
- •Руководство
- •Раздел «морфология микроорганизмов» Тема: Виды микроскопии: назначение и принципы применения
- •Вопросы для самоподготовки
- •Литература
- •Светопольная микроскопия. Устройство светопольного микроскопа ипорядок работы с ним
- •Темнопольная микроскопия
- •Фазово-контрастная и аноптральная микроскопия
- •Люминесцентная микроскопия
- •Электронная микроскопия
- •Вопросы для самоподготовки
- •Литература
- •Подготовка предметных и покровных стекол
- •Исследование микроорганизмов в живом состоянии
- •Препараты фиксированных окрашенных клеток. Приготовление мазка и фиксация препарата
- •Окраска препаратов
- •Виды красителей
- •Методы окраски
- •Окраска фиксированных препаратов микроорганизмов
- •Окраска разведенным карболовым фуксином
- •Приготовление и окраска препаратов для люминесцентной микроскопии
- •Сложные или дифференциальные методы окраски микробов Дифференциально-диагностический метод окраски по Граму
- •Видоизменение окраски Грама по а. И. Синеву
- •Окраска кислото- и спиртоустойчивых микробов
- •Окраска по Цилю-Нильсену
- •Флуорохромирование аурамином
- •Модификация Шеффлера и Фултона
- •Окраска по Биттеру
- •Окраска капсул
- •Метод Бурри-Гинса
- •Способ Михина
- •Метод Леффлера
- •Серебрение по Морозову
- •Метод Грея
- •Окраска по Шенку
- •Метод Петрука
- •Окраска включений в бактериях Окраска метахроматических зерен (волютина)
- •Метод Нейссера
- •Метод Пью
- •Окраска по Мейеру
- •Флуорохромирование волютина корифосфином
- •Окраска по Раскиной
- •Окраска на грамофильную зернистость Метод Муха
- •Метод Козлова
- •Выявление клеточной стенки бактерий
- •Метод Пикарского
- •Окраска риккетсий Метод Романовского-Гимза
- •Метод Здродовского
- •Окраска хламидий
- •Метод Хайденхайна
- •Окраска йодом и йод-эозином
- •Негативная окраска по Бурри
- •Дифференциальное окрашивание мицелия
- •Окрашивание ядерного аппарата Метод Фельгена
- •Трехцветное окрашивание по Флеммингу
- •Окрашивание гематоксилином Делафильда
- •Окрашивание гематоксилином и эозином (или эритрозином)
- •Микроскопия вирусов
- •Окраска препаратов Окраска по Романовскому
- •Окраска по Муромцеву
- •Окраска по Морозову
- •Окраска по Селлеру
- •Окраска по Пигаревскому
- •Задания к лабораторному занятию
- •Раздел: “физиология микроорганизмов”
- •Вопросы для самоподготовки
- •Литература
- •Требования, предъявляемые к питательным средам
- •Выделение чистых культур микроорганизмов.
- •Методы выделения чистых культур аэробных микроорганизмов.
- •Методы, основанные на принципах механического разделения микроорганизмов
- •Задания к лабораторному занятию
- •Вопросы для самоподготовки
- •Литература
- •Характер роста микроорганизмов на плотных питательных средах
- •Пигменты микроорганизмов
- •Характер роста микроорганизмов на жидких питательных средах
- •Второй этап выделения чистой культуры
- •Задания к лабораторному занятию
- •Вопросы для самоподготовки
- •Литература
- •Сахаролитические ферменты микробов
- •Протеолитические ферменты микробов
- •Определение индола в культуре микроорганизмов
- •Определение сероводорода
- •Третий этап выделения чистой культуры.
- •Задания к лабораторному занятию
- •Вопросы для самоподготовки
- •Литература
- •Методы культивирования анаэробных микроорганизмов
- •Физические методы
- •Химический метод
- •Биологический метод
- •Задания к лабораторному занятию
- •Вопросы для самоподготовки
- •Литература
- •Задания к лабораторному занятию
- •Методы санитарно-микробиологического анализа воды.
- •Задания к лабораторному занятию
- •Вопросы для самоподготовки
- •Литература
- •Задания к лабораторному занятию
- •Вопросы для самоподготовки
- •Литература
- •Задания к лабораторному занятию
- •Вопросы для самоподготовки
- •Литература
- •Стерилизация. Методы стерилизации.
- •Задания к лабораторному занятию
- •Раздел: ”химиотерапия инфекционных заболеваний ”.
- •Вопросы для самоподготовки
- •Литература
- •Питательные среды для определения чувствительности микробов к антибактериальным химиопрепаратам
- •Определение чувствительности бактерий к антибиотикам методом “бумажных дисков”
- •Метод двукратных серийных разведений в жидкой питательной среде
- •Метод двукратных серийных разведений в плотной питательной среде
- •Определение чувствительности микроорганизмов к сульфаниламидам методом разведений в жидких средах
- •Определение чувствительности микроорганизмов к сульфаниламидам методом разведений в плотных средах
- •Определение чувствительности микроорганизмов к нитрофурановым препаратам методом разведений в жидких средах
- •Определение чувствительности микроорганизмов к энтеросептолу методом разведений в жидких средах
- •Ускоренные методы определения чувствительности микробов к антибиотикам.
- •Задания к лабораторному занятию
- •Раздел: "фитопатогенные микроорганизмы. Методы микробиологического контроля лекарственного сырья и готовых лекарственных средств
- •Вопросы для самоподготовки
- •Литература
- •Определение микробиологической чистоты лекарственного сырья и готовых лекарственных средств, не обладающих антимикробными свойствами
- •Подготовка образцов для анализа
- •Питательные среды
- •Определение общего числа бактерий
- •Определение количества плесневых и дрожжевых грибов
- •Определение присутствия бактерий семейства Enterobacteriaceae
- •Определение присутствия s. Aureus и p.Aeruginosa
- •Определение микробиологической частоты нестерильных лекарственных средств, обладающих антимикробным действием
- •Количественное определение бактерий и грибов
- •Количественное определение бактерий сем. Enterobacteriaceae (e.Coli)
- •Задания к лабораторному занятию
- •Вопросы для самоподготовки.
- •Литература
- •Определение стерильности лекарственных средств, субстанций, вспомогательных веществ методом прямого посева
- •Определение стерильности лекарственных средств, субстанций и вспомогательных веществ методом мембранной фильтрации
- •Задания к лабораторному занятию
- •Определение стерильности лекарственного средства
- •Раздел: « инфекция и иммунитет»
- •Вопросы для самоподготовки
- •Литература
- •Экспериментальная инфекция
- •Выбор и подготовка к заражению лабораторных животных
- •Методы заражения лабораторных животных
- •Вскрытие зараженных лабораторных животных
- •Задания к лабораторному занятию
- •Вопросы для самоподготовки
- •Литература
- •Основы иммунодиагностики
- •Сбор иммунологического анамнеза и характеристика основных иммунопатологических синдромов
- •Диагностические тесты, проводимые непосредственно у больного (тесты in vivo)
- •Основные тесты лабораторной иммунодиагностики
- •Методы исследования лимфоцитов
- •Методы, основанные на изучении поверхностных маркеров
- •Исследование функционального состояния лимфоцитов
- •Реакция бласттрансформации лимфоцитов (рбтл)
- •Оценка интенсивности продукции цитокинов
- •Оценка гиперчувствительности замедленного типа
- •Оценка функционального состояния фагоцитов
- •Задания к лабораторному занятию
- •Вопросы для самоподготовки
- •Литература
- •Реакции антиген-антитело. Химические основы
- •Определение аффинности антител
- •Основные методы выявления антител и антигенов
- •Методы, основанные на реакции преципитации
- •Двойная радиальная иммунодиффузия
- •Иммуноэлектрофорез
- •Электроиммунный анализ
- •Встречный электрофорез
- •Методы, основанные на реакции агглютинации
- •Реакция непрямой агглютинации (гемагглютинации) (рнга)
- •Реакция торможения непрямой гемагглютинации (ртнга)
- •Методы, основанные на использовании меченых реагентов
- •Радиоиммунологические методы
- •Метод иммунного окрашивания после переноса на нитроцеллюлозные мембраны (иммуноблоттинг)
- •Иммуноферментные методы
- •Иммунофлуоресцентные методы
- •Применение двойной флуоресцентной метки
- •Реакция лизиса
- •Реакция связывания комплемента
- •Реакция нейтрализации
- •Феномен иммуноклеточного прилипания
- •Задания к лабораторному занятию.
- •Вопросы для самоподготовки
- •Литература
- •Общая характеристика, основы производства и применения бактерийных и вирусных препаратов.
- •Этапы создания искусственной вакцины
- •Аспекты gmp
- •Персонал
- •Помещения и оборудование
- •Помещения для животных и уход за ними
- •Документация
- •Производство Исходные материалы
- •Партии посевного материала и система банков клеток
- •Принципы работы
- •Контроль качества
- •Методы и условия введения препаратов
- •Методика введения гетерогенных (из крови животных) сывороток и иммуноглобулинов с предварительной внутрикожной пробой.
- •Реактогенность бактерийных и вирусных препаратов
- •Общая характеристика реактогенности
- •Оценка и учет послепрививочных реакций
- •Основные клинические формы поствакцинальных осложнении
- •Иммуномодулирующие препараты
- •Иммуностимулирующие препараты
- •Нестероидные противовоспалительные препараты (нпвп)
- •Иммунодепрессанты
- •Задания к лабораторному занятию
- •Министерство здравоохранения Украины Национальная фармацевтическая академия Украины Кафедра микробиологии
- •1 Мл содержит 1 млрд микробных тел
- •Иммунизация мышей антигеном.
Стерилизация. Методы стерилизации.
Стерилизация– это процесс умерщвления в объекте или удаления из него микроорганизмов всех видов, находящихся на всех стадиях развития.
Для стерилизации используют следующие методы:
термические;
химические;
стерилизация фильтрованием;
радиационный метод стерилизации.
Термические методы стерилизации.
Паровой метод стерилизации осуществляют насыщенным водяным паром при избыточном давлении 0,11 Мпа (1,1 кгс/см2) и температуре 120ºС; 0,20 Мпа (2 кгс/см2) и температуре 132ºС. Стерилизацию проводят в паровых стерилизаторах – автоклавах. Совместное действие высокой температуры и пара обеспечивает высокую эффективность данного способа. При этом погибают вегетативные клетки и споры микроорганизмов.
Стерилизация паром при температуре 120ºС рекомендуется для растворов лекарственных веществ. Время стерилизационной выдержки зависит от физико-химических свойств препарата, объема раствора и используемого оборудования.
-
Объем образца, мл
Минимальное время стерилизационной
выдержки, мин
До 100
от 100 до 500
от 500 до 1000
8
12
15
Жиры и масла в герметично укупоренных сосудах стерилизуют при 120ºС в течение 2 ч.
Этим методом стерилизуют также изделия из стекла, фарфора, металла, перевязочные и вспомогательные материалы (вата, марля, бинты, фильтрованная бумага, спецодежда и др.). Время стерилизационной выдержки при температуре 120ºС – 45 мин, при 132ºС – 20 мин. Для стерилизации изделий из резины следует использовать первый из указанных режимов.
Воздушный метод стерилизации осуществляют сухим горячим воздухом в воздушных стерилизаторах при температуре 160, 180 или 200ºС.
Эффективность этого метода стерилизации зависит от температуры, времени, степени теплопроводности стерилизуемых объектов и правильности расположения их внутри стерилизационной камеры для обеспечения свободной циркуляции горячего воздуха.
Воздушный метод используют для стерилизации термостойких порошкообразных веществ (натрия хлорида, окиси цинка, талька, белой глины и др.).
Масса образца, г |
Температура,ºС |
Минимальное время стерилизационной выдержки, мин |
до 25
от 25 до 100
от 100 до 200
|
180 200 180 200 180 200 |
30 10 40 20 60 30 |
-
Масса образца, г
Температура,ºС
Минимальное время стерилизационной выдержки, мин
до 100
от 100 до 500
180
200
180
200
30
15
40
20
Изделия из стекла, металла, силиконовой резины, фарфора, установки для стерилизующего фильтрования с фильтрами и приемники фильтрата стерилизуют при 180 ºС в течение 60 мин. или при 160 ºС в течение 2,5 час.
Прокаливанием на пламенистерилизуют бактериальные петли, пинцеты, предметные стекла и некоторые мелкие инструменты (иглы, крючки, лопаточки). Температура пламени горелки достигает 1560 ºС. При прокаливании происходит сгорание микроорганизмов и их спор.
Кипячение – простейший способ стерилизации игл, шприцев, хирургических инструментов, резиновых трубок. Для этого применяют специальные стерилизаторы для инструментов. Стерилизацию проводят в течение 20-30 мин. Для устранения жесткости воды и повышения температуры кипения в воду полезно добавить 1-2% бикарбоната натрия. Однако следует помнить, что споры некоторых бацилл и вирусные частицы (возбудитель гепатита) могут выдерживать кипячение в течение нескольких часов.
Стерилизацию текучим паромприменяют в тех случаях, когда стерилизуемый материал изменяет свои свойства при температуре выше 100ºС. таким способом стерилизуют растворы, содержащие углеводы, витамины, молоко и др. используют автоклав с незакрепленной крышкой и открытым паровыпускным краном или специальный аппарат Коха. Поскольку при 100 ºС многие споровые формы сохраняют свою жизнеспособность, прибегают к дробной стерилизации, нагревая стерилизуемый материал текучим паром при 100 ºС 30 минут 3 раза через каждые 24 ч с выдерживанием стерилизуемых объектов между стерилизациями при 18-37 ºС. за это время споровые формы микробов прорастают и превращаются в вегетативные, которые погибают при повторных прогревах.
Тиндализация – вид дробной стерилизации, который применяют к объектам, содержащим вещества, разлагающиеся и денатурирующие при 100ºС (витамины, некоторые глазные капли, питательные среды). При этом нагревают стерилизуемый объект на водяных банях с терморегуляторами при 60-65 ºС 5 раз или при 70-80 ºС 3 раза по 60 мин с выдерживанием между стерилизациями при температуре 18-37 ºС. недостаток дробной стерилизации – возможность образования спор вегетативными клетками, образовавшимися из проросших спор.
