- •Гоу впо «владивостокский государственный медицинский универсистет федерального агентства по здравоохранению и социальному развитию»
- •1. Тема: Организация, оборудование, режим микробиологической лаборатории. Морфология и структура бактериальной клетки.
- •3. Учебная цель:
- •4. Задачи обучения:
- •4.1. Студент должен знать:
- •5. Этапы проведения занятия
- •6. Ориентировочная основа действия (оод) для проведения самостоятельной деятельности студентов (сдс) в учебное время:
- •7. Управление дидактическим процессом в учебное время.
- •9. Задание на самоподготовку.
- •9.1. Вопросы для повторения, необходимые для успешного усвоения данной темы (истоки знаний):
- •Способы фиксации мазков из микробов и смешанного материала
- •Ориентировочная окраска бактерий простыми методами.
- •Микроскопия препарата с иммерсионным объективом
- •10. Рекомендуемая литература
Способы фиксации мазков из микробов и смешанного материала
Фиксация необходима для инактивации бактерий и прикрепления (фиксации) их к стеклу, предотвращения аутолизиса клеток и улучшения восприятия красителя.
а) Самым распространённым методом фиксации бактерий считается обработка жаром, что осуществляется путём трёхкратного проведения препарата мазком кверху через пламя спиртовки или газовой горелки. Препарат находится в пламени спиртовки З секунды. После чего препараты из бактерий окрашиваются разными способами. Метод применим при работе с чистой культурой микробов.
б) Фиксация химическими веществами используется для выявления и дифференциации структурных элементов: жгутиков, протоплазмы, нуклеоида, оболочки, при работе со смешанным материалом (кровь, отпечатки органов, соскобы со слизистых, гной, мокрота). В качестве фиксаторов используют:
- метиловый спирт (фиксируют 5 минут),
- этиловый спирт (фиксируют 20 минут),
- смесь Никифорова: равные объёмы спирта и эфира (фиксируют 20 минут),
- спирт - формол: смесь 5мл неразведённого формалина мл и 96 % этилового спирта (фиксируют 15 минут),
- жидкость Боуэна: неразбавленный формалин 10 мл, ледяная уксусная кислота 2 мл, насыщенный водный раствор пикриновой кислоты 30 мл (фиксируют 30 минут),
- жидкость Карнуа - ледяная уксусная кислота 10 мл, хлороформ 30 мл и 96 % спирт (фиксируют 15 минут).
Приложение 7
Ориентировочная окраска бактерий простыми методами.
Окраска выявляет морфологию и частично структуру клетки.
Для простой окраски используют один из красителей:
а) разведённый (1:10) карболовый фуксин, окрашивают 10-30 сек. (метод Леффлера), промывают водой, высушивают на воздухе;
б) водный раствор метиленовой синьки Леффлера окрашивают 3-10 минут, промывают водой, высушивают на воздухе.
Приложение 8
Микроскопия препарата с иммерсионным объективом
Иммерсионный объектив даёт увеличение х90 при условии отсутствия рассеивания потока лучей в связи с неоднородностью среды при их прохождении.
В этой связи, во избежание такого дефекта применяется иммерсионное кедровое масло или его заменитель - вазелиновое масло. Процесс микроскопии с иммерсионным объективом х90 ведут с окулярами х7, х10, но чаще с первым из них. Техника микроскопии состоит из нескольких этапов:
1. На готовый окрашенный мазок наносят каплю масла.
2. Под контролем глаза сбоку осторожно опускают тубус, погружая объектив в каплю масла. При неосторожном выполнении можно раздавить либо линзу объектива, либо предметное стекло.
3. После прикосновения объектива к маслу дальнейшее опускание тубуса ведётся с помощью микровинта микроскопа до появления микрообъектов в окуляре.
4. Просмотр препарата ведут только за счёт манипуляций с микровинтом и движения стекла.
5. После окончания микроскопии тубус поднимают, объектив выходит из капли масла.
6. Масло с объектива удаляют чистой ваткой или марлей и протирают жирорастворителем - либо ксилолом, либо спиртом, либо хлороформом. Оставлять масло на линзе объектива нельзя.
7. Револьверную часть на тубусе устанавливают на объектив х8, конденсор и тубус опускают, переводя в нерабочее состояние, и закрывают микроскоп колпаком.