Бактериоскопическое исследование. Из исследуе­мого материала готовят мазки, окрашивают по Граму. В чис­той культуре - мелкие кокки. В мазках из органов преобладают палочковидные формы. Спор не образуют, Гр (-).

Бактериологическое исследование и биопроба. Бактериологический метод редко дает положительный результат. Чистую культуру выделяют после накопления на восприимчивых лаб. Животных. Для биопробы используют белых мышей и морских свинок. Мышей заражают подкожно, свинок – внутрибрюшинно. Животные погибают на 3-6 сутки. Чистую культуру выделяют из внутренних органов на желточной среде или гликозоцистеиновом кровяном агаре. При идентификации опираются на морфологию и тинкториальные свойства, отсутствие роста на МПА, агглютинацию гомологичной сыворотки.

Серодиагностика – развернутая реакция агглютинации, РПГА, РИФ. Ставится реакция агглютинации с туляремийным диагностикумом. Относительно позднее появление агглю­тининов в крови (на 2-й неделе болезни) затрудняет применение этой реакции для ранней диагностики, однако их длительное сохранение делает возможной ретроспективную диагностику.

Для экспресс-диагностики применяется кровяно-капельная ре­акция: кровь из пальца наносят на стекло, добавляют каплю дистиллированной воды (для лизиса эритроцитов), вносят каплю диагностикума и смешивают стеклянной палочкой. При наличии в крови агглютининов в диагностическом титре (1:100 и выше) в капле немедленно на­ступает агглютинация диагностикума; при титрах ниже диагно­стических агглютинация происходит через 2—3 мин.

Аллергические пробы для ранней диагностики туляремии. Выпускаются два вида тулярина: для внутрикожной пробы и для накожной. Проба высоко­чувствительна и дает положительные результаты у больных, на­чиная с 3—5-го дня болезни, но также и у переболевших и вак­цинированных – анамнестическая реакция.

Лечение

Применяют АБ аминогликозиды, макролиды и фторхинолоны. При затяжном тячении проводят комбинированную АБ-терапию и вакцинотерапию с применением убитой лечебной вакцины (курс 6-10 инъекций)

Профилактика

Специфическая профилактика - применяют живую туляремийную вакцину (из штамма №15). Иммунитет длительный (5-6 лет), проверяется с помощью пробы с тулярином.

Неспецифическая профилактика – направлена на борьбу с грызунами.

37.Возбудитель холеры. Характеристика. Лабораторная диагностика. Специфическая профилактика

I.Морфология

1.Vibrio cholera

2.Прямые или изогнутые, короткие, в мазках располагаются параллельно “cтаи рыб”

3.Грам-

4.Нет капсулы, спор, монотрих – очень подвижны!

II. Физиология

1.Прототрофы, галофиты, растут на среде с щелочной реакцией, 0,5% NaCl

2.Аэробы или факультативные аэробы

3.К питательным средам не требовательны

4.На твёрдых средах – небольшие прозрачные S-колонии и неровные мутные R-колонии

5.В жидких средах – голубоватая пленка на повер-ти (говорит о том, что они аэробы)

6.Ферментируют углеводы до к-ты (1-я группа Хейберга из 6: САХ+, МАН+ АРАБ-), образуют индол, восстанавливают нитраты (оксидазы). Не образуют H2S.

7.Инвазия - Фибринолизин, гиалуронидаза

8.Эндотоксин – ЛПС КС, вызывает образование вибриоцидных антител

Экзотоксин – холероген, повышает АЦ, цАМФ, нарушает водно-солевой обмен, состоит из субъединиц:

А1 – сам токсин А2 – связывает А1 и В

В – проникновение в энтероцит, взаимодействие с рецептором

9. Антигены:

H-антиген: жгутиковый белок флагеллин, термолабильный, общий у всех возбудителей холеры

О-Антиген – термолабильный, полисахаридная часть ЛПС, возбудители холеры относятся к серогруппам О1 и О139.

К-Антиген (капсульный) – только у V.cholerae Bengal.

10. Во внешней среде устойчива (в воде)

III.Эпидемиология

1.Источник инфекции: больной, реконвалесценты (выздоравливающие), здоровые бактерионосители, загрязненная вода

2.Механизм передачи: