Свойства самого биологического материала (физико-химические, орга-

нолептические).

Стабильность исследуемого материала, его возможные превращения in vitro определяют необходимость использования специальных контейнеров, консервантов, транспортных сред, соблюдение физического режима доставки материала в лабораторию.

3. Последовательность взятия материала в случаях множественных иссле-дований.

4. Состояние сопроводительной документации к биоматериалу.

Для рационального распределения последовательности взятия материала медицинская сестра должна иметь общее представление о ходе лабораторного исследования. Умение заполнять направления на исследования и бланки-заказы для лаборатории помогает избежать грубых ошибок в подходах к исследованию.

Учитывая вышеизложенное, опираясь на должностные обязанности и квалификационную характеристику медицинской сестры, следует отметить, что именно взятие (включая подготовку пациента), временное хранение и отправка биоматериала для лабораторных исследований являются частью каждодневной работы сестринского персонала.

В подтверждение актуальности темы было проведено исследование готовности практикующих медицинских сестер к адекватному выполнению этой задачи («Сестринское дело» №3 2007г.). Предлагалось проанализировать готовность сестёр взять любой биологический материал для исследований. Всего были опрошены 104 медицинские сестры, женщины, со стажем практической работы 5—35 лет.

Владение навыками взятия биоматериала

2

1 — владеют в достаточной степени (20%),

2 — владеют в недостаточной сте­пени (50%),

3 — не владют (30%)

70% респондентов отметили, что самостоятельное взятие биоматериала для лабораторий микробиологического профиля вызывает у них особые трудности. Данный факт объясняется большим разнообразием методик взятия материала при различных нозологических формах. Кроме того, направление на микробиологическую диагностику осуществляется значительно реже, чем на общеклинические лабораторные исследования.

В результате самооценки соответствия знаний преаналитического этапа лабораторной диагностики современным требованиям и необходимости усиления подготовки по данному вопросу ответы распределились следующим образом («Сестринское дело» №3 2007г.): 80% респондентов заявили об абсолютной недостаточности своих знаний; 15% отметили необходимость постоянного непрерывного обучения на рабочем месте; лишь 5% констатировали своё владение знаниями и практическими навыками преаналитического этапа исследований без дополнительного обучения.

Респонденты также отмечали отсутствие (5%) в их профессиональной деятельности каких-либо элементов обучения методам взятия и доставки биологического материала в лабораторию.

Последипломное обучение по взятию биоматериала

85% — только в медучилище (колледже),

10% — постоянно обучаются на рабочем месте,

5% —нет последипломного обучения

Авторы исследования подчёркивают, что приведённые ими данные являются субъективными, но безусловно достаточными для организации и проведения обучения по исследуемому вопросу на последипломном этапе. Но и на базом уровне сестринского образования необходимо усилить подготовку по преаналитическому этапу исследований, начиная с профилирующей дисциплины «Основы сестринского дела».

ОСНОВНЫЕ ПРАВИЛА ВЗЯТИЯ И ТРАНСПОРТИРОВАНИЯ

БИОЛОГИЧЕСКОГО МАТЕРИАЛА:

1. Биоматериал необходимо брать в объёме, достаточном для получения достоверных результатов.

2. При взятии и транспортировке материала исключить возможность загрязнения его микрофлорой внешней среды, не имеющей отношения к объекту исследования.

3. Собранный биологический материал должен быть промаркирован. Обязательно указать в сопроводительном бланке-направлении:

   • цель исследования (предварительный диагноз);

   • фамилию, имя, отчество, возраст больного, дату и время взятия пробы;

   • четкие данные об учреждении, направившем материал;

   • при необходимости дополнительные данные о пациенте: курение, прием алкоголя, сопутствующие заболевания и их лекарственную терапию и др.

4. При взятии материала обязательно учитывают пути максимального выведения возбудителя инфекционного заболевания или локализацию биологического субстрата с предельно возможными измененными параметрами.

5. Любая ёмкость, в которой доставляется исследуемый материал в лабораторию, должна быть закрыта и направление прилагается в отдельном пакете.

6. Предельно внимательно относиться к срокам хранения материала до отправки его в лабораторию. Предельный срок хранения образцов для микробиологического исследования —1,5-2 ч.

7. Взятие венозной крови осуществляется после 15-минутного отдыха пациента, пациент во время процедуры сидит. Предусмотрено лежачее положение больных, находящихся в тяжелом состоянии и состоянии средней тяжести.

8. Перед взятием крови из вены необходимо осмотреть место венепункции: исключить места шрамов, гематом, места введения растворов и пр.

9. Кровь берется натощак, утром, желательно использование приспособлений типа «вакутейнеров», что способствует соблюдению условий асептики, ускоряет процедуру, улучшает воздействие антикоагулянта.

10. Использование коммерческих контейнеров с консервантами и транспортными средами увеличивает вероятность достоверного лабораторного ответа. Это достигается благодаря тому, что обеспечивается герметичность, стерильность, физико-химическая сохранность проб. Образование возможно инфицированного аэрозоля при открытии ёмкости с материалом является серьезной проблемой для медицинского персонала лабораторий, поэтому особое значение приобретает доставка биоматериала именно в стандартной посуде. Защитные очки и маски используются для предотвращения капельного заражения.

11. Строгое соблюдение правил асептики и антисептики при взятии крови является обязательным условием обеспечения безопасности профессиональной деятельности медицинских сестер.

12. Категорически запрещается помещать в пробирки бланки с направлением, обертывать ими пробирки.

