Добавил:
Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:

Иностранный язык (английский). Учебно-методическое пособие

.pdf
Скачиваний:
0
Добавлен:
07.09.2026
Размер:
2 Мб
Скачать
Окраска по Н.А. Михину. Фиксированный мазок (преимуще-
ственно из крови или селезеночной пульпы) окрашивают леффле­ровской метиленовой синькой в течение 2 - 3 мин, при этом мазок подогревают до появления паров. Краску быстро смывают водой, а мазок высушивают фильтровальной бумагой. Краску необходимо смывать водой очень быстро, так как вода извлекает из капсул кра­сящее вещество. Капсулы при этом светло-розовые, бациллы - тем­но-синие (рисунок 30).
Рисунок 30 – Окраска по Н.А. Михину
В результате жизнедеятельности возбудителя в крови снижа-
ется содержание кислорода, нарушается кислотно - щелочное рав­новесие, кровь теряет способность к свертыванию.
Глубокие изменения в организме, возникающие под влиянием
образовавших капсулу бацилл сибирской язвы. Приводят к гибели заболевших.
Окраска по Ионе. Мазок, изготовленный обычным порядком,
окрашивают 2% водным раствором генциановиолета в течение 1-2 мин при легком нагревании, затем быстро промывают водой и об­рабатывают 2% водным раствором уксусной кислоты в течение 10с. Промывают водой и высушивают. Препарат можно также, не вы­сушивая после промывания, покрыть предметным стеклом и рас­сматривать под микроскопом. При этом способе капсулы окраши­ваются в темно-красный, а бациллы - в темно-синий цвет.
Можно применить окраску по Фоту. На препарат наносят 2-3
капли готовой краски Гимза, через 30 с ее равномерно смешивают с 20 каплями воды, после отстаивания 1-7 мин краску сливают, а ма-
41
зок просушивают. Капсулы - розовые или бледно-розовые, бациллы
- темно-синие.
При проведении исследований на сибирскую язву важным яв­ляется обнаружение спор. Следует учитывать, что споры имеют очень плотную оболочку, препятствующую проникновению крася­щих веществ.
Хорошие результаты дает применение окраски по методу Шеффера и Фултона. На фиксированный на пламени мазок нали­вают 5% водный раствор малахитовой зелени, который находится на мазке не более 1 мин. При этом мазок надо 3-4 раза подогреть (до появления паров). Краску смывают проточной водой, после че­го наливают 0,5% водный раствор сафранина на 30 с. Мазок про­мывают водой и высушивают фильтровальной бумагой. Споры ­зеленые, вегетативные клетки – красные (рисунок 31).
Рисунок 31 – Окраска по методу Шеффера и Фултона
Хорошие результаты получают при окраске спор по способу Пешкова. Следует заметить, что этот способ прост для выполне­ния. Мазок фиксируют на пламени, после чего окрашивают кипя­щей синькой Леффлера над пламенем горелки в течение 15 - 20с, смывают водой и докрашивают 0,5% водным раствором нейтраль­тора в течение 30 с, промывают водой и высушивают.
При окраске по Пешкову споры приобретают голубой или си­ний цвет, молодые споры окрашиваются более интенсивно и имеют темно-синий, почти черный цвет, протоплазма вегетативных форм розовая.
42
Люминесцентная микроскопия
В последнее время все большее значение приобретают иссле­дования при помощи люминесцентной микроскопии. Сущность метода, основан на том, что после обработки препарата люминес­цирующей сывороткой под люминесцентным микроскопом выяв­ляется специфическое свечение возбудителя
Для приготовления мазков используют 5 - 6-часовую бульон­ную или агаровую культуру. Мазки фиксируют в 96° спирте в тече­ние 15 мин. Затем на препарат наносят каплю флуоресцирующей сыворотки, специально предназначенной для люминесцентной микроскопии возбудителя сибирской язвы.
Обычно пользуются сывороткой, разведенной физиологиче­ским раствором в 2 раза.
Если флуоресцирующая сыворотка сухая, ее разводят дистил­лированной водой в соответствии с объемом высушенной сыворот­ки, а затем готовят на физиологическом растворе необходимое раз­ведение (рисунок 32).
