание лейкоцитов называется лейкоцитарный профиль. Процентное соотношение разных форм лейкоцитов называется лейкоцитарной формулой (лейкограммой). Изменение её свидетельствуют о заболевании. Большое значение для диагностики имеет индекс регенерации (сдвига): Ир = (ю+п/я) ∕ с/я = 0,05-0,1. При увеличении молодых форм (Ис>0,1) говорят о сдвиге влево, при уменьшении Ис<0,05 – о сдвиге вправо.
Оснащение: смесь Никифорова, предметное и покровное стекла, марлевые салфетки, донорская кровь, краска Романовского-Гимза, микроскоп, иммерсионное масло, счетчик 11-клавишный.
Ход работы: Мазок готовится на обезжиренном стекле с помощью покровного или предметного стекла. Чистые стекла хранятся до употребления в смеси Никифорова (эфир со спиртом в отношении 1:1) в банке с притертой пробкой. Стекла вынимают пинцетом и тщательно протирают салфеткой. Кровь берут с помощью скарификатором. Большим и средним пальцами левой руки берут предметное стекло за ребро и наносят каплю крови на край стекла. Правой рукой берут покровное стекло, ставят его узким краем рядом с каплей крови так, чтобы она растеклась в углу, образованном двумя стеклами. Покровным стеклом под углом 45° проводят по предметному стеклу, растягивая каплю тонким слоем (не толкать ее вперед, иначе кровь не ляжет ровным слоем). Хорошо сделанный мазок должен быть достаточно тонким, немного уже и короче предметного стекла, иметь желтоватый цвет и просвечивать. Высушивают мазок на воздухе, не подогревая. По середине высушенного мазка надписывают имя (фамилию) исследуемого. Мазок фиксируют в смеси Никифорова 10 минут, затем вынимают и сушат в вертикальном положении.
Высушенный мазок окрашивают краской Романовского из расчета 3 капли краски на 1 мл дистиллированной воды. Мазок покрывают тонким слоем краски и оставляют на 30 минут. Затем мазок промывают под проточной водой и сушат.
Смотрят под микроскопом при увеличении 90 с иммерсионным маслом.
Подсчитывают 100 форменных элементов белой крови и результат заносят в таблицу.
Движение мазка
Результаты работы:
базофилы |
эозинофилы |
нейтрофилы |
лимфоциты |
моноциты |
||
юные |
п/я |
с/я |
||||
|
|
|
|
|
|
|
Вывод:
4. ПРИГОТОВЛЕНИЕ МАЗКОВ И ПОДСЧЕТ КОЛИЧЕСТВА ТРОМБОЦИТОВ В ПЕРИФЕРИЧЕСКОЙ КРОВИ ЧЕЛОВЕКА.
Тромбоциты – красные кровяные пластинки (бляшки Бицецеро); полиморфные бесцветные клетки, образующиеся из мегакариоцитов, диаметром 2-5 к, живут 8-11 дней. В норме 200-400•109/л. У новорожденных концентрация тромбоцитов такая же, как у взрослых; к 7-9 дню снижается до 164-178•109/л; к концу второй недели – как у взрослых. Увеличение количества – тромбоцитоз, уменьшение количества – тромбоцитопения.
Оснащение: смесь Никифорова, предметное и покровное стекла, марлевые салфетки, донорская кровь, капилляр, краска Романовского-Гимза, микроскоп, иммерсионное масло, счетчик 11-клавишный.
Ход работы: Мазок готовится на обезжиренном стекле с помощью покровного или предметного стекла. Чистые стекла хранятся до употребления в смеси Никифорова (эфир со спиртом в отношении 1:1) в банке с притертой пробкой. Перед взятием крови стекла вынимают пинцетом и тщательно протирают салфеткой. На палец, обработанный спиртом, наносится капля 14% р-ра МgSО4, через которую делается прокол скарификатором. Большим и средним пальцами левой руки берут предметное стекло за ребро и наносят каплю крови на край стекла. Правой рукой берут покровное стекло, ставят его узким краем рядом с каплей крови так, чтобы она растеклась в углу, образованном двумя стеклами. Покровным стеклом под углом 45° проводят по предметному стеклу, растягивая каплю тонким слоем (не толкать ее вперед, иначе кровь не ляжет ровным слоем). Хорошо сделанный мазок должен быть достаточно тонким, немного уже и короче предметного стекла, иметь желтоватый цвет и просвечивать. Высушивают мазок на воздухе, не подогревая. По середине высушенного мазка надписывают имя (фамилию) исследуемого. Мазок фиксируют в смеси Никифорова 10 минут, затем вынимают и сушат в вертикальном положении.
Высушенный мазок окрашивают краской Романовского (для подсчета тромбоцитов концентрация краски вдвое больше, чем для окраски мазка для подсчета лейкоцитарной формулы). Мазок покрывают тонким слоем краски и оставляют на 45 минут. Затем мазок промывают под проточной водой и сушат.
Смотрят под микроскопом при увеличении 90 с иммерсионным маслом, используя окошечко по Fonio. Подсчет количества тромбоцитов производится на 1000 эритроцитов.
Например: эритроцитов – 30, тромбоцитов – 2 и т.д. Подсчитывают на 1000 эритроцитов количество тромбоцитов и рассчитывают по правилу пропорции:
1000 эритроцитов – А тромбоцитов
5•1012 эритроцитов – Х,
где А – найденное количество тромбоцитов
Х = 5•1012•А/1000