13. Запрещается переливание крови и других жидких биологических субстратов через край пробирки на любом этапе работы с образцом.

14. Пробирки маркируются только карандашом по стеклу, запрещается использование каких-либо наклеек.

15. Записи в любом виде медицинской документации должны производиться только на отдельных, специально отведенных для этих целей столах.

16. Материал доставляется в лабораторию с учетом правил транспортировки для данного исследования лицами, прошедшими специальный инструктаж. Не допускаются к использованию для доставки материала деревянные штативы, хозяйственные сумки, чемоданы, другой подручный багаж. Пробирки, флаконы и другие емкости, закрытые непромокаемыми завинчивающимися крышками, доставляются в специальных металлических или пластмассовых штативах, помещенных в специальные ящики-контейнеры. Если материал чувствителен к изменениям температуры внешней среды, необходимо помещать образцы в специальные сумки-термостаты или мобильные холодильники.

17. В некоторых случаях предусматривается длительная консервация материала до его исследования. Так, например, плазма может быть заморожена при температуре —20°С на длительное время. В этом случае морозильная камера специальным образом маркируется, доступ к ней строго ограничивается.

Нарушение правил взятия биологического материала влечет за собой излишние экономические затраты, что не может в косвенной степени не затронуть материальных интересов медицинской сестры любого лечебно-профилактического учреждения. Повторное взятие биоматериала у больных может вызвать отрицательные биоэтические последствия в системе взаимоотношений «медицинский работник — пациент», сформировать у больных негативное отношение к медицинским вмешательствам в целом. Отказ лаборатории от проведения исследования по причине несоблюдения правил взятия и доставки биоматериала является одной из причин серьезных медицинских ошибок.

ЭТИКО-ДЕОНТОЛОГИЧЕСКОЕ ОБЕСПЕЧЕНИЕ ЗАБОРА БИОМАТЕРИАЛА.

При инструктировании пациента о порядке взятия биологического материала для исследования необходимо стремиться к установлению терапевтического общения, этому способствует:

1. Приветствие пациента. Если медицинский работник видит пациента впервые, необходимо сообщить своё имя и должность и спросить, как обращаться к пациенту.

2. Объяснение цели и правил подготовки к предстоящему исследованию. Необходимо говорить внятно, доходчиво, не торопясь. А также попросить пациента повторить инструктаж (убедиться, что пациент понял). Если пациент затрудняется повторить, наиболее важные моменты записать на листке бумаги. Поощрять вопросы!

3. Получить согласие пациента на предстоящее исследование.

4. Обеспечить конфиденциальность при заборе биоматериала (кал, моча) у пациентов находящихся на постельном режиме (попросить выйти других пациентов, отгородить ширмой), быть предельно тактичным по отношению к пациенту.

Следуя этим несложным советам, медсестра поможет пациенту чувствовать себя в эмоциональном отношении уверенно и комфортно.

ПРАВИЛА ТЕХНИКИ БЕЗОПАСНОСТИ

В экскрементах, носоглоточных выделениях, мокроте, моче и рвотных массах концентрация ВИЧ крайне низка или ВИЧ не обнаруживается, в связи с этим риск инфицирования при контакте с указанным биологическим материалом возможен лишь при наличии примеси крови. Однако соблюдать общие меры предосторожности необходимо в любом случае, так как это позволяет предотвратить передачу других инфекционных агентов.

Меры предосторожности:

1. Избегать непосредственного контакта с биологическими жидкостями. Работать в резиновых перчатках и др. средствах защиты.

2. Не допускать боя лабораторной посуды и травм осколками стекла.

3. Обеззараживать выделения пациентов перед сливом в канализацию.

4. Немедленно убирать случайно пролитый, разбрызганный биоматериал с соблюдением всех мер инфекционной безопасности.

5. Тщательно дезинфицировать лабораторную посуду, судно и мочеприемники, петли для забора кала и др.

6. При попадании биологической жидкости выполнить все меры профилактики.

ФУНКЦИИ МЕДИЦИНСКОЙ СЕСТРЫ

В ПРЕАНАЛИТИЧЕСКОМ ПРОЦЕССЕ ЛАБОРАТОРНОГО ИССЛЕДОВАНИЯ

1. Выбрать врачебные назначения из истории болезни.

2. Выписать направления на лабораторные исследования.

3. Подготовить лабораторную посуду.

4. Обучить пациента технике сбора биологического материала для исследования или произвести забор у тяжелобольных, недееспособных, престарелых пациентов и детей.

5. Организовать доставку биологического материала в лабораторию (амбулаторным пациентам объяснить правила транспортировки материла в лабораторию).

6. Полученные результаты исследований вклеить в историю болезни (амбулаторную карту).

РАЗДЕЛ № 2

НОРМАТИВНЫЕ ПОКАЗАТЕЛИ ОСНОВНЫХ БИОЛОГИЧЕСКИХ

СРЕД ОРГАНИЗМА ЧЕЛОВЕКА И ИХ ИНТЕРПРЕТАЦИЯ.

СОСТАВ КРОВИ

Основные показатели биохимического состава плазмы крови

Показатели периферической крови

Состав и свойства мочи в норме и патологии

Состав и свойства каловых масс

Раздел № 3 Участие медсестры в подготовке пациента к проведению лабораторных исследований

ВЗЯТИЕ КРОВИ ИЗ ВЕНЫ НА БИОХИМИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ

Цель: определить количество некоторых биохимических показателей крови.