Рисунок 32 - Люминесцентная микроскопия возбудителя си­бирской язвы
Во избежание высыхания мазок на 10 — 15 мин оставляют во влажной камере. С этой целью его помещают в чашку Петри, на дно кладут смоченную вату. Потом каплю флуоресцирующей сы­воротки стряхивают с препарата, а мазок тщательно промывают по
10 мин в физ-растворе или проточной воде.
43
Перед просмотром на препарат под покровным стеклом нано-
сят каплю глицерина. Препарат изучают под иммерсионным объек­тивом люминесцентного микроскопа.
В положительных случаях в мазках обнаруживают характер-
ное свечение периферии клетки.
Бактериологические исследования
При характеристике возбудителя уже указывалось, что он тре-
бователен к питательным средам и условиям выращивания и хоро­шо растет на обычном мясо-пептонном агаре и бульоне.
Посевы из присланного на исследование материала производят
на МПА в бактериологических чашках и на МПБ в пробирках, ко­торые помещают в термостат при температуре 37-38°. При обиль­ном посеве рост будет выявляться уже через 16 - 18 ; повторный просмотр посевов - через 24ч.
Отбирают подозрительные колонии, из которых делают мазки,
окрашивают их и микроскопируют.
Одновременно с посевом исследуемого материала на пита­тельные среды проводят биологическую пробу. Для этого матери­ал, подлежащий исследованию, суспендируют в небольшом объеме физиологического раствора и вводят белым мышам подкожно в область спины (корень хвоста) в дозе 0,1 - 0,3 мл. Гибель мышей наступает через 24 - 36 ч. Павших животных вскрывают и произво­дят бактериологическое исследование. Если мыши не погибли в указанные сроки, их оставляют под наблюдением в течение десяти суток, после чего забивают.
Бактериологические исследования включают подробное изу­чение выделенных культур. При этом следует учитывать морфоло­гическое сходство возбудителя сибирской язвы со многими пред­ставителями сапрофитной бациллярной флоры и проводить диффе­ренциально-диагностические исследования с особой тщательно­стью. Прежде всего, выделенную культуру исследуют на подвиж­ность, помня, что возбудитель сибирской язвы неподвижен.
Хорошие результаты при определении подвижности дает по­сев исследуемой культуры в полужидкой 0,25% агар. Рост непод­вижных микроорганизмов наблюдается по линии посева, а подвиж­ные растут по всей питательной среде.
Большое диагностическое значение имеет определение гемо­литической активности культуры. Возбудитель сибирской язвы, гемолиза на питательной среде не вызывает. Исследуемую культу-
44
ру высевают на МПА, содержащий 5 - 105 дефибринированной крови барана или других животных (рисунок 33).
Рисунок 33 – Посев на МПА с добавлением крови барана
Посевы на кровяной агар инкубируют при температуре 35 -
37°С в течение 18 - 20 ч, после чего производят учет.
Для определения гемолитической активности можно исполь­зовать также среду Буза, которая состоит из 3% голодного(без пеп­тона) агара, к которому добавлено 15% дефибринированной крови барана.
В последние годы в результате исследований, проведенных в разные годы, разработана проба с пенициллином, или тест «жем­чужного ожерелья». Эта проба основана на том, что при росте на мясо-пептонном агаре, содержащем пенициллин, происходит де­формация клеток возбудителя сибирской язвы, бациллы распада­ются на отдельные шарики, располагающиеся в виде цепочек (ри­сунок 34).
Наиболее распространенной является такая методика поста­новки пробы. Трехчасовую бульонную культуру засеивают на МПА в две чашки, содержащие в 1 мл по 0,05 единицы пеницилли­на, и в третью - без пенициллина. Посевы находятся в термостате в течение трех часов. Выросшие культуры подвергают исследованию под микроскопом.
45
Рисунок 34 – Возбудитель сибирской язвы
В чашке с пенициллином микробы принимают шаровидную
форму, а в чашке без пенициллина нормальные бациллы.
Для идентификации выделенных культур изучают также их
лизабельность бактериофагом. Исследование производится на МПА в чашках Петри. Трех-, четырехчасовые бульонные культуры изучаемых штаммов наносят на агаровую пластинку и отмечают эти места. После 30-минутного подсыхания на засеянную зону на­носят по капле сибиреязвенного бактериофага без разведения. За­тем чашки помещают в термостат при температуре 37°. Учет дейст­вия начинают проводить через 6 - 18 ч. В случае положительного результата на месте нанесения капли бактериофага отмечается ли­зис колоний.
Промышленность выпускает для диагностики сибиреязвенный
фаг «Гамма MB А», официальное наставление по применению это­го фага дает следующие рекомендации.
Для идентификации культуры сибирской язвы в шесть проби­рок со скошенным МПА без конденсационной влаги наносят по одной капле испытуемой бульонной культуры или суспензии мик­робов, снятых с МПА, и распределяют ее равномерно по всей по­верхности агара шпателем, изготовленным из пастеровской пипет­ки. После этого все пробирки ставят в термостат на 15 мин при температуре 37°. Затем в четыре пробирки вносят по одной капле неразведенного фага, отступив от края агара на 8 - 10 мм, и ставят их в штатив для стекания капли. В две пробирки каплю фага не
46
вносят, их оставляют для контроля. Все шесть пробирок вновь ста­вят в термостат при температуре 37° на 6 - 8 ч.
В пробирках с фагом при положительных результатах возбу­дитель по ходу стекания капли не растет. След стекающей капли будет обрамлен выросшей культурой; образуется как бы бордюр вокруг дорожки.
Ценность этих методов заключается в том, что они могут быть использованы не только для исследований патологического мате­риала, но и для выявления возбудителя в воде, фураже, почве, смы­вах с предметов внешней среды.
При выборе методов выявления возбудителя хотелось обра­тить внимание на метод выявления лецитиназной активности.
В стерильном флаконе со стеклянными бусами смешивают од­ну часть куриного желтка и две части физиологического раствора поваренной соли (0,85%). Такую стерильно приготовленную среду разливают в пробирки по 5 мл, засевают изучаемой культурой и помещают в термостат при температуре 37°. Вас. anthracis не свер­тывает желтка даже при инкубации 2-3 суток.
При определении выделенных культур большое значение име­ет о б н а ружение капсул и капсулообразование. Наличие капсул может быть определено прямым путем, при бактериоскопии мазков или с применением одного из изложенных методов окраски капсул.
Рекомендуются также посевы на специальные питательные среды -ГКИ, Томова, Буза и др. Такие исследования осуществляют­ся редко, при необходимости детализированного изучения культу­ры..
Серологические исследования
Немаловажное значение в диагностике сибирской язвы имеет peaкция преципитации по Асколи (рисунок 35). С ее помощью уда-
ется обнаружить сибиреязвенный антиген. Суть ее состоит в том, что при соприкосновении преципитирующей сыворотки с материа­лом, содержащим сибиреязвенный антиген, в пробирке образуется кольцо серо-желтого цвета.
47
Рисунок 35 – Реакция преципитации по Асколи
Принципиальная схема постановки реакции может быть пред-
ставлена в таком виде:
- преципитирующая сыворотка и экстракт из исследуемого ма-
териала;
- преципитирующая сыворотка со стандартным сибиреязвен-
ным антигеном (контроль с заведомо положительным результатом);
- преципитирующая сыворотка и экстракт из органов здорово-
го животного (контроль);
- нормальная сыворотка и экстракт из исследуемого материала
(контроль).
Чаще всего реакция преципитации ставится при исследовании
кожевенного сырья на предмет заражения его возбудителем сибир­ской язвы. Многолетняя практика применения реакции полностью себя оправдала, и реакция Асколи является обязательным диагно­стическим методом при исследовании кожевенного и мехового сы­рья.
48
Современные подходы к индикации и идентификации воз-
будителя
Для решения проблемы индикации и идентификации исследо­ватели конструируют питательные среды, обладающие высокими селективными и дифференциально-диагностическими свойствами, разрабатывают методы выявления специфических антигенов, нук­леотидных последовательностей и определения различий в биохи­мической активности. Как правило, повышение селективности сред достигается за счет добавления к питательной основе химических препаратов с избирательным антимикробным действием, хромо­генных субстратов, позволяющих дифференцировать микроорга­низмы по биохимической активности, биостимуляторов для уско­ренного получения и частичной идентификации бактериальной культуры, значительным смещением рН и т.п. Так, для выделения возбудителя сибирской язвы предложен широкий арсенал селек­тивных и дифференциально-диагностических питательных сред – дифференциально-диагностическая среда для выделения и культи­вирования сибиреязвенного микроба (СВК), PLET-агар, среда для диагностики сибирской язвы (АДЭСБ), среда с сорбитом и бромти­моловым синим, диагностическая среда для выделения возбудителя сибирской язвы и близкородственных бацилл группы Bacillus cereus, среда Донована и Bacillus cereus селективный агар Мозеля (MYP-агар). Для обнаружения специфических сибиреязвенных ан­тигенов в дополнение к реакции Асколи исследователями предла­гается эритроцитарный иммуноглобулиновый диагностикум, им­муноглобулины диагностические сибиреязвенные вегетативные и споровые адсорбированные флуоресцирующие (ФГУЗ СтавНИП­ЧИ), иммунохроматографический тест (ФГУП ГНЦ ПМБ, п. Обо­ленск), для выявления специфических нуклеотидных последова­тельностей - набор реагентов «АмплиСенс® B.anthracis-FRT» (ФГУН ЦНИИЭ и ФГУЗ «РосНИПЧИ «Микроб»), а для биохими­ческой идентификации представителей рода Bacillus тест-система Microgen Bacillus ID. Поскольку лизабельность сибиреязвенными бактериофагами в соответствии с МУК 4.2.2413-08 является одним из трех опорных тестов, практике, в дополнение к фагу Fah­ВНИИВВиМ (ГНУ ВНИИВВиМ Россельхозакадемии, п. Вольгин­ский) предложен новый сибиреязвенный бактериофаг «R/D-RH-6» (ФГУП ГНЦ ПМБ, п. Оболенск), который предлагается использо­вать в реакции определения чувствительности к фагу и в реакции нарастания титра фага для выявления Bacillus anthracis в смешан­ных культурах, а также объектах внешней среды.
49
Новые тест-системы для идентификации представителей
рода Bacillus
- Хромогенная диагностическая среда, содержащая динатрие-
вую соль пара-нитрофенилфосфата (ДС-p-NPP);
- Агар Донована и MYP – (Мозеля) агар;
- Тест-система для биохимической идентификации представи-
телей рода Bacillus;
- Фаг тест-набор «R1 Оболенск»;
- Иха-тест B. anthracis;
Эритроцитарный иммуноглобулиновый диагностикум
Фосфатазы объединяют большую группу ферментов, пред­ставляющих собой один из подклассов гидролаз, катализирующих реакции расщепления и синтеза органических соединений фосфора с участием воды. В общем виде гидролиз фосфорорганических со­единений может быть представлен следующим образом: R'R'' + НОН ↔ R'H + R''OH. Различают специфические фосфатазы, дейст­вие которых направлено на какой-либо определенный субстрат, и неспецифические, обладающие широкой субстратной специфично­стью. Активность фосфатаз проявляется в широком диапазоне зна­чений pH. По кислотности среды, в которой фермент проявляет наибольшую активность, фосфатазы делят на щелочные (pH 8-10) и кислые (pH 4-6). В практике микробиологических исследований определением фосфатазной активности бактерий пользуются в це­лях идентификации и дифференциации родственных микроорга­низмов, сходных по ряду других фенотипических признаков. Тест основан на выявлении отщепившейся под действием фосфатазы фосфатной группы от органического субстрата, содержащего фос­фат. Образовавшиеся продукты фосфатазной реакции определяют­ся по свойственной им природной окраске или по цвету добавлен­ного соответствующего индикатора.
Техника постановки теста на щелочную фосфатазу. На мясо­пептонный агар с натриевой солью дифосфатфенолфталеина, pH 8,2 (±0,2), высевают отдельными штрихами суточные культуры си­биреязвенного микроба.
На одной чашке можно испытать 15-16 штаммов. Посевы ин­кубируют в термостате при 37 °С в течение 24-48 ч. При отсутствии роста или слабом микробном росте время инкубации может быть увеличено до 5 суток. Просмотр посевов ведется ежедневно. При положительном результате реакции от молекулы натриевой соли дифосфатфенолфталеина фосфатаза катализирует отщепление двух молекул фосфогрупп — гидрофосфата натрия (Na,HP04) с образо­ванием свободного фенолфталеина, имеющего светло-розовый
50
Соседние файлы в предмете [НЕСОРТИРОВАННОЕ]