Добавил:
Upload Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:

mikrobiologia1

.docx
Скачиваний:
16
Добавлен:
01.04.2015
Размер:
167.29 Кб
Скачать

65.Способы окраски препарата. Простой способ:на поверхность мазка наносят капли красителя. Окрашивание происходит за 2-3 минуты. Краску смывают водой, мазок высушивают фильтровальной бумагой. Сложный способ: в определённой последовательности наносят несколько красителей, иногда с химическими реактивами.Например, окрашивание по Грамму:

  • генцианвиолет (карболовый раствор) 2 мин.

  • промыть водой

  • раствор Люголя 2 мин.

  • Спирт 96% 20-40сек.

  • Промыть водой

  • фуксин Пфейфера 2 мин.

  • Промыть водой

высушить мазок фильтровальной бумагой

73. Техника взятия проб воды и почвы.Почва-основная среда обитания для многих микроорганизмов.В 1 грамме почвы насчитывается от 1млна до 1 млрда микробных клеток.М/орг-мы расположены в почве неравномерно,поэтому для их учёта в этой среде отбирают из различных мест по диагонали участка на глубине 10-30см сиеотльными инструментами (почвенный бур,лопатка).Пробы почвы помещают в стерильные бумажные пакеты. Масса отобранной почвы для пробы должна быть не менее 200 гр.Взятие составляют в лаборатории,где из индивидуальных проб готовят общую пробу,смешивая их в стерильной банке. Пробы воды отбирают с соблюдением стерильности в стерильную посуду с притёртыми пробками.Воду спускают 5-10мин.Края крана обжигают пламенем.Из открытых водоёмов воду отбирают на уровне 10-15 см от дна.В проточных водоёмах пробы отбирают у берега и в центре течения,используя спец. Приборы-батометры. Анализ выполняют не позднее 2 часов с момента взятия пробы.При её исследовании определяют микробное число и количество бактерий группы кишечной палочки.

68Последовательность приготовления придавленной капли.

Придавленную каплю готовят на обычном предметном стекле. Для этого наносят каплю культуры микробов, накрывают покровным стеклом и рассматривают. При положительном таксисе движение происходит к раздражителю, при отрицат.в обратном направлении. При изучении подвижности необходимо отличать истинное движение от броуновского, при котором микробы остаются на месте

67.Последовательность приготовления висячей капли.Вис.каплю готовят на предметн.стекле с углублением(луночкой).Край луночки смазывают тонк.слоем вазелина. Микроорган.наносят на покровное стекло.Если они выращены в жидк.среде.то берут каплю такой кул-ры,если на плотной,то вначале на покровное стекло наносят каплю изотонического р-ра NaCl ,а затем в неё кул-ру микробов. Предмет.стекло переворачивают на 180С и аккуратно опускают на покровное так,чтобы капля оказалась в центре углубления,после чего его ствят на прежнее положение.В таком препарате капля подвешена с внутр. Поверхности покровн.стекла и нах-ся в герметически закрытой влажн.камере. Это позволяет наблюдать за движением микробов в течение длит.времени. Препарат рассматривают в слегка затемн.поле(диафрагму сужают),что увеличивает контрастность неокрашн.форм

69.Метод определения размеров м.о.

Измерения микробов принято микрометр=10-6м. 1.Объектный микрометр представляет собой предметн.стекло, на котором нанесена линейка в 1мм, разделенная на 100 частей. Цена одного деления=10-5м, или 10мкм. Объектный микрометр используется для определения величины одного деления окулярного микрометра. 2.Окулярный микрометр имеет форму круглой пластинки, на которой нанесена шкала произвольных делений. Длина шкалы 5мм, на нее нанесено 50делений. Окулярный микрометр служит для измерения объектов(микробов). Его вставляют между линзами окуляра делениями вниз, для чего вывинчивают глазную линзу. Объектный микрометр помещают на предметн.столик, устанавливают фокус и совмещают деление шкал микрометров. При работе с иммерсионной сист. На объектный микрометр наносят кедровое масло, для того чтобы определить размер одного деления окулярного микрометра нужно:5 делений объектного микрометра совместить с 30делениями окулярного микром. Потом определять размер микробов.

79.Микроорганизмы – продуценты белка. Большинство микроорганизмов, за небольшим исключением, обладают способностью к синтезу всех аминокислот. Биосинтез аминокислот, являющийся первым этапом биосинтеза белка, представляет собой яркий пример тесной связи катаболизма и биосинтеза. Предшественниками для биосинтеза аминокислот служат промежуточные продукты ЦТК и пенто-зофосфатного цикла. Так, при включении в цикл трикарбоновых кислот пировиноградная кислота, трансформируясь в щавелевоуксусную и кетоглутаровую, дает начало аспарагиновой и глутаминовой кислотам, из которых впоследствии образуются аспарагин, глутамин, а затем треонин, изолейцин, метионин, лизин, аргинин и пролин. Для биосинтеза белка необходима предварительная химическая активация аминокислот, которая требует расхода энергии АТФ и заключается в присоединении аминокислоты к ферменту-переносчику. Существует 20 таких ферментов, каждый из которых специфичен для данной аминокислоты.

77.Выделение бактерий в чистую культуру

Под чистой культурой понимается бактериал масса, состоящая из клеток с одинаковыми морфологическими,культуральными и физиологическими свойствами,т.е. культура культура микроорганизма одного вида,произошедшая из одной клетки(колонии).Выделение бактерий в чистую культуру необходимо для изучения их особенностей и широко используются в микробиол.практике. В закрытой чашке Петри карандашом по стеклу отмечают колонию,предназначенную для изучения. Сначала колонию исследуют невооружённым глазом,а затем с помощью окуляра от микроскопа. Колония не должна соприкасаться с др.колониями,внутри неё и под ней (в толще агара) не должно быть роста посторонних микроорганизмов.После описания из колонии готовят окрашенный препарат (мазок на стекле) и рассматривают под микроскопом.

76. Микробиологический анализ почвы. Микроорганизмы в почве расположены неравномерно,поэтому для их учета в этой среде образцы отбирают из различных мест по диагонале участка(обычно не менее чем в 4-5 точках)на глубине 10-30 см стерильным инструментом(почвенный бур,лопатка).Каждый раз после отбора очередной пробы рабочую поверхность инструмента стерилизуют в пламени.Пробы почвы помещают в стерил.пакеты из крафт-бумаги,массы отобранной почвы должна быть не менее 200 грамм.Взятые образцы немедленно доставляют в лабораторию где из индивидуал.проб готовят общую пробу смешивая образцы в стерил.банке. Из средней пробы на весах берут 1 гр почвы и переносят в колбу с 99 мл стерил.воды.Из этого разведения 1 мл переносят стерил.пипеткой в пробирку с 9 мл стерил.воды.Разведения почвен.суспензии готовят для того чтобы при посеве на чашке Петри вырастало от 50 до 150 колоний.Из последних разведений по 1 мл вносят в стерил.чашки(не менее 3 чашек)после чего заливают по 10 мл расплавленного и охлажденного до 45С МПА.Чашки с застывшей средой переворачивают вверх дном и ставят в термостат.

75.Микробиологический анализ воды(кишечная палка=).Кишеч.палка явл-ся индикатором фекального загрязнения воды болезнетворными микробами-возбудителями кишечн.инфекции чел-ка.Т.о.,киш.палка служит санитарно-показательным микроорганизмом воды. Коли-идекс-это число киш.палок,обнаружен. в 1 л исследуемой воды.Определяют методом мембранных фильтров,через к-ые фильтруют определен.объём воды.После культивирования при тем-ре 37С через 24 часа подсчитывают подсчитывают колонии красного цвета,из 2-3 колоний берут материал для мазков,окрашивают их по Граму и микроскопируют. Коли-титр-это наименьший объем воды,содержащий киш.палку,определяется методом бродильных проб,сущ-ют 2х и 3х этажные бродильные методы с использованием среды Булира,среды Эйкмана и розоловой среды.

74.Микробиологический анализ воды(микробное число=). При исследовании воды открытых водоемов высевают по 1 мл из приготовлен.в стерил.воде 10 кратных разведений исследуемой пробы. Разведение вносят стерил.пипеткой в пустые чашки Петри,в кот-ые затем заливают расплавлен. теплый МПА с тем-рой 45С.Воду и МПА тщательно перемешивают и после застывания выдерживают в термостате.Затем подсчитывают выросшие колонии. бщее число колоний умножают на разведения,затем выводят среднее число колоний т.о.устанавливают микроб.число исследуемой пробы

78.Минерализация углеродосодержащих отходов. Стабильность хим.активности МО зависит от условий их пребывания в субстратах.Смешанная микрофлора начальног периода компостирования постепенно селектируется технологическими условиями переработки орг.соединений,и к завершению процесса остаются наиболее активные и устойчивые МО,обладающие защитной реа-ей.Физиологич.смысл микробиологич.трансформации отходов может быть различным в зависимости от вида МО и используемого субстрата. Многообразие и полифункциональность ферментных систем МО,атакующих необычные для микробной клетки вещ-ва среды,сост-ют функцион.основу микробиологич.превращений разнообразных по хим.составу отходов.Биологич.смысл микробной трансформации отходов заключ-ся в способности МО атаковать самые разнообразные орг.вещ-ва,выделять тепл.энергию. Среди них маловероятно наличие высокотоксичных вещ-в,тк незначит.перестройки молекул под действием МО полностью снимает токсичность

58.Микробиологические процессы при подготовке органических удобрений. Орг.удобрения(навоз,компосты) способствуют созданию высокоплодород.почв.Содержание орг.вещ-ва в навозе сост-ет 24%. «Холодный навоз» приготавливают в спец.навозохранилищах с бетонированным дном и стенами,в них должен быть колодец для сбора стекающей на дно навозной жижи.. Завезенный в хранилище навоз подвергают уплотнению,затем изолируют его поверхность от воздуха.При изготовлении «горячего навоза» его держат в хранилище некоторое время в виде рыхлой массы,без уплотнения,примерно метровым слоем.Через 2-4 дня,когда тем-ра поднимается до 60С,его уплотняют и укладывают сверху 2ой слой.Этот способ приготовления вызывает значительные потери питател.для растений вещ-в,прежде всего азота. Многочисленна в навозе группа аэробных МО,разлагающих клетчатку. Для уменьшения потерь азота из навоза в него реком-ся вносить гипс,к-ый реагируя с аммиаком,дает нелетучий сульфат аммония.Степень повышения тем-ры навоза зависит нетолько от доступа кислорода,но и от его состава.

59. Влияние минеральных и органических удобрений на микроорганизмы и плодородие почвы.Внесение в почву удобрений не только улучшает питание растений. Усиливается распад гумуса, е этого увеличивается мобилизация азота, фосфора и других элементов. удобрения стабилизируют уровень гумуса. Внесение в почву минеральных и органических удобрений усиливает интенсивность микробиологических процессов, в результате увеличивается трансформация органических и минеральных веществ. Опыты, проведённые Ф. В. Турчиным, показали, что внесение азотсодержащих минеральных удобрений увеличивает урожай растений не только в результате удобрительного действия, но и за счёт лучшего использования растениями азота из почвы. В опыте в каждый сосуд, вмещавший 6 кг почвы, вносили 420 мг азота. Высокие дозы внесения азотных удобрений (около 100 кг/га и более) оказываются эффективными на высокоокультуренных почвах. На низкоплодородных почвах они обычно действуют отрицательно.Иногда внесение в почву минеральных удобрений, особенно в высоких дозах, крайне неблагоприятно сказывается на её плодородии. Обычно это наблюдается на малобуферных почвах при использовании физиологически кислых удобрений.. Благоприятное действие на микрофлору почвы оказывают органические удобрения и, особенно, навоз. Скорость минерализации навоза в почве определяется рядом факторов, но при других благоприятных условиях. Обычно навоз вызывает повышение урожая в течение 2-3 лет в отличие от азотных удобрений, которые не имеют последствия.Широко используют также зеленые удобрения, или сидераты. Это органические удобрения, запаханные в почву, они более или менее быстро минерализуются в зависимости от почвенно-климатических условий. Внесение в почву удобрений при благоприятных условиях способствует значительному увеличению численности микроорганизмов и повышению их активности. Применение минеральных удобрений на почвах, богатых органическим веществом, оказывает стимулирующее действие на микрофлору. Механизм действия минеральных удобрений на микрофлору в почве многогранен. Из повышающих факторов главными являются следующие: Изменение реакции (рН) почвы в сторону нейтральной или слабощелочной;Изменение физических свойств почвы, оказывающих благоприятное влияние на размножение микробов;Минеральные удобрения, которые в значительной степени усиливают развитие растений, а это, в свою очередь, оказывает положительное влияние на микрофлору. Более интенсивно растут корни, а следовательно, количество ризосферных организмов быстро увеличивается.

71.Методы стерилизации: Стерилизация-один из важных и необходимых приёмов в микробиол.технике. Стер.прокаливанием на пламени (фламбирование)-микробы сжигаются.ПРименяется для стер. Металлических инструментов,игл,предменых стёкол,пробирок. Стерилизация сухим жаром-в сушильных шкафах при t=160-170 1-2 часа. Стер. Стеклянную посуду. Кипячение-проводят в спец.стерилизаторах 10-15 мин. Иногда добавляют 1-2% соды.Стер. Игл,шприцей,хирургических инструментов. Насыщенным паром под давлением-в автоклаве.Автоклав-это паровой толстостенный котёл с герметически закрывающейся крышкой.Состоит из3 цилиндров:наружные кожух и котёл для воды,внутренний котёл для пара.Заливают дистиллированную воду,закрывают крышку.Вода закипает,образуется пар.После закипания закрывают выводной кран,включают манометр,т.к.давление увеличивается.Нужное давление поддерживают 30-40 мин.,потом давление доводят до нуля и сразу же вынимают предметы.Используется для стерилизации посуды,резины. Стер.текучим паром-в кипятильнике Коха-это металлический цилиндр,обшитый плохо проводимым тепло материалом.На дно наливают воду,предметы находятся на специальных подставках над поверхностью воды.Затем при t=100 30-40 мин.с промежутками 24 часа стерилизуют паром.Повторы необходимы,т.к.при t=100 уничтожаются лишь вегетативные клеткии отдельные споры.В промежутках предметы помещают в термостат,где споры прорастают,а заием их уничтожают повторной стерилизацией. Фильтрование-применяется для питательных сред,которые содержат легко разлагающиеся при нагревании вещества(сыворотки,антибиотики,витамины).В фильтры могут проходить лишь ультрамикробы(вирусы,бактериофаги). Пастеризация-при t=60-80 30-40 минут. Погибают вегетативные клетки. Применятся для освобождения от бесспоровых форм микроорганизмов (молоко).Пастеризованные продукты подлежат кратковременному хранению и при низких температурах. Тиндализация-3-кратная пастеризция с промежутками около суток. Можно получить стерильную среду даже при невысоких температурах. Дезинфекция-проводится хим.веществами (фенол,формалин,хлорная известь,перекись водорода).Эти вещества называют антисептиками. Ультрастерилизация-нагревание до 150с на 1 секунду. Проводят в трубчатых аппаратах путём введения чистого пар.Для обезвреживания молока, сохраняется витамин С и удаляются некоторые летучие вещества кормового и стойлового происхождения. Воздействие УФ лучами- стерил. Боксов и столовых. В определённых дозах УФ вызывает гибель бактерий. Наиболее эффективны лучи с длиной 2600А.В качестве источника используются лампы.

77.Выделение бактерий в чистую культуру

Под чистой культурой понимается бактериал масса, состоящая из клеток с одинаковыми морфологическими,культуральными и физиологическими свойствами,т.е. культура культура микроорганизма одного вида,произошедшая из одной клетки(колонии).Выделение бактерий в чистую культуру необходимо для изучения их особенностей и широко используются в микробиол.практике. В закрытой чашке Петри карандашом по стеклу отмечают колонию,предназначенную для изучения. Сначала колонию исследуют невооружённым глазом,а затем с помощью окуляра от микроскопа. Колония не должна соприкасаться с др.колониями,внутри неё и под ней (в толще агара) не должно быть роста посторонних микроорганизмов.После описания из колонии готовят окрашенный препарат (мазок на стекле) и рассматривают под микроскопом.

72.Изучение признаков роста микроорг.наплотных и жидк.пит средах.

Характер роста культуры на МПБ и др.жидких средах или колоний на МПА и др.плотных средах(сусло-агар, агаризованная синтетическая среда)-важные систиматические признаки микробов. В первом случае отмечают:характер развития пленки(тонкая, сухая, складчатая, слизистая) и ее цвет, наличие мути(слабая, умеренная, сильная), присутствие, характер осадка(обильный, плотный, хлопьевидный) и его цвет. Колонии на чашке группируют по культурным признакам. К ним относится форма, край, поверхность, размеры, оптические свойства, цвет, консистенция. При посеве уколом, когда иглу с культурой вводят в столбик агар-агара, отмечают интенсивность роста в верхней, средней или нижней части укола. При изучении культурных признаков актиномицетов обращают особое внимание на пигмент и обусловленную им окраску воздушного мицелия и среды. Значение имеет консистенция колоний (плотная, вросшая в агар, рыхлая), поверхность(мучнистая, бархатистая) и запах(землистый, эфирный, фруктовый).

70.Приготовление пит.сред.

Краткое описание некоторых компонентов

Агар-агар получают из некоторых морских водорослей. Высококачест­венный агар изготовляют из красных морских водорослей. По составу агар-агар органическое соединение полисахаридной природы. Готовый агар-агар слабо-желтого цвета и бывает в виде шнуров, пластин или порошка. Плавит­ся при температуре около 100° С, застывает при 40° С. При добавлении к среде придает ей плотность.

Пептон - продукт не полного распада белков. По составу это смесь по­липептидов и некоторых аминокислот. Получают пептон из рубцов крупного и мелкого рогатого скота.

Желатин - животный клей, состоящий из белка. Получают путем вы­варки из хрящей, костей и сухожилий. Внешне напоминает гранулы или лис­точки светло-коричневого цвета, без запаха и вкуса. Плавится при температуре 32 - 34е С, застывает при 16 - 20° С.

Мясная вода служит основой многих питательных сред. Ее готовят из доброкачественного говяжьего или конского мяса. Кости, сухожилия и жир из него удаляют. Мясо пропускают через мясорубку, взвешивают, заливают двойным количеством водопроводной воды и оставляют на 24 часа в про­хладном месте для экстрагирования. Экстракт отделяют фильтрованием и кипятят в течение часа. Затем фильтруют через бумажный фильтр и долива­ют водопроводной водой до первоначального объема. Разливают по колбам и стерилизуют в течение 30 мин. При температуре 120° С.

Для ускорения процесса фарш заливают двойным количеством воды и в течение часа нагревают (температура - 50° С), затем проводят фильтрование. Готовая мясная вода имеет слабокислую реакцию - рН 6.8 и соломенно-жел­тый цвет.

Мясо-пептонный бульон (МПБ) готовят на мясной воде. К ней добавля­ют 1% пептона и 0.5% поваренной соли (химически чистой). Кипятят до рас­творения пептона, все время помешивая. Величину рН определяют колориметрическим методом. Реакцию среды доводят до 7.4 - 7.6, подщела­чивая 10%-ным раствором едкого катия или насыщенным раствором соды. После добавления щелочи бульон еще раз кипятят, фильтруют через бумаж­ный фильтр и сразу же разливают по пробиркам и стерелизуют в течение 20 мин. при температуре 120° С.

Мясо-пептонный агар (МПА) для приготовления МПА к мясопептон-ному бульону добавляют 2% агар - агара. Агар плавят в бульоне, доводя его до кипения. Во время плавления среду помешивают, чтобы агар - агар не подгорал.

.Пит в-ва в микробную клетку поступают разными способами. Наиболее простой – пассивная диффузия, при которой перемещение в-в происходит вследствие разности их концентрации по обе стороны цитопл мембраны.

69.Метод определения размеров м.о.

Измерения микробов принято микрометр=10-6м. 1.Объектный микрометр представляет собой предметн.стекло, на котором нанесена линейка в 1мм, разделенная на 100 частей. Цена одного деления=10-5м, или 10мкм. Объектный микрометр используется для определения величины одного деления окулярного микрометра. 2.Окулярный микрометр имеет форму круглой пластинки, на которой нанесена шкала произвольных делений. Длина шкалы 5мм, на нее нанесено 50делений. Окулярный микрометр служит для измерения объектов(микробов). Его вставляют между линзами окуляра делениями вниз, для чего вывинчивают глазную линзу. Объектный микрометр помещают на предметн.столик, устанавливают фокус и совмещают деление шкал микрометров. При работе с иммерсионной сист. На объектный микрометр наносят кедровое масло, для того чтобы определить размер одного деления окулярного микрометра нужно:5 делений объектного микрометра совместить с 30делениями окулярного микром. Потом определять размер микробов.

66. Приготовление мазка. Мазок готовят на чистом предметном стекле при помощи микробиологической петли из культур микробов, выращенных на плотной или жидкой питательных средах.

Над пламенем горелки открывают пробирку, внутрь ее вводят петлю, охлаждают, после чего петлей соприкасаются с культурой, которую затем тонким слоем распределяют по поверхности предметного стекла. При изго­товлении мазков из плотных субстратов или агаровых культур на поверх­ность стекла сначала наносят каплю стерильного физиологического раствора или водопроводной воды.

64.Фиксация мазка. Существует несколько методов фиксации мазка. Наиболее простой и распространенный среди них - фиксация на пламени го­релки. Для этой цели предметное стекло с мазком микробной культуры на нем берут пинцетом и проводят 3- 4 раза над огнем (той стороной стекла, на которой клеток нет !), затем стекло прикладывают к коже руки. Ощуще­ние легкого жжения свидетельствует о том, что мазок зафиксирован.

Мазки фиксируются этиловым спиртом (96%) в течение 10-15 мин., смесью этилового спирта и серного эфира (до испарения), ацетоном (в тече­ние 5 мин.), метиловым спиртом (2-3 мин

80. КУЛЬТИВИРОВАНИЕ Культивирование микроорганизмов является одним из основных методов в микробиологии. Оно основано на знании физиолого-биохимических особенностей микроорганизмов и понимании значения физико-химических условий среды для жизнедеятельности микроорганизмов. Культивированием называют выращивание микроорганизмов на питательных средах в определенных условиях, а развивающийся при этом организм - культурой. Культура, представленная микроорганизмами одного вида, называется чистой. Культуру, содержащую более чем один вид микроорганизмов, называют смешанной или гетерогенной. В природе встречаются гетерогенные культуры, а в пищевых производствах, основанных на использовании биохимической деятельности микроорганизмов, применяют в основном чистые культуры дрожжей, молочнокислых, уксуснокислых бактерий и других микроорганизмов. В последнее время в ряде производств находят успешное применение двух- и трех компонентные чистые культуры, состоящие из двух, трех видов микроорганизмов. Для изучения морфологических, культуральных и физиолого-биохимических свойств любого микроорганизма из окружающей среды проводят его выделение в чистую культуру. Это дает возможность провести идентификацию микроорганизма и установить его таксономическое положение. Способы культивирования микроорганизмов Стационарный способ. При культивировании этим способом питательные среды сохраняются постоянными, никаких манипуляций с ними не производят. Преобладают анаэробные энергетические процессы. Выход биомассы незначителен. Для получения большего выхода биомассы или биологически активных соединений разработаны новые методы. Глубинный способ с аэрацией. Глубинное культивирование проводят в реакторах в герметичных котлах с жидкой питательной средой, оборудованных автоматическими приспособлениями для контроля рН, О2, температуры, поступления стерильного воздуха и т.д. (цв. вклейка, рис. VII). В аэробных условиях достигается максимальное использование энергии и максимальный выход биомассы. Выход биомассы E.coli при культивировании в стационарных условиях через 18 20 ч 1 млрд, а при глубинном способе через 12 14 ч 50 60 млрд. Проточный способ культивирования позволяет клеткам длительное время находиться в определенной фазе роста (экспоненциальной) при постоянной концентрации питательных веществ и в одних и тех же условиях, обеспечивающих непрерывный рост культуры. Метод основан на том, что в культивируемую суспензию непрерывно добавляют свежую питательную среду и одновременно удаляют соответствующее количество бактерий. В зависимости от способа культивирования различают периодические (стационарные и при глубинном культивировании) и непрерывные (при проточном) культуры бактерий. При определенных условиях получают синхронные культуры, то есть культуры, в которых все клетки одновременно (синхронно) делятся.

81Биоконверсия – процесс превращения веществ с участием живых организмов, точнее процесс превращения одних соединений в другие при участии ферментных систем живых организмов. Биоконверсия состоит в получении из биомассы жидкого ( этанол и др.) и газообразного ( биогаз, водород) топлива, а также тепловой энергии, получаемой при биоокислении. Процессы биоконверсии могут быть также использованы в комбинации с термохимическими методами, процессами электролиза. Наряду с плазменным фотолизом воды они могут служить тем запасом энергетической прочности, который необходим человеческому обществу. Технология аэробно-анаэробной биоконверсии органических отходов сельскохозяйственных производств с торфом позволяет получить продукты с повышенным содержанием биологически активных веществ, которые могут использоваться в качестве кормовых добавок сельскохозяйственным животным и в качестве удобрения. Все отходы (Биоконверсия органических отходов), рекомендованные для получения пищевых и кормовых добавок, должны быть проанализированы на содержание нитратов.

82. Биологическая очистка навозных стоков

Утилизация и обезвреживание навоза, очистка навозных стоков животноводческих комплексов.

МИКРОЗИМ™ "ВЭЙСТ ТРИТ" - высоконцентрированный биопрепарат 6-12 видов естественных почвенных аэробных и факультативных живых сапрофитных микроорганизмов и ферментов (энзимов) общим действием которых осуществляется:

- Разложение (по принципу биологической деструкции) органических веществ навоза (лигнина, целлюлозы, гемицеллюлозы, волокон, мочи) на воду, углекислоту, и гумус.

- Эффективное использование содержащихся в навозе биогенных элементов азота и фосфора (амммиак,фосфаты,полифосфаты).

- Многократная интенсификация микробного самоочищения воды по параметру численного преобладания микроорганизмов-санитаров функционирующих при +22С (ОМЧ+22С) сокращающих сроки выживаемости патогенной и условно патогенной микрофлоры из организма домашних животных функционирующей при температурах +30/+37С.

- Уничтожение патогенной микрофлоры и сокращение сроков выживаемости гельминтов специально подобранными микроорганизмами-антипатогенами за счет численного преобладания последних.

- Разжижение твердой фракции отходов.

- Переваривание реактивных газов (сероводорода, аммиака).

- Уничтожение (локализация) запаха.

 В биопрепарате "Вэйст Трит" живые микроорганизмы иммобилизированы вместе с натуральными микробными ферментами на питающем носителе из кукурузной муки. При попадании во влажную среду (жидкая-твердая фракция навоза) бактерии начинают активно использовать органику и биогенные элементы в качестве источника энергии жизнедеятельности постоянно увеличиваясь в числе. Органические вещества превращаются в СО2,H2O и экологически безвредные продукты метаболизма. Биогенные элементы используются бактериями для жизнедеятельности.имея высокое начальное микробное число (4x10 в 12 степени КОЕ/грамм препарата) и постоянно размножаясь полезные бактерии и микроорганизмы-антипатогены подавляют рост многих видов патогенной микрофлоры. Навозные стоки являются идеальной средой для жизнедеятельности полезных микроорганизмов по критериям питательной среды, влажности, наличия кислорода. Время жизнедеятельности полезных микроорганизмов биопрепарата в среде навозных стоков практически не ограничено, в то время как сроки выживаемости патогенной микрофлоры ограничены. Численное преобладание полезной микрофлоры и антипатогенов в стоках сокращает сроки выживаемости патогенов и гельминтов в десятки раз. Продолжительность работы полезных бактерий в навозных стоках собираемых в закрытых (непроточных, слабопроточных) емкостях практически не ограничено. В биологических очистных сооружениях (слабопроточных аэротэнках, где происходит постоянное вымывание) требуется периодическое подселение новых бактерий. В течение всего срока своей жизнедеятельности полезные микроорганизмы биопрепарата синтезирует ферменты (липолитические, амилолитические, гидролитические, лигнолитические и др.) которые эффективно расщепляют твердую органику с образованием воды и углекислоты.

 Биопрепарат "ВЭЙСТ ТРИТ" предназначен для:

а) очистки навозных стоков в сооружениях биологической очистки, прудах-отстойниках покритериями БПК_5, ХПК, сухого остатка, органики, аммиака, фосфатов, патогенов, гельминтов, запахов, сокращения выбросов сероводорода.

б) Компостирования отсепарированной твердой фракции навоза на площадках компостирования, переработка твердой фракции в удобрение, уничтожение запахов, сокращение количества атмосферных выбросов аммиака, сероводорода.

с) разжижения и деодоризации слежавшихся твердых отходов.

 Условия, ускоряющие процесс очистки:

- Температура: +20-30 градусов Цельсия

- Аэрация

- Перемешивание

- Повышение рабочей дозы препарата

 

Внешне биопрепарат "Вэйст Трит" представляет собой сухой порошок светло-коричневого цвета с ярко выраженным запахом хорошо удобренной почвы. Срок хранения 1.5 года с момента производства при температурах +10/+45 градусов Цельсия.

83.

Соседние файлы в предмете [НЕСОРТИРОВАННОЕ]