Оснащение: стерильная игла однократного применения, лоток стерильный с тампонами и пинцетом, жгут резиновый, салфетка (подложить под жгут), 70% этиловый спирт, спецодежда (очки или щиток, халат, маска, перчатки), чистые сухие пробирки в штативе, емкость с дез. средствами.

ВЗЯТИЕ КРОВИ ИЗ ВЕНЫ НА ВИЧ – ИНФЕКЦИЮ, СИФИЛИС

Цель: обнаружение антител к возбудителю

Оснащение: шприц для однократного применения, лоток стерильный с тампонами и пинцетом, жгут резиновый, салфетка (подложить под жгут), 70% этиловый спирт, спецодежда (очки или щиток, халат, маска, перчатки), чистые сухие пробирки в штативе, емкость с дез. средствами.

СБОР МОЧИ ДЛЯ ОБЩЕГО КЛИНИЧЕСКОГО АНАЛИЗА.

Цель: определение физико-химических и микроскопических свойств мочи.

Оснащение: чистая сухая стеклянная ёмкость объёмом 50-200 мл; направление на исследование.

СБОР МОЧИ ПО МЕТОДУ НЕЧИПОРЕНКО.

Цель: определение форменных элементов.

Оснащение: чистая сухая стеклянная ёмкость объёмом 100 мл; направление на исследования, перчатки, емкость с дез. средством.

СБОР МОЧИ ПО МЕТОДУ ЗИМНИЦКОГО.

Цель: определение выделительной и концентрационной функции почек.

Оснащение: чистая сухая стеклянная ёмкость объёмом 200 мл – 8 штук; направление на исследование.

СБОР МОЧИ НА БАКТЕРИОЛОГИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ.

Цель: определение возбудителей заболевания и чувствительности микрофлоры к антибиотикам.

Оснащение: стерильная стеклянная ёмкость, полученная в бактериологической лаборатории, направление на исследование, бумажное полотенце, салфетки, маркер.

При сборе мочи в период менструального цикла женщине необходимо после туалета наружных половых органов закрыть вход во влагалище ватно-марлевым тампоном (Tampex). Повторить туалет наружных половых органов и провести сбор мочи на исследование по схеме (см. выше).

СБОР МОЧИ НА АМИЛАЗУ

Цель: определение количества диастазы в моче (фермента поджелудочной железы).

Оснащение: чистая сухая стеклянная ёмкость объёмом 100 мл; направление на исследование, емкость с дез. средством..

СБОР МОЧИ НА САХАР ИЗ СУТОЧНОГО КОЛИЧЕСТВА.

Цель: определение сахара в моче с целью диагностики сахарного диабета.

Оснащение: две чистые, стеклянные ёмкости: 3-х литровая, мерная с крышкой и на 200 мл; пластмассовая палочка для перемешивания мочи; на-правление на исследование, перчатки, ёмкость для дезинфекции перчаток.

СБОР МОКРОТЫ ДЛЯ ОБЩЕГО КЛИНИЧЕСКОГО АНАЛИЗА.

Цель: определение физико-химических свойств и клеточный состав

Оснащение: стерильная широкогорлая стеклянная ёмкость с крышкой, направление на исследование, кипячёная вода 37⁰ С, контейнер для транспортировки.

СБОР МОКРОТЫ НА БАКТЕРИОЛОГИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ

Цель: выявление возбудителя патологического процесса, подбор антибиотика, эффективного при данном возбудителе

Оснащение: стерильная ёмкость (готовит бактериологическая лаборатория); направление на исследование, контейнер для транспортировки

СБОР МОКРОТЫ НА МИКОБАКТЕРИИ ТУБЕРКУЛЁЗА

(для микроскопического исследования)

Цель: диагностика туберкулёза

Оснащение: стерильная ёмкость из тёмного стекла с крышкой; направление на исследование, кипячёная вода 37⁰ С, перчатки, емкость с дез. средством.

Врач может назначить и бактериологическое исследование мокроты на туберкулёз, и этот метод является более чувствительным, чем бактериоскопический (достаточно несколько десятков микобактерий в 1 мл исследуемого материала). Но в некоторых случаях микобактерии могут не дать роста на питательных средах, в то время как при бактериоскопии они выявляются.

Любое исследование мокроты проводится в стерильную посуду!!!

СБОР МОКРОТЫ НА АТИПИЧНЫЕ КЛЕТКИ

Цель: выявление опухолевых клеток

Оснащение: стерильная ёмкость с крышкой; направление на исследование, кипячёная вода 37⁰ С

СБОР КАЛА НА КОПРОЛОГИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ

(ОБЩИЙ АНАЛИЗ КАЛА)

Цель: оценить степень усвоения пищи, обнаружить нарушение желчевыделе-ние, выявить скрытое кровотечение, обнаружить воспалительные изме-нения, выявить наличие паразитов;

Оснащение: чистая, сухая ёмкость из светлого стекла; направление на исслед-ование; деревянный шпатель для сбора кала (однократного примене-ния); перчатки; ёмкость с дезраствором для дезинфекции перчаток.

СБОР КАЛА НА ПРОСТЕЙШИЕ И ЯЙЦА ГЛИСТОВ

Цель: обнаружение вегетативных форм простейших, различных видов гельминтов;

Оснащение: чистая, сухая ёмкость из светлого стекла; направление на иссле-дование; деревянный шпатель для сбора кала (однократного приме-нения); перчатки; ёмкость с дезраствором для дезинфекции перча-ток.

СБОР КАЛА НА СКРЫТУЮ КРОВЬ

Цель: обнаружение скрытого кровотечения при патологии желудочно-кишечного тракта;

Оснащение: чистая, сухая ёмкость из светлого стекла; направление на иссле-дование; деревянный шпатель для сбора кала (однократного приме-нения); перчатки; ёмкость с дезраствором для дезинфекции перча-ток.

СБОР КАЛА НА БАКТЕРИОЛОГИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ.

Цель: определение микрофлоры и возбудителей кишечной инфекции.

Оснащение: стерильная пробирка с проволочной петлёй и консервантом, перчатки, маска, направление на исследование, ёмкость с дезраствором для дезинфекции перчаток.

Сбор кала на дисбактериоз

Цель: определение наличия нормальной микрофлоры кишечника

Оснащение: стерильная ёмкость (посуду готовит баклаборатория), направле-ние на исследование; деревянный шпатель для сбора кала (однократного применения); перчатки; ёмкость с дезраствором для дезинфекции перча-ток.

Раздел № 4 Особенности проведения лабораторных методов исследования у детей

Биохимические показатели крови и мочи у детей зависят от методики проведения исследования в различных лабораториях и могут существенно отличаться.

Основные биохимические показатели крови у детей

Азот остаточный:

3-14 лет 19,0- 29,0 ммоль/л

АЛТ до 40 ед/л

АСТ до 30 ед /л

Белок общий 62-82 г/л

Белковые фракции:

Альбумины 37-52 г/л

Глобулины λ₁ - 1,0-4,0 г/л

λ₂ - 5,0-10,0 г/л

β - 6,9-12,0 г/л

γ - 6,0-16 г/л

Билирубин:

общий(1мес-14 лет) 11,2 мкмоль/л

связанный 2,57 мкмоль/л

свободный 8,55 мкмоль/л

Глюкоза

Новорожденные 1,9-4,7 ммоль/л

1 мес. и старше 3,33-5,55 ммоль/л

Железо

Новорожденные 5,0-19,3 мкмоль/л

1 год 6,3-14,9 мкмоль/л

14 лет 9,3-33,6 мкмоль/л

Железосвязывающая способность

сыворотки

Новорожденные 17,9-62,6 мкмоль/л

1 год 53,7-71,6 мкмоль/л

14 лет 53,7-62,6 мкмоль/л

Калий

0-1мес 3,4-6,2 ммоль/л

2 мес-6 лет 3,4-5,76 ммоль/л

7-14 лет 3,4-5,12 ммоль/л

Кальций общий

Новорожденные 2,25-2,45 ммоль/л

14 лет 2,5-2,87 ммоль/л

Натрий

Новорожденные 135-155 ммоль/л

1 год 133-142 ммоль/л

14 лет 137-147 ммоль/л

Фосфор

Новорожденные 1,13-2,78 ммоль/л

14 лет 1,4-2,15 ммоль/л

Хлор 96-107 ммоль/л

РН крови 7,35-7,45

Креатинин 0,035-0,11 ммоль/л

Мочевая кислота 0,17-0,41 ммоль/л

Мочевина 2,1-7 ммоль/л

Холестерин

Новорожденные 1,3-3,1 ммоль/л

7-12 лет 3,1-6,5 ммоль/л

Основные биохимические показатели мочи у детей

Азот общий

Новорожденные 30 ммоль/сут

1 год 200 ммоль/сут

14 лет 700 ммоль/сут

Амилаза (диастаза) 16-64 ЕД

Глюкоза до 15 мг

Креатинин

Новорожденные 0,08 ммоль/сут

1 год 0,7 ммоль/сут

14 лет 6,0 ммоль/сут

Мочевая кислота

Новорожденные 0,2 ммоль/сут

1 год 1,2 ммоль/сут

14 лет 3,5 ммоль/сут

Мочевина

1 год 80 ммоль/сут

14 лет 300 ммоль/сут

Удельный вес мочи у детей в зависимости от возраста

Новорожденные 1018-1020

6-10 месяцев 1003-1005

2-5 лет 1009-1016

Старше 5 лет 1011-1025

Особенности сбора мочи на общий анализ у детей раннего возраста

У девочек раннего возраста моча собирается при помощи подкладного резинового круга. Для этого на постель положить клеёнку, слегка надуть резиновый круг и обернуть его пеленками. Поставить на клеёнку тарелку или чистый сухой лоток и положить на неё обёрнутый пеленками резиновый круг (края пелёнок не должны попадать в тарелку). Девочку подмыть, просушить промежность полотенцем и уложить на резиновый круг, под спину и голову подложить небольшую подушку.

Для ускорения процесса мочеиспускания можно открыть кран с водой или попоить ребёнка. После мочеиспускания девочку снять с круга, осушить половые органы, а мочу перелить аккуратно из тарелки в чистую сухую баночку. Материал доставляют в клиническую лабораторию.

У мальчиков моча собирается в пробирку, прикреплённую при помощи лейкопластыря к паховой области. При этом ноги закрываются пелёнкой для профилактики травматизации.

Методика сбора мочи по Амбурже

Утром ребёнка необходимо подмыть. В 6-00 ребёнок мочится в унитаз, а затем его просят не мочиться в течение трёх часов. В 9-00 всю мочу собирают в чистую сухую посуду. Отправляют в клиническую лабораторию и определяют количество эритроцитов и лейкоцитов.

Методика сбора мочи по Каковскому - Аддису

Мочу собирают за 10 часов. Для этого ребёнка просят помочиться в

22-00 и после этого не мочиться. Если ребенок не выдерживает 10 часов, то всю выделенную мочу собирают в одну сухую чистую емкость. Утром в 8-00 собирают остатки мочи.

Мочу тщательно перемешивают и отливают в сухую чистую емкость 0,2 л. и отправляют в клиническую лабораторию для определения эритроцитов, лейкоцитов и цилиндров.

Методика сбора мочи по Рейзельману

Это разновидность сбора мочи по Зимницкому. Используется у детей раннего возраста, когда ребёнок плохо контролирует мочеиспускание. Моча собирается в течение суток. Ребёнок мочится тогда, когда он захочет, каждая порция собирается в отдельную чистую, сухую ёмкость.

Отправляется в клиническую лабораторию, где определяют дневной, ночной, суточный диурез, удельный вес каждой порции. По этому анализу судят о функциональном состоянии почек.

Сбор кала на яйца гельминтов

Используется в детской практике для диагностики гельминтозов. Ребёнок высаживается на горшок для акта дефекации, чистым шпателем берут материал из трёх разных мест (не менее 5 грамм) и помещают в чистую сухую баночку. Отправляют в клиническую лабораторию для исследования.

Сбор кала на дисбактериоз

Используется в детской практике для исследования микрофлоры кишечника. Ребёнок высаживается на горшок, который должен быть предварительно вымыт с мылом, ополоснут кипятком и высушен. После акта дефекации стерильным инструментом взять кал из разных мест и поместить в стерильную, сухую емкость.

Нельзя брать материал на исследование в тех местах, где есть кровь. Материал отправляют в бактериологическую лабораторию в течение 2-х часов, сопроводив направлением.

Нормальная микрофлора кишечника ребёнка

Облигатная флора

Кишечная палочка

(с типичными свойствами) 10⁵ - 10⁹

Бифидобактерии 10⁸ – 10¹¹

Лактобактерии 10⁶ – 10¹⁰

Бактероиды 10⁹ – 10¹¹

Стрептококки 10³ – 10⁵

Факультативная флора

Из общего количества

кишечной палочки:

- лактозонегативная не более 10%

- гемолитическая не более 2%

Протей не более 10³

Клебсиелла не более 10³

Прочие УПЭ не более 10³

Стафилококк не более 10³

Синегнойная палочка не более 10³

Дрожжеподобные грибы не более 10³

Плесневые грибы не должно быть

Патогенные энтеробактерии не должно быть

Клостридии не более 10⁵

Нормативные показатели крови у детей по возрастам

Приложения

Приложение № 1

УПРАВЛЕНИЕ ЗДРАВООХРАНЕНИЯ

АДМИНИСТРАЦИИ ГОРОДА ЧЕЛЯБИНСКА

ПРИКАЗ

« 27 » января 2006 г. № 12

«Об организации лабораторного обследования

на ВИЧ-инфекцию населения г.Челябинска»

На основании приказа Министерства здравоохранения Челябинской области от 17.01.06 г. № 1 «Об организации лабораторного обследования на ВИЧ-инфекцию населения Челябинской области в рамках реализации Национального проекта в сфере здравоохранения», в целях упорядочения организации скринингового исследования ВИЧ-инфекции методом иммуно-ферментного анализа в г.Челябинске

ПРИКАЗЫВАЮ:

1. Утвердить:

1) список скрининговых лабораторий г. Челябинска, осуществляющих диагностику ВИЧ-инфекции и прикрепленных к ним лечебно-профилактических учреждений (приложение 1);

2. порядок проведения лабораторного обследования на выявление заражения ВИЧ-инфекцией (приложение 2).

2. Главным врачам лечебно-профилактических учреждений города:

1) принять меры к полному и своевременному обследованию контингентов на ВИЧ-инфекцию в соответствии с Федеральным Законом от 30 марта 1995 года № 38 «О предупреждении распространения в Российской Федерации заболевания, вызываемого вирусом иммунодефицита человека (ВИЧ)» и приказом Министерства здравоохранения Российской Федерации от 30.10.95 г. № 295;

2) при проведении скринингового исследования на ВИЧ-инфекцию использовать коды контингентов, обследуемых на наличие антител к ВИЧ-инфекции, утвержденные приложением № 1 приказа Министерства здравоохранения Челябинской области от I2.01.2006 г. (приложение);

3) при взятии проб крови для исследования на ВИЧ-инфекцию использовать вакуум-системы разового пользования;

4. обеспечить бланками индивидуальных направлений по форме согласно приложению 3,4 к настоящему приказу;

5. назначить ответственных за организацию отбора контингента, подлежащего обследованию на ВИЧ-инфекцию, обеспечение установленного порядка забора крови, оформлением документации и транспортировки сыворотки крови. Список ответственных представить в соответствующие скрининговые лаборатории с указанием должности и телефона.

3. Главному врачу МУЗ «Диагностический центр инфекционных заболеваний» Кузьменко Г.И. и главному врачу ГКБ № 6 Шестопалову С.С. обеспечить получение санитарно-эпидемиологического заключения и лицензии Территориального Управления Федеральной службы Роспотребнадзора по Челябинской области на осуществление деятельности, связанной с использованием возбудителей инфекционных заболеваний Ш – IV групп патогенности.

3. Главному врачу МУЗ «Диагностический центр инфекционных заболеваний» Кузьменко Г.И. организовать своевременную доставку ИФА-положительных образцов крови на верификацию в референс-лабораторию ГКБ №6.

