- •Микробиология, вирусология
- •Содержание
- •Введение
- •Глава 1 кишечная палочка. Возбудители брюшного тифа, сальмонеллезных токсикоинфекций. Микробиологическая диагностика
- •1.1. Кишечная палочка
- •Микробиологическая диагностика эшерихиозов
- •1.2. Брюшной тиф
- •Микробиологическая диагностика брюшного тифа
- •1.3. Сальмонеллезная токсикоинфекция
- •Микробиологическая диагностика пищевой токсикоинфекции сальмонеллезной этиологии
- •Задания для самоконтроля
- •Глава 2 возбудители бактериальной дизентериИ, холерЫ. Микробиологическая диагностика
- •2.1. Дизентерия
- •Микробиологическая диагностика бактериальной дизентерии
- •2.2. Холера
- •Микробиологическая диагностика холеры
- •Задания для самоконтроля
- •Глава 3 возбудители бруцеллеза, сибирской язвы. Микробиологическая диагностика
- •3.1. Бруцеллез
- •Микробиологическая диагностика бруцеллеза
- •3.2. Сибирская язва
- •Микробиологическая диагностика сибирской язвы
- •Задания для самоконтроля
- •Глава 4 возбудители чумы, туляремии. Микробиологическая диагностика
- •4.1. Чума
- •Микробиологическая диагностика чумы
- •4.2. Туляремия
- •Микробиологическая диагностика туляремии
- •Задания для самоконтроля
- •Глава 5 возбудители туберкулеза, лепры. Микробиологическая диагностика
- •5.1. Туберкулез
- •Микробиологическая диагностика туберкулеза
- •Ускоренные методы
- •5.2. Лепра
- •Микробиологическая диагностика лепры
- •Задания для самоконтроля
- •Глава 6 патогенные кокки
- •6.1. Стафилококки
- •Микробиологическая диагностика стафилококковых инфекций
- •I. Индикация
- •II. Идентификация
- •6.2. Стрептококки
- •I. Индикация
- •Готовят мазки, окрашивают по Граму, микроскопируют для оценки чистоты выделенной культуры.
- •II. Идентификация
- •6.3. Менингококки
- •Микробиологическая диагностика менингококковой инфекции
- •6.4. Гонококки
- •Микробиологическая диагностика гонококковой инфекции
- •Задания для самоконтроля
- •Глава 7 возбудители дифтерии. Микробиологическая диагностика
- •Микробиологическая диагностика дифтерии
- •Задания для самоконтроля
- •Глава 8 возбудители столбняка, ботулизма, газовой анаэробной инфекции. Микробиологическая диагностика
- •8.1. Столбняк
- •Микробиологическая диагностика столбняка
- •8.2. Ботулизм
- •Микробиологическая диагностика ботулизма
- •8.3. Газовая анаэробная инфекция
- •Микробиологическая диагностика анаэробной инфекции раны
- •Задания для самоконтроля
- •Глава 9 возбудители сифилиса, возвратного тифа, лептоспироза. Микробиологическая диагностика Общая характеристика
- •9.1. Сифилис
- •Микробиологическая диагностика сифилиса
- •Невенерические трепаносомозы
- •Фрамбезия
- •9.2. Возвратный тиф
- •Эпидемический возвратный тиф
- •Микробиологическая диагностика возвратного тифа
- •Клещевой возвратный тиф
- •9.3. Лептоспироз
- •Микробиологическая диагностика лептоспироза
- •Задания для самоконтроля
- •Глава 10 риккетсии. Микробиологическая диагностика риккетсиозов
- •10.1. Эпидемический сыпной тиф
- •Микробиологическая диагностика сыпных тифов
- •10.2. Эндемический сыпной тиф
- •10.3. Пневмотропный риккетсиоз
- •Задания для самоконтроля
- •Глава 11 общие свойства вирусов. Методы диагностики вирусных инфекций
- •11.1. Общие свойства вирусов
- •11.2. Методы диагностики вирусных инфекций
- •Культуры клеток, используемые для культивирования вирусов
