
- •1. Медицинская микробиология. Предмет изучения, цели и задачи
- •2. Санитарная микробиология. Предмет изучения, цели и задачи.
- •3. Клиническая микробиология: цели и задачи
- •4. Методы исследования в микробиологии. Их диагностическая значимость
- •5. Биотехнологии. Методы, цели и задачи
- •6. Систематика и номенклатура микроорганизмов. Принципы классификации бактерий. Основные формы бактерий. Размеры
- •7. Световой микроскоп, микроскопия с иммерсией. Разрешающая способность. Применение. Принципы окраски по Граму. Этапы приготовления микропрепарата.
- •8. Характерные биологические свойства прокариотов и эукариотов. Структура бактериальной клетки. Обязательные структурные элементы бактериальной клетки, их роль.
- •9. Необязательные структурные элементы- включения, жгутики, капсула, пили, споры. Их функции. Примеры бактерий. Методы выявления.
- •11. Влияние физических факторов на микроорганизмы- ультразвук, температура, высушивание, лучистая энергия. Лиофильное высушивание.
- •13. Выделение чистой культуры аэробов. Биологических методов создания анаэробиоза.
- •14. Механизмы питания прокариотов. Типы питания бактерий. Классификация питательных сред. Примеры.
- •15. Простые и сложные методы окраски микроорганизмов. Дифференциальные методы окраски, практическое применение. Примеры.
- •16. Рост, размножение, фазы развития микробной популяции. Культуральные свойства бактерий.
- •17. Пигменты (основные представители пигментообразующих бактерий) их функции. Примеры.
- •18. Основные принципы культивирования микробов. Методы изучения ферментов бактерий. Практическое использование
- •19. Понятие чистой культуры, штамме, биоваре, сероваре, фаговаре, клоне микробов
- •20. Антигены микроорганизмов: локализация, химическая природа.
- •21. Получение микробных антигенов, практическое применение.
- •22. Антитела: определение, физико-химические свойства антител. Аффинность, авидность антител.
- •23. Бактериофаги. Биологические свойства. Вирулентный бактериофаг. Практическое применение.
- •24. Бактериофаги. Биологические свойства. Умеренный бактериофаг. Лизогения. Конверсия фагом.
- •25. Виды лекарственной устойчивости: основные механизмы, пути распространения. Примеры.
- •26. Химиотерапевтические препараты: определение, основные химические группы, примеры препаратов из каждой группы.
- •27. Механизм действия антибиотиков, спектр, примеры.
- •28. Методы определения чувствительности микроорганизмов к антибиотикам.
- •30. Нормальная микрофлора тела человека: определение, формирование, значение. Синдром раздраженного кишечника: понятие, причина, принцип микробиологической диагностики.
- •31. Представители микробиоценозов основных биотопов: конъюнктива глаза, слизистая оболочка носа, носоглотка
- •32. Представители микробиоценозов основных биотопов: ротовая полость, пищевод, желудок, толстый кишечник, органы мочеполовой системы
- •33. Инфекция: понятие, условия возникновения, динамика развития, инфекция, исходы
- •34. Микробоносительство: определение, виды, примеры. Диагностика микробоносительства
- •35. Понятия: патогенность, вирулентность микроорганизмов. Классификация микроорганизмов по патогенности, примеры
- •36. Понятие патогенность, вирулентность микроорганизмов. Факторы, влияющие на вирулентность возбудителей. Факторы патогенности бактерий, повреждающие организм хозяина, примеры.
- •37. Аттенуированные штаммы: методы получения, использование
- •38. Факторы вирулентности. Микробные токсины и их свойства. Количественное определение вирулентности. Аттенуация
- •39. Токсинемия, примеры токсинемических инфекций. Принцип специфической терапии.
- •40.Понятие инфицирующая доза. Входные ворота инфекции, Примеры. Распространение возбудителей в организме. Динамика развития и периоды инфекционного процесса.
- •41. Манифестные и субклинические формы инфекции. Микробоносительство: определение, виды, примеры. Множественная инфекция
- •42. Принципы классификации вирусов.
- •43.Морфология и физиология вирусов, отличительные особенности. Структура вириона
- •44. Типы взаимодействия вируса с клеткой.
- •45. Методы культивирования вирусов, принципы их индикации и идентификации
- •46. Формы вирусной инфекции
- •47. Микробиологические методы исследования воздуха лпу
- •48. Микробиологические методы исследования почвы
- •49. Вода как фактор распространения возбудителей инфекций. Микробиологические критерии качества питьевой воды
- •50. Санитарно-микробиологическое исследование молока и молочных продуктов. Критерии микробиологической безопасности
- •51.Санитарно_микробиологическое исследование мяса и мясных продуктов. Критерии микробиологической безопасности
- •52.Санитарно-микробиологическое исследование рыбы. Критерии микробиологической безопасности. Контроль качества свежей, охлажденной, мороженой рыбы и морских беспозвоночных
- •53. Санитарно-показательные мо: понятие, виды, требования, предъявляемые к санитарно-показательным мо
- •55. Внутрибольничные инфекции. Роль макроорганизма и внешней среды в возникновении госпитальных штаммов и госпитальной инфекции. Меры профилактики.
- •56.Госпитальные штаммы: понятие, характерные признаки, условия формирования
- •57. Спектр возбудителей внутрибольничных инфекций.
- •58.Объекты санитарно-микробиологического исследования на стерильность. Методы отбора проб и их исследование. Интерпретация результатов санитарно-микробиологических исследований на стерильность
- •59.Стерилизация.Методы стерилизации — основные режимы, объекты стерилизации, методы контроля. Преимущества и недостатки
- •60. Дезинфекция. Химические группы дезинфицирующих веществ, механизм их действия на микроорганизмы.
58.Объекты санитарно-микробиологического исследования на стерильность. Методы отбора проб и их исследование. Интерпретация результатов санитарно-микробиологических исследований на стерильность
К основным объектом санитарно микробиологических исследований относят объекты внешней среды-почву, воду, воздух, пищевые продукты, ЛПУ, аптеки и ЛС .
Следует помнить о следующих основных принципов:
-
пробы следует отбирать с соблюдением всех необходимых условий, регламентированных для каждого исследуемого объекта. исследование необходимо проводить быстро, при невозможности немедленного проведения анализа материал сохраняет в холодильнике не дольше 6-8 часов.
-
для получения объективных результатов следует отбирать несколько проб из разных участков объектов.
-
более адекватные результаты можно получить проведением повторных отборов и анализов проб.
-
при проведении анализов следует использовать только стандартный и унифицированные методы исследования.
-
в работе необходимо использовать комплекс тестов-прямых появляющихся патогенной и косвенных указывающих на загрязнения объектов окружающей среды выделение имя человека и животных и его в степени.
-
интерпретацию результатов санитарно микробиологических исследований следует проводить с учетом других гигиенических показателей органолептической химических физических и так далее.
59.Стерилизация.Методы стерилизации — основные режимы, объекты стерилизации, методы контроля. Преимущества и недостатки
Стерилизация — полное уничтожение вегетативных форм МО и их спор в различных материалах.
Физические методы:
1) прокаливание в пламени (бактериальная петля, игла, пинцет)
2) Стерилизация сухим паром
(в воздушном стерилизаторе, 180гр 60 мин или 160 гр 150 мин)
— стеклянная посуда, пипетки, вазелиновое масло.
3) Стерилизация паром под давлением
(в паровом стерилизаторе, автоклаве, 120 гр 45 мин 1 атм или 130 гр 20 мин 2 атм)
— простые питательные среды, заразный материал, изделия из стекла, металлов, резины, пластика, халаты, белье
4) Стерилизация текучим паром
(в паровом стерилизаторе с открытым выпускным краном 100 гр 3 дня по 1 ч)
— молоко, среды и лекарства с углеводами
5) Щадящее прогревание
(водяная баня с терморегулятором — 56-58 гр первый день 2 ч, 2-5 дни 1ч)
- белковые жидкости
6) Стерилизация УФ-лучами
(длина волны 260-300 мкм)
- для стерилизации воздуха в помещениях
Существует три основных метода стерилизации: тепловой, лучевой, химической.
Тепловая стерилизация основана на чувствительности микробов к высокой температуре. При 60 "С и наличии воды происходит денатурация белка, деградация нуклеиновых кислот, липидов, вследствие чего вегетативные формы микробов погибают. Споры, содержащие очень большое количество воды в связанном состоянии и обладающие плотными оболочками, инактивируются при 160—170 °С. Для тепловой стерилизации применяют, в основном, сухой жар и пар под давлением.
Стерилизацию сухим жаром осуществляют в воздушных стерилизаторах (прежнее название — «сухожаровые шкафы или печи Пастера»). Воздушный стерилизатор представляет собой металлический плотно закрывающийся шкаф, нагревающийся с помощью электричества и снабженный термометром. Обеззараживание материала в нем производят, как правило, при 160 °С в течение 120 мин. Однако возможны и другие режимы: 200 °С - 30 мин, 180 "С - 40 мин.
Стерилизуют сухим жаром лабораторную посуду и другие изделия из стекла, инструменты, силиконовую резину, т. е. объекты, которые не теряют своих качеств при высокой температуре.
Большая часть стерилизуемых предметов не выдерживает подобной обработки, и поэтому их обеззараживают в паровых стерилизаторах.
Обработка паром под давлением в паровых стерилизаторах (старое название — «автоклавы») является наиболее универсальным методом стерилизации.
Паровой стерилизатор (существует множество его модификаций) — металлический цилиндр с прочными стенками, герметически закрывающийся, состоящий из водопаровой и стерилизующей камер. Аппарат снабжен манометром, термометром и другими контрольно-измерительными приборами. В автоклаве создается повышенное давление, что приводит к увеличению температуры кипения.
Поскольку кроме высокой температуры на микробов оказывает воздействие и пар, споры погибают уже при 120 °С. Наиболее распространенный режим работы парового стерилизатора: 2 атм — 121 °С — 15—20 мин. Время стерилизации уменьшается при повышении атмосферного давления, а, следовательно, и температуры кипения (136 °С — 5 мин). Микробы погибают за несколько секунд, но обработку материала производят в течение большего времени, так как, во-первых, высокая температура должна быть и внутри стерилизуемого материала и, во-вторых, существует так называемое поле безопасности (рассчитанное на небольшую неисправность автоклава). Стерилизуют в автоклаве большую часть предметов: перевязочный материал, белье, коррозионно-устойчивые металлические инструменты, питательные среды, растворы, инфекционный материал и т. д. Одной из разновидностей тепловой стерилизации является дробная стерилизация, которую применяют для обработки материалов, не выдерживающих температуру выше 100 °С, например, для стерилизации питательных сред с углеводами, желатина. Их нагревают в водяной бане при 80 °С в течение 30—60 мин. В настоящее время применяют еще один метод тепловой стерилизации, предназначенный специально для молока — ультравысокотемпературный (УВТ): молоко обрабатывают в течение нескольких секунд при 130—150 °С.
Химическая стерилизация предполагает использование токсичных газов: оксида этилена, смеси ОБ (смеси оксида этилена и бромистого метила в весовом соотношении 1:2,5) и формальдегида. Эти вещества являются ал-килирующими агентами, их способность в присутствии воды инактивировать активные группы в ферментах, других белках, ДНК и РНК приводит к гибели микроорганизмов. Стерилизация газами осуществляется в присутствии пара при температуре от 18 до 80 °С в специальных камерах. В больницах используют формальдегид, в промышленных условиях — оксид этилена и смесь ОБ. Перед химической стерилизацией все изделия, подлежащие обработке, должны быть высушены. Этот вид стерилизации небезопасен для персонала, для окружающей среды и для пациентов, пользующихся простерилизованными предметами (большинство стерилизующих агентов остается на предметах). Однако существуют объекты, которые могут быть повреждены нагреванием, например, оптические приборы, радио- и электронная аппаратура, предметы из нетермостойких полимеров, питательные среды с белком и т. п., для которых пригодна только химическая стерилизация. Например, космические корабли и спутники, укомплектованные точной аппаратурой, для их деконтаминации обезвреживают газовой смесью (оксид этилена и бромистого метила). В последнее время в связи с широким распространением в медицинской практике изделий из термолабильных материалов, снабженных оптическими устройствами, например, эндоскопов, стали применять обезвреживание с помощью химических растворов. После очистки и дезинфекции прибор помещают на определенное время (от 45 до 60 мин) в стерилизующий раствор, затем прибор должен быть отмыт стерильной водой. Для стерилизации и отмывки используют стерильные емкости с крышками. Простерилизованное и отмытое от стерилизующего раствора изделие высушивают стерильными салфетками и помещают в стерильную емкость. Все манипуляции проводят в асептических условиях и в стерильных перчатках. Хранят эти изделия не более 3 суток.
Контроль качества стерилизации является одним из наиболее важных мероприятий. Физический метод контроля работы стерилизаторов заключается в измерении таких параметров, как температура, давление и время стерилизации. Любое отклонение от стандартных режимов стерилизации является сигналом для оператора о вероятном сбое аппаратуры. Химический метод контроля заключается в регистрации изменения цвета или физических свойств индикаторов, использующихся для контроля времени экспозиции и условий стерилизации. Наиболее важным методом контроля качества стерилизации является биологический метод. Центры по контролю и профилактике заболеваний рекомендуют проводить контроль работы паровых стерилизаторов в стационарах как минимум 1 раз в неделю. В качестве биологических индикаторов в воздушных стерилизаторах используются споры Bacillus stearothermophilus, в газовых стерилизаторах - споры Bacillus subtilus (биовары niger или globigii). Споровый биологический контроль необходимо проводить при каждой загрузке стерилизатора «критическими» предметами. Критические инструменты и сосудистые катетеры не должны использоваться до получения отрицательного результата спорового теста. В идеале зона хранения стерильных предметов должна находиться рядом со стерилизационной, при этом стерильные изделия должны быть защищены от пыли, влаги, насекомых, паразитов, перепадов температуры и влажности. Стерильные изделия должны быть разложены таким образом, чтобы защитить упаковку от повреждений, изломов, сдавления и проколов. «Сроком годности» называется время, в течение которого изделия сохраняют стерильность. По различным данным, срок годности измеряется от 2 дней до неопределенного времени, однако в большинстве исследований не учитывался тип упаковочного материала и условия хранения. Потеря стерильности зависит от условий хранения и практически не зависит от времени. Для транспортировки стерильных инструментов в операционную и другие отделения стационара необходимо обеспечить дополнительное покрытие, защищающее от пыли, которое можно легко удалить перед входом в чистую зону. Все изделия перед стерилизацией подвергаются предстерилизационной очистке. При стерилизации физическими методами (паровым, воздушным) изделия, как правило, стерилизуют упакованными в упаковочные материалы, разрешенные в установленном порядке к промышленному выпуску и применению в России. При паровом методе могут применяться стерилизационные коробки без фильтров и с фильтром. При воздушном методе, а также при паровом и газовом методах допускается стерилизация инструментов в неупакованном виде.