3. Контроль за исполнением настоящего приказа возложить на заместителя начальника управления здравоохранения Голошевскую А.И.

Заместитель Главы города,

начальник Управления здравоохранения В.Р.Тесленко

Порядок

проведения лабораторного исследования на выявление заражения вирусом

иммунодефицита человека

Лабораторное исследование на выявление заражения ВИЧ проводится в 2 последовательных этапа: скрининговое (отборочное) и верификационное (подтверждающее) исследование.

Скрининговое исследование - лабораторное тестирование сывороток крови методом иммуно-ферментного анализа с целью выявления серопозитивных сывороток.

Верификационное исследование - подтверждение специфичности положительного результата, полученного при скрининге.

Скрининг проводится в лабораториях диагностики ВИЧ-инфекции в соответствии с утвержденным списком скрининговых лабораторий и прикрепленных к ним ЛПУ.

Материалом для скрининга является сыворотка крови человека.

Способ получения материала для скрининга:

Взятие крови для исследования на ВИЧ производится в процедурном кабинете из локтевой вены (у новорожденного - из пуповины).

Существует 2 способа взятия венозной крови: шприцем и вакуумными системами.

1.Использование шприца. В большинстве случаев использование шприца с иглой следует избегать из-за недостаточной безопасности для медицинского персонала и невозможности исключения гемолиза крови при переносе ее под давлением в пробирку.

2.Использование вакуум-содержащих систем. Для взятия проб крови наиболее предпочтительно использовать вакуум-содержащие системы. Этот способ имеет ряд преимуществ, основным из которых является взятие крови непосредственно в закрытую пробирку, предотвращающую любой контакт с кровью пациента.

Количество взятой крови не менее 7 мл. Пробирка предварительно маркируется (фамилия, инициалы).

Заполняется индивидуальное направление по прилагаемой форме.

В лаборатории (специальном пункте) после образования фибринового сгустка последний отделяется от стенок пробирки стеклянной палочкой, строго индивидуальной для каждой пробы, затем пробирка центрифугируется при 1,5 тыс.об./мин. 5 минут, и сыворотка отделяется осторожно пипеткой с разовым наконечником в сухой чистый флакон. Флакон предварительно маркируется: обязательно указывается фамилия и порядковый номер. Количество сыворотки должно быть не менее 2,5 мл. Флакон с сывороткой закрывается резиновой пробкой. Не использовать лейкопластырь!

В лаборатории (пункте) оформляется списочное направление по форме 264/у. Зачеркивать, вносить в направления изменения, поправки категорически запрещается!

Предназначенная для исследования сыворотка может храниться до отправки в скрининговую лабораторию в холодильнике медицинского учреждения при температуре не выше +4С не более 48 часов!

Доставка образцов сывороток осуществляется в емкостях (контейнеры, биксы и пр.) с закрывающимися крышками из материалов, который не портится при дезинфекции. Направления помещают в полиэтиленовые пакеты и доставляют в лабораторию вместе с образцами сывороток.

Скрининговая лаборатория в обмен выдает чистые флаконы. Заключения помещаются в полиэтиленовые флаконы. Штативы, контейнеры, биксы возвращаются только после предварительной дезинфекции.

В скрининговой лаборатории исследуется сыворотка:

-не содержащая примеси эритроцитов, бактериальных проростов, хилеза, гемолиза

-соответствующая качеству и количеству доставленного материала

-с правильно оформленной сопровождающей документацией.

При наличии любого из указанных признаков сыворотка уничтожается и назначается повторный забор крови, о чем делается запись в регистрационном журнале лаборатории данного медицинского учреждения.

Скрининговая лаборатория имеет право не проводить исследование в случае несоответствия качества и количества доставленного материала указанным выше требованиям, при несоблюдении правил доставки сыворотки, неправильном оформлении сопроводительной документации. В этом случае делается запись в лабораторном журнале дефектуры и составляется «Акт дефектуры» за подписью врача лаборанта, который отправляется руководителю медицинского учреждения, направившего материал для исследования.

При получении отрицательного результата ИФА сыворотка считается отрицательной. Ответ проставляется в направлениях и выдается медицинскому учреждению не позднее, чем через сутки после выполнения анализа.

Сыворотку обследуемых, заказанную на повторное исследование, оформляют на отдельном направлении с пометкой «повторно».

Результаты исследований выдаются только сотрудникам ЛПУ и не сообщаются по телефону.

Дубликаты результатов исследований выдаются в исключительных случаях по предварительной договоренности.

При получении положительного результата анализ проводится еще 2 раза с той же сывороткой, желательно в тест-системе другого типа. При получении 2-х отрицательных результатов сыворотка считается отрицательной.

При поучении еще хотя бы одного положительного результата сыворотка направляется на верификацию в референс-лабораторию ГКБ №6 г. Челябинска и сопровождается двумя экземплярами направлений по форме 264/у.

