- •96. Роль микробной флоры полости рта при заболеваниях пародонта
- •Микрофлора здорового пародонта
- •3.1. Способы забора материала для исследования микрофлоры полости рта
- •I этап бактериологического исследования - получение изолированных колоний.
- •II этап бактериологического метода –выделение чистой культуры
- •III этап бактериологического метода – идентификация чистой культуры.
- •99. Исследование зубной бляшки
- •Методика взятия материала зубной бляшки
- •Методика дисперсии материала бляшки
- •101. Микробная флора при одонтогенном воспалении
- •Основные возбудители
- •Хронические очаги инфекции в полости рта
- •Антигенное воздействие микробов на организм
- •Кандидоз
- •Туберкулез
- •Скарлатина.
- •Сифилис.
3.1. Способы забора материала для исследования микрофлоры полости рта
При диагностике заболеваний полости рта, вызванных патогенными микроорганизмами (дифтерийной палочкой, микобактериями, нейссериями, дрожжеподобными грибами рода Candida) используют традиционные методы: микроскопический, бактериологический, серологический, биологический, кожно-аллергические пробы.
Использование микробиологических методов при оппортунистических процессах (кариесе, пародонтите, афтозном стоматите и др.) направлено не на диагностику болезни, а на изучение этиологии и патогенеза этих весьма распространенных заболеваний и, соответственно, на рациональную их терапию.
При одонтогенных воспалительных процессах (периодонтитах, абсцессах, флегмонах и др.) эти методы могут быть использованы для контроля проводимого лечения, прогнозирования исхода болезни и определения чувствительности микробной ассоциации к антибиотикам.
При стоматологических заболеваниях в качестве исследуемого материала можно изучать зубную бляшку, ротовую жидкость, содержимое десневого желобка или патологического десневого кармана, материал из кариозной полости, корневых каналов, гранулемы, гнойное отделяемое, пунктаты, соскобы и мазки-отпечатки со слизистой оболочки или элементов поражения.
В практической стоматологии чаще исследуют мазки-отпечатки со слизистой оболочки, гнойное отделяемое, пунктаты. Учитывая, что полость рта омывается ротовой жидкостью, содержащей определенные виды бактерий, при заборе материала из различных участков следует исключить попадание в пробу слюны. Для этого исследуемую область обкладывают стерильными ватными тампонами. Перед забором материала нельзя обрабатывать полость рта бактерицидными препаратами, а также необходимо выяснить у больного, не принимал ли он в течение последних 3-х недель антибиотики.
Учитывая, что большая часть резидентов полости рта являются облигатными анаэробами, при взятии материала и его транспортировке необходимо соблюдать условия анаэробиоза.
Ведущую роль в развитии воспалительных заболеваний полости рта и челюстно-лицевой области играют облигатно-анаэробные и микроаэрофильные бактерии, что определяет необходимость обязательного использования техники анаэробного культивирования при диагностике данной патологии. Особое значение это имеет при гнойно-воспалительных процессах (флегмонах, абсцессах, фасциитах, остеомиелитах челюстно-лицевой области), когда адекватная антибактериальная терапия с учетом чувствительности выделенных из воспалительного очага бактерий является залогом успешного лечения больного в послеоперационном периоде.
Бактериологический метод исследования материала при данной патологии включает обычно параллельное поэтапное исследование в аэробных (традиционным методом) и анаэробных условиях. Для создания анаэробных условий в настоящее время обычно используют анаэростаты и газбоксы. Они представляют собой герметичные камеры, из которых с помощью вакуум-насоса откачивают атмосферный воздух, а затем заполняют бескислородными газовыми смесями. Оптимальной для развития облигатных анаэробов является смесь, состоящая из 80% азота, 10% углекислого газа, 10% водорода. Для нейтрализации остаточного кислорода в анаэростаты помещают палладиевые катализаторы, пирогаллол или другие химически редуцирующие кислород соединения.
Патологический материал при абсцессах, флегмонах и фасциитах берут пункцией с помощью толстой иглы и доставляют в лабораторию в шприце (воткнув иглу в стерильную резиновую пробку) или поместив в транспортную среду (Стюарта или тиогликолевую). В процессе оперативного вмешательства материал забирают с помощью стандартного ватного тампона, который помещают в транспортную среду. Транспортные среды, благодаря особенностям своего состава, обеспечивают резкое снижение метаболизма микробов и возможность длительного сохранения их жизнеспособности (от 6 до 12 часов).