
- •Исследование каталитических свойств протеолитических ферментов
- •Исследование зависимости скорости ферментативной реакции от времени
- •Исследование зависимости активности фермента от
- •Исследование влиянии ингибитора металлопротеииаз на активность ферментного препарата
- •Техника безопасности
- •Лабораторная работа № 2 солевое фракционирование белков
- •Ход работы
- •Получение клеточного экстракта дрожжей
- •Фракционирование клеточного экстракта
- •Обработ ка экспериментальных данных
- •Техника безопасности
- •Разделение белков методом ионообменной хроматографии
- •Подготовка сорбента
- •Заполнение колонки и внесение образца
- •Элюция белков с колонки
- •Регенерация колонки
- •Обработка экспериментальных данных
- •Техника безопасности
- •Определение молекулярной массы белка методом гель-хроматографии
- •I лкие компоненты не проникаюл в фанулы гелевой фазы и выхолят из колонки первыми. Более мелкие молекулы, способные проникать внутрь
- •Заиолнс'ние колонки
- •Определение объемов элюции калибровочных белков
- •Определение объема элюции исследуемого белка
- •Техника безопасности
Обработ ка экспериментальных данных
На основании полученных результатов рассчитывают аепень очистки и выход цитохрома в каждой высоленной фракции.
Для этого сначала оценивают количество общего белка (А) и количество цитохрома Р450 (В) в клеточном экстракте и в каждой фракции:
А = ОДгво' V ; В = 0/WV
Затем определяют удельное (относительное) содержание иитохрома 1*450 в общем белке:
С = В / А.
Выход цитохрома Р450 определяют по отношению количества цитохрома в высоленной фракции к его количеству в клеточном экстракте:
Д = Вфр 100 / в^
Степень очистки рассчитывают по отношению удельного содержания цитохрома Р450 в выделенной фракции к удельному содержанию этого белка в клеточном экстракте:
Е = Сфр / С*/,
На основании расчетов необходимо сделать заключение о диапазоне насыщения сульфатом аммония, в котором осаждается цитохром Р450ти выдать рекомендации по оптимизации схемы очистки искомого белка от сопутствующих белков.
Техника безопасности
При разделении суспензии на центрифуге руководствоваться инструкцией (документация на рабочее место № 4). Перед включением проверить исправность розетки, шнура, вилки, а также наличия заземления. Тщательно уравновешивать стаканы. При наличии посторонних звуков выключить центрифугу и сообщить учебному персоналу. При работе на спектрофотометре руководствоваться документацией на рабочее место № 5.
ЛАБОРАТОРНАЯ РАБОТА № 3
Разделение белков методом ионообменной хроматографии
Ионообменная хроматофафия основана на притяжении, возникающем между противоположно заряженными частицами. Многие биологические соединения, в первую очередь такие, как аминокислоты, пептиды, белки, содержат в своем составе функциональные группы, способные к ионизации В растворах такие группы обусловливают суммарный положительный или отрицательный заряд молекулы, величина которого зависит от pH раствора и изоэлектрической точки.
Разделение веществ методом ионообменной хроматографии обычно проводят в колонках, заполненных специальной ионообменной смолой. Колонки представляют собой полые стеклянные трубки, размер которых зависит от целей работы и способа разделения. В основании колонки впаивают пористую стеклянную пластинку, перфорированный диск или поролон.
Ионообменные смолы бывают двух типов - катионообменники и анионообменники. Катионообменники содержат отрицательно заряженные группы, которые притягивают к себе положительно заряженные молекулы. Анионообменники, наоборот, содержат положительно заряженные группы и притягивают молекулы с отрицательным суммарным зарядом.
Большинство ионообменных смол получают путем сополимериза- ции стирола и дивинидбензола. Однако такие смолы при анализе белков имеют ограниченное применение. Это вызвано несколькими причинами. Во-первых, при взаимодействии со смолами высокомолекулярные белки подвергаются денатурации и необратимо связываются с ними. Во-вторых, емкость смол по отношению к белкам сравнительно низка, а чистота разделенных фракций не вполне удовлетворительна.
В последнее время для ионообменной хроматографии белков стали использовать целлюлозы и ионообменные полимеры декстрана. Преимущество этих ионообменников состоит в том, что их гидрофильный матрикс хорошо связывает воду, набухает, вследствие чего улучшается проницаемость для крупных белковых молекул. Кроме того, они обладают более высокой емкостью к белкам и не вызывают их денатурации.
Наиболее распространенным катионообменником для белков является КМ-целлюлоза (карбоксиметилцеллюлоза), в которой группа -CHjOH замещена на группу -СН2ОСН2СОО Среди анионообменников наиболее эффективной является ДЭАЭ-целлюлоза (диэтиламиноэтилцел- люлоза).
Процесс, происходящий в колонке с ионхбменником, можно рассмотреть на примере. Допустим, в качестве ионообменной смолы имеем ионообменник, насыщенный катионами (А*'), что достигается пропусканием через колонку буферного раствора, содержащего катион А+. Если теперь через колонку пропустить раствор с другими катионами (Bf), то часть катионов А* будет «мешаться катионами В‘ вплоть до достижения равновесия: . .
Смола-О ...А + li ^— Смола - О ... В* + А
Равновесие зависит от концентрации катионов В', концентрация комплекса Смола-O'... А+ от относительного сродства ионообменного материала к катионам А+ и В . По мере продвижения через колонку раствора, содержащего ионы В+, непрерывно происходит процесс уравновешивания, в результате чего катионы В+ могут полностью связаться со смолой.
11ри соответствующих условиях (pH, ионная сила раствора, скорость протекания буфера через колонку) можно достичь того, что катионы В* свяжутся со смолой в определенном, небольшом участке колонки.
При катионообменной хроматографии смесь белков в исходном буфере пропускают через колонку с катионообменником. При этом часть белков, имеющих положительный заряд, связывается с сорбентом, а часть отрицательно заряженных белков вымывается из колонки.
Белки, взаимодействующие с катионообменником, сорбируются в верхней части колонки. Для их извлечения (элюирования) через колонку пропускают подходящий буфер (элюент). Этот буфер может иметь либо такой же pH, что и исходный буфер, но большую ионную силу, либо более низкий pH. Элюирование также можно осуществлять буферами с теми же значениями pH и ионной силы, что у исходного буфера, но содержащими катион, к которому катионообменник имеет большее сродство, чем белок (чаще всего используют ионы Na+).
Выделение отдельных белков из смеси, сорбированной на колонке, можно проводить путем создания ступенчатой или непрерывной градиентной элюции. При этом виде элюции каждый из элюирующих растворов пропускают через колонку до тех пор, пока концентрация белка в выте-; кающем из колонки элюате, пройдя через максимум, не снизится почти до исходных фоновых значений.
При непрерывном градиенте изменение ионной силы или pH элюирующего раствора происходит постепенно, по линейной или не по линейной зависимости от объема протекающей жидкости. Линейное изменение ионной силы или pH элюирующего раствора происходит тогда, когда эти параметры пропорциональны объему протекающей жидкости. Получить линейный градиент можно с помощью прибора, состоящего из двух соединенных на одном уровне (рис.4,а). В одном сосуде (1) находится буферный раствор со значением ионной силы, которое должно быть достигнуто к концу опыта. В другом смесителе, из которого раствор поступает непосредственно в колонку, вначале находится равный объем исходного буферного раствора. Часто применяют “выпуклый” или “вогнутый” градиенты, при которых ионная сила раствора увеличивается соответственно по экспонентной зависимости. Форму этих градиентов легко получить с помощью простого устройства, изображенного на рис. 4, б,в.
О
V
Рис.4. Приборы для создания градиента концентрации
а линейного, б - выпуклого, в - вогнутого (объяснения в тексте)
Режим элюирования для разделения конкретных белковых смесей приходится подбирать эмпирически.
Целью данной работы является разделение модельной смеси белков методом ионообменной хроматографии на КМ-целлюлозе в режиме линейной градиентной элюиии.
ХОД РАБОТЫ 1. Сборка установки
Для проведения работы собирают хроматографическую установку, изображенную на рис. 5.
Рис.5. Схема устройства для колоночной хроматографии:
I - прибор для создания линейного градиента (а - сосуд с раствором высокой концентрации: б - сосуд-смеситель; в - магнитная мешалка); 2 - перистальтический насос; 3 - колонка