Название ЛПУ_______________________________________________________

В лабораторию диагностики СПИДа

Направление

Отделение__________________________________________________________

ФИО (полностью)____________________________________________________

Адрес______________________________________________________________

Год рождения________________________Код_____________________________

Дианоз_____________________________________________________________

Дата взятия крови_________________Подпись ____________________________

Заключение Дата_________________________________врач__________________________

Название ЛПУ_______________________________________________________

Направление

на исследование образцов крови на СПИД в лабораторию ИФА

Дата______________________Подпись______________________________

ПРИМЕЧАНИЕ: регистрационный № заполняется в лаборатории

Коды контингентов, обследуемых на наличие антител к ВИЧ - инфекции

Приложение № 2

Алгоритм подготовки к исследованию мочи

Приложение № 3

Алгоритм подготовки к исследованию мокроты

Приложение № 4

Алгоритм подготовки к исследованию кала

Постановка пробы по Зимницкому

Цель

Выписать направление

Действие мед. сестры

Больной

Хранить мочу в темном прохладном месте

У больного полиурия

Олигурия

Памятка

по подготовке и сбору мочи на анализ по методу Нечипоренко

амбулаторного пациента

• Утром тщательно подмойтесь кипячёной водой и соберите немного мочи (10-15 мл.) из "средней порции" в сухую стеклянную баночку.

• Для того чтобы собрать мочу из "средней порции" необходимо:

начать мочеиспускание в унитаз;

задержать мочеиспускание;

выделить мочу в баночку;

задержать мочеиспускание, отставить баночку;

завершить мочеиспускание в унитаз.

• Вымойте руки.

• Закройте баночку крышкой.

• Доставьте анализ мочи в клиническую лабораторию поликлиники №2 в течении 1 часа с момента сбора мочи (лаборатория работает с 8.00-9.00).

• Направление не приклеивайте к баночке; поместите в полиэтиленовый пакет и оставьте вместе с баночкой с мочой в лаборатории.

Системы забора венозной крови BD Vacutainer®

Современные технологии на службе здоровья человека

_{Система BD Vacutainer}

®

Одноразовый держатель

Стерильная пробирка для крови

BD Vacutainer^® с дозированным объемом

вакуума и реактивами-наполнителями

Закрытая вакуумная система BD Vacutainer® обеспечивает

• Безопасность медицинского персонала на преаналитическом этапе за счет исключения контакта с кровью пациента;

• Быстроту и удобство отбора проб за счет простоты конструкции системы и точной дозировки вакуума в пробирке;

• Возможность забора крови в несколько пробирок с помощью одной венепункции;

• Снижение болевых ощущений у пациентов за счет особого дизайна сверхострых игл;

• Высокое качество образцов и снижение ошибок на преаналитическом этапе за счет специально разработанной конструкции пробирок и точного соотношения забираемой крови и реагентов;

• Совместимость с широким спектром современных аналитических приборов.

Пробирки для забора крови BD Vacutainer®

С обычной пробкой

16x100 мм (>8 мл) 10,25x64 мм (1,8-3 мл) 16x75 мм (4-8 мл)

С крышкой BD Hemogard™

13x75 мм (1,8-5мл) 13x100 мм (4,2-7 мл) 16x100 мм (>8 мл)

Пробирки BD Vacutainer® производятся из стекла, a BD Vacutainer® Plus из прозрачного безлатексного поли-этилентерефталата (ПЭТ), который легче и практически не бьется, в отличие от стекла.

Пробирки BD Vacutainer® защищены безлатексными крышками BD Hemogard™, имеющими цветовые коды в соответствии с типом содержащихся в них химических реагентов. Коды отвечают международным стандартам NCCLS и ISO 6710.

Пробирки BD Vacutainer® снабжены этикетками, содержащими информацию о реактиве, объеме отбираемой пробы, номере партии и т. д. Этикетки также отвечают международным стандартам NCCLS и ISO 6710.

_{Иглы BD Vacutainer}

®

Безопасная игла BD Vacutainer® Eclipse™ обладает дополни­тельным защитным колпачком, что значительно снижает риск случайной травмы от укола иглы и передачи инфекции. Колпа­чок приводится в действие одной рукой и не требует переучи­вания персонала. Эти иглы выпускаются калибром 21 и 22 G.

Комплекты BD Vacutainer Safety-Lok™ специально разра­ботаны для забора крови из труднодоступных вен. Комплекты включают иглы калибром 21, 23 и 25 G, а также безлатексные катетеры разной длины. Иглы снабжены встроенным защит­ным колпачком и имеют большие «крылышки» для удобства фиксации при введении в вену.

Компания BD также производит одноразовые педиатричес­кие иглы BD Vacutainer® Neosyte™ с выступами в виде кры­лышек. Кроме того, в ассортименте имеются различные адап­теры для отбора проб крови из внутривенных катетеров в про­бирки BD Vacutainer® у одного пациента.

Держатели BD Vacutainer

®

Компания BD призводит адаптер для отбора нескольких проб крови из артерий, а также устройство для бесконтактного и безыгольного переноса крови из шприца в вакуумную пробирку или бутылку для гемокультур. Оба приспособления представляют собой люэровский адаптер с присоединеным к нему держателем BD Vacutainer®.

Аксессуары BD Vacutainer®

• Одноразовые безлатексные жгуты BD Vacutainer" Stretch™ и многоразовые жгуты BD Vacutainer® Pronto™;

• Контейнеры для утилизации использованных игл на 0,7 л, 1 л, 3 л и 13 л;

• Насадки для приготовления мазков крови из закрытой пробирки.

Процедура взятия крови с помощью вакуумной системы BD Vacutainer®

Держа иглу рукой за цветную часть, снять белый защитный колпачок, закрывающий второй конец иглы в резиновом клапане.

После прекращения тока крови в пробирку ее необходимо извлечь из держателя. Пробирку легче извлекать, если большой палец правой руки упирается в выступ держателя, как это показано на рисунке.