- •Культивирование вирусов в курином эмбрионе
- •Культивирование вирусов на лабораторных животных
- •Задания для самоконтроля
- •Глава 12
- •Вирусологический метод диагностики вич инфекции
- •Задания для самоконтроля
- •Глава 13 вирусы, вызывающие острые респираторные вирусные инфекции. Вирусы гриппа. Коронавирусы. Лабораторная диагностика
- •3.1. Вирусы гриппа
- •Строение вируса гриппа
- •Вирусологическая диагностика гриппа
- •13.2. Коронавирусы
- •Задания для самоконтроля
- •Глава 14 ГерпеСвИрусы. Лабораторная диагностика
- •Вирусологическая диагностика герпетической инфекции
- •Задания для самоконтроля
- •Глава 15 Вирусные гепатиты. Лабораторная диагностика
- •15.1. Вирусный гепатит а
- •Вирусологическая диагностика вирусных гепатитов а, е
- •Вирусологическая диагностика вирусных гепатитов в, с, d, g, ttv
- •15.2. Вирусный гепатит в
- •15.3. Вирусный гепатит с
- •Задания для самоконтроля
- •Глава 16 Бешенство. Клещевой энцефалит. Лабораторная диагностика
- •16.1. Бешенство
- •Вирусологическая диагностика вируса бешенства
- •16.2. Клещевой энцефалит
- •Вирусологическая диагностика клещевого энцефалита
- •Задания для самоконтроля
- •Заключение
- •Библиографический список
- •Список сокращений
- •Эталоны ответов
- •Глава 1
- •Глава 2
- •Глава 3
- •Глава 4
- •Глава 5
- •Глава 6
- •Глава 7
- •Глава 8
- •Глава 9
- •Глава 10
- •Глава 11
- •Глава 12
- •Глава 13
- •Глава 14
- •Глава 15
- •Глава 16
- •Микробиология, вирусология
- •283003, Г. Донецк, пр. Ильича, 16
Микробиологическая диагностика чумы
Микробиологическую диагностику чумы проводят с соблюдением строгого режима в лабораториях особо опасных инфекций высокоподготовленные специалисты. Форма одежды – противочумной костюм, который предусматривает защиту всех открытых участков тела, поскольку возбудитель обладает инвазивными свойствами и способен проникать через неповрежденные кожные покровы и слизистые оболочки.
Экспресс-метод
Для ускоренной диагностики чумы применяют ПЦР, ДНК-зонды, РИФ (прямую), а также ИФА.
Микроскопический
Из исследуемого материала готовят мазки и окрашивают по Граму и синькой Леффлера. Yersinia pestis в мазках похожа на короткую овоидную палочку и окрашивается биполярно. Возбудитель чумы окрашивается по Граму отрицательно. Наиболее эффективным является выявление возбудителя с помощью специфических люминесцентных сывороток в РИФ. После обработки такими сыворотками мазков из исследуемого материала при просмотре препаратов с помощью люминесцентного микроскопа обнаруживают характерные по морфологическим признакам палочки, которые с обеих сторон на концах светятся изумрудно-зеленым цветом.
Бактериологический
Исследуемый материал высевают на МПА (рис. 4.2) с добавлением стимуляторов роста (сульфит натрия, кровь или лизат культуры сарцин) и на МПБ. Инкубируют в термостате при температуре 25–28°С. Возбудитель – факультативный аэроб, хорошо растет на обычных питательных средах, имеющих рH 7,0–7,2, при температуре 28–30°С и 5–37°С. При выращивании на агаре через 6–10 часов образуются колонии в виде рыхлых мелких глыбок, похожих на битое стекло. На МПБ растет в виде хлопьев, взвешенных, как правило, в прозрачной жидкости. При длительном выращивании на МПБ образуются «чумные сталактиты», спускающиеся вниз с поверхности пленки.
Рис. 4.2. Характер роста возбудителя чумы на МПА
(источник заимствования – ресурсы сети Интернет)
На МПА через 24 часа вырастают колонии R-формы в виде «кружевных платков» – компактный выпуклый центр окружен светлой кружевной зоной (рис. 4.3).
Рис. 4.3. Колонии возбудителя чумы на МПА в виде «кружевных платочков»
(источник заимствования – ресурсы сети Интернет)
В бульоне рост проявляется образованием пленки, от которой вниз отходят нитевидные образования, напоминающие сталактиты. Бульон остается прозрачным (рис. 4.4).
|
|
|
Рис. 4.4. Характер роста возбудителя чумы на МПБ
рост с образованием нежной пленки с отростками
(источник заимствования – ресурсы сети Интернет)
Материал из подозрительных колоний пересевают на скошенный агар для получения и накопления чистой культуры микробов. Из выросшего на скошенном агаре микробного налета готовят мазок, окрашивают по Граму, изучают под микроскопом и устанавливают чистоту полученной культуры.
Далее проводят ее идентификацию. Принадлежность к Y. pestis устанавливают на основании изучения морфологических, тинкториальных, культуральных, биохимических, антигенных свойств, пробы с чумным бактериофагом, биопробы, подвижности (табл. 4.1).
Серологический
Антитела к возбудителю чумы в сыворотке крови больных определяют с помощью реакции пассивной гемагглютинации, непрямой РИФ (рис. 4.5) и ИФА.
Рис. 4.5. Реакция иммунофлюоресценции с возбудителем чумы
(источник заимствования – ресурсы сети Интернет)
Биологический
Исследуемый материал вводят морской свинке подкожно, внутрибрюшинно или наносят наружно, втирая его в выбритую скарифицированную кожу живота.
При наличии в материале возбудителя чумы у животных развивается острый инфекционный процесс. При внутрибрюшинном заражении морские свинки погибают через 2–3 суток, а при наружном – через 5–7 суток. Из трупного материала погибших животных готовят мазки – отпечатки (из лимфатических узлов, селезенки, печени, легких), а также готовят мазки крови, делают посев на питательные среды. После забора материала на исследование трупы животных погружают в 5% раствор лизола, а затем сжигают.
Для выявления возбудителей чумы в загнивающем трупном материале, применяют реакцию термопреципитации с чумной преципитирующей сывороткой.
Принципы лечения
Для лечения чумы в основном используют такие антибиотики, как стрептомицин, тетрациклин, мономицин, противочумная антитоксическая сыворотка.
Принципы профилактики
Неспецифическая
Строгий надзор за эндемичными очагами чумы.
Специфическая
Для специфической профилактики рекомендована в эндемических очагах вакцина из штамма EV. Невосприимчивость сохраняется до 1 года.
Таблица 4.1
Дифференциация Y. pestis от Y. pseudotuberculosis и Y. Enterocolitica источник заимствования – ресурсы сети Интернет
Свойства |
Y. pestis |
Y. pseudotuberculosis |
Y. enterocolitica |
Подвижность при 25ºС |
– |
+ |
+ |
Подвижность при 28–37ºС |
– |
– |
– |
Ферментация с образованием кислоты рамнозы рафинозы инозита |
|
||
– |
+ |
– |
|
– |
+ |
– |
|
– |
– |
+ |
|
Образование уреазы |
– |
– |
+ |
Образование орнитин-декарбоксилазы |
– |
– |
– |
Наличие фракции 1 |
+ |
– |
– |
Наличие мышиного токсина |
+ |
– |
– |
Наличие пестицина 1 |
+ |
– |
– |
Наличие плазмокоагулазы |
+ |
– |
– |
Фибринолизин |
+ |
– |
– |
Чувствительность к чумному бактериофагу |
+ |
– |
– |
Вирулентность |
в R-форме |
в S-форме |
в S-форме |