Химические методы стерилизации.Метод рекомендуется для изделий из полимерных материалов, резины, стекла, коррозионно-стойких материалов.
Для газовой стерилизациииспользуют окись этилена или ее смесь с различными флегматизаторами: бромистым метилом, двуокисью углерода, хладонами (фреонами) и др.Cтерилизацию проводят в газовых стерилизаторах или микроанаэростатах при следующих режимах:
- окись этилена – стерилизующаяся доза 1200 мг/дм3, температура стерилизации не менее 18 ºС, относительная влажность 80%, время стерилизационной выдержки- 16 ч (микроанаэростат);
- смесь ОБ (смесь окиси этилена и бромистого метила в весовом соотношении 1:2,5);
а) стерилизующая доза 2000 мг/дм3, температура стерилизации 55ºС, относительная влажность 80%, время стерилизационной выдержки – 4 ч;
б) стерилизующая доза 2000 мг/дм3, температура стерилизации не менее 18ºС, относительная влажность 80%, время стерилизационной выдержки – 16 ч при той же относительной влажности (микроанаэростат)
В связи с токсичностью окиси этилена и бромистого метила применение стерилизованных этими газами изделий допускается только после их дегазации, т. е. выдержки в вентилируемом помещении до допустимых остаточных количеств, указанных в НТД.
Для химической стерилизации растворамииспользуют перекись водорода и надкислоты.
При стерилизации 6% раствором перекиси водорода температура стерилизующего раствора должна быть не менее 18ºС, время стерилизационной выдержки – 6 ч; при температуре 50ºС – 3 ч.
При стерилизации 1% раствором дезоксана-1 ( по надуксусной кислоте) температура стерилизующего раствора должна быть не менее 18ºС, время стерилизационной выдержки – 45 мин.
Химическую стерилизацию растворами проводят в закрытых емкостях из стекла, пластмассы или емкостях, покрытых неповрежденной эмалью, при полном погружении изделия в раствор на время стерилизационной выдержки. После этого изделие должно быть промыто стерильной водой в асептических условиях.
Стерилизация фильтрованием.Растворы термолабильных веществ (растворы белков, сыворотки, некоторые витамины и др.) стерилизуют фильтрованием с помощью мембранных и глубинных фильтров, задерживающих микроорганизмы и их споры. Мембранные фильтры характеризуются ситовым механизмом задержания и постоянным размером пор при эксплуатации.
Максимальный диаметр пор стерилизующего фильтра не превышает 0,3 мкм. Мембранные фильтры изготавливаются из эфиров целлюлозы (ацетилцеллюлозы, этицеллюлозы, нитроцеллюлозы ) и их смесей, а также из политетрафторэтилена (тефлона), поливинилхлорида, акрила, нейлона и др. полимеров.
Глубинные фильтры изготовляют из волокнистых материалов (хлопок, шерсть, стекловолокно, смесь целлюлозы и асбеста и др.). эти фильтры имеют толщину 2-6 мм и удерживают микроорганизмы и частицы за счет адсорбционного, ситового и инерционного механизмов. Глубинные фильтры могут быть использованы для стерилизации растворов, в том числе содержащих микробные тела размером 0,3 мкм.
Задержанные в глубине фильтра микроорганизмы могут прорастать в процессе длительной фильтрации и попадать затем в фильтруемый раствор. Кроме того, возможен отрыв волокон фильтра и загрязнение ими фильтра. Особенно опасны в этом отношении фильтры из асбеста и стекловолокна, поэтому такие фильтры не должны применяться для стерилизации лекарственных средств, вводимых парентерально.
Стерилизацию фильтрованием и разлив раствора проводят в асептических условиях.
В лабораторной практике широко применяется фильтрация материала с помощью фильтра Зейтца (асбестовые фильтры). Эти фильтры помещают в разъемную часть цилиндрической воронки Зейтца, обе части которой скрепляются барашкообразными болтами. Трубчатый конец воронки через резиновую пробку вставляют в колбу Бунзена. Собранная система с асбестовым фильтром стерилизуется в автоклаве.
Фильтруемую жидкость наливают в металлический цилиндр аппарата, а из колбы приемника откачивают воздух, под влиянием разности давлений жидкость проходит через фильтр.
Радиационный метод стерилизации.Радиационный метод стерилизации может быть рекомендован для изделий из пластмасс, изделий одноразового использования в упаковке, перевязочных материалов, некоторых лекарственных средств и др.
Облучение объектов в конечной упаковке производят на гамма-установках, ускорителях электронов и др. источниках ионизирующего излучения дозой 25 кГр или др. дозами в зависимости от конкретных условий.