Если нужно набрать несколько пробирок для разных анализов, пробир­ку BD Vacutainer® можно легко заменить на следующую. Резиновый клапан на игле препятствует вытеканию крови. Сразу после взятия крови в пробирку BD Vacutainer® с добавками ее следует несколько раз перевернуть, не встряхивая, для лучшего перемешивания крови с реак­тивом.

После взятия проб иглу, не вынимая ее из держателя, следует сбросить в контейнер для использованных острых предметов.

Часто задаваемые вопросы

Ознакомиться с системой можно за очень короткое время. Компания BD готова предоставить для этого все необходимые тренинговые материалы и обеспечить консультации специалистов. Использование системы нужно начинать с «хороших» вен, и уже после взятия нескольких проб вы сможете оценить преимущества работы с ней.

Причиной возникновения гемолиза в пробирке может стать слишком долгое сдавливание вены жгутом. Его необходимо снять сразу же после начала поступления крови в пробирку, и не позднее, чем через 1 минуту после наложения. Пробирку следует вынимать из держателя только после прекращения тока крови, при этом она должны заполняться на ±10% от указанного на этикетке объема наполнения. Пробу в пробирке следует пере­мешивать, не встряхивая.

3. Применима ли система забора крови BD Vacutainer® для труднодоступных вен?

Для трудных случаев забора крови компания BD разра­ботала специальные комплекты BD Vacutainer"¹ Safety-

Lok™ с тонкими иглами и катетерами разной длины. Эти комплекты могут применяться, например, на тыльной стороне руки, и особенно удобны в работе с пожилыми людьми, новорожденными и маленькими детьми.

Выньте пробирку из держателя, оставив иглу в вене. Когда вена вновь наполнится, снова вставьте ту же пробирку в держатель и продолжите процедуру взятия крови.

5. Как определить, что игла находится в вене?

Если игла находится в вене, кровь начинает поступать в пробирку, как только вы вставляете ее в держатель и насаживаете на иглу. Если тока крови нет, действуйте так же, как если бы вы работали со шприцем. Пока конец иглы находится под кожей, вакуум в пробирке сохранит­ся. При правильном попадании иглы в вену кровь сразу же начнет поступать в пробирку.

Описание пробирок BD Vacutainer

Преаналитические параметры

От 46 до 68% всех лабораторных ошибок возникают на преаналитическом этапе, а 12,5% пре-аналитических лабораторных погрешностей могут привести к ошибочному медицинскому заключению². Чтобы обеспечить максимальную точность результатов и снизить количество повторных проб, важно соблюдать процедуру забора крови и такие преаналитические параметры, как порядок отбора крови в пробирки, время наложения жгута, перемешивание, заполнение пробирок, их хранение и транспортировка, время свертывания, скорость центрифугирования и др.

Порядок забора крови в пробирки BD Vacutainer®

Сыворотка, Коагул, СОЭ Сыворотка, Сыворотка, Гепарин;

стекл. пластм. гель плазма,

гель

ЭДГА

Перекрест. Фторид, Следовые проба оксалат элементы

Хранение и утилизация систем BD Vacutainer®

Все пробирки следует хранить при температуре 4-25" С, если на этикетке упаковки не указана другая температура. Большие перепады температур могут снизить эффективность пробирок и спровоцировать неверные результаты анализов. Пробирки следует хранить вдали от солнечного света и источников тепла.

Согласно действующим инструкциям, системы забора крови BD Vacutainer⁹ утилизируются аналогично одноразовым шприцам, а именно:

• использованные иглы утилизируются в специальных контейнерах для игл;

• держатели автоклавируются при 121' С и давлении 1,2 атм, они также могут утилизироваться в специальных контейнерах для острых предметов либо сжигаться;

• герметично закрытые пробирки автоклавируются при 12V С и давлении 1,2 атм либо сжигаются.

Литература

1. Правила забора и доставки биоматериала для лабораторных исследований. Под ред. Е.В. Никушкина, М.И. Крючкова, В.В. Макаровского — М.: МЦ Управления делами Президента РФ, Центр, ЦКБ УД Президента РФ,

1997. С. 47.

2. Кудрявцева Л.В., Конарева Т.Н., Горбатенко Е.В. Правила взятия и доставки биоматериала для лабораторных исследований в НПФ «Литех» (методические рекомендации для врачей-клиницицистов). — М.: НПФ «Литех»,

2001. С. 49.

3. Клиническая лабораторная аналитика. Под редакцией В.В. Меньшикова. — М.: Агат-Мед, 2003. Т. IV. С. 813.

4. Бемусова А.К., Сербина Л.А. Практические навыки и умения медсестры инфекционного профиля. — Ростов-на-Дону: Феникс, 2003. С. 127.

5. Клиническая лабораторная диагностика. Сост. В.Н. Ослопов, А.Р.Садыкова, Р.А. Абдулхаков. 3-е изд. — М.: Медпрессинформ, 2005. С. 64.

3. В.В. Меньшиков, Т.И. Лукичева, О.Г. Кадашева. Лабораторное обеспечение первичной медицинской помощи. Научно-практический симпозиум «Объем, организация и экономика лабораторного обеспечения медицинской помощи в условиях модернизации здравоохранения». — М., 2006. С. 64.

4. B.C. Шидловский. Охрана труда в организациях системы здравоохранения РФ (практическое пособие). — М.: ООО Актив-пресс, 2006. С.130—136.

5. Приказ Управления здравоохранения Администрации города Челябинска "Об организации лабораторного обследования на ВИЧ-инфекцию населения г. Челябинска" от 27 января 2006 года № 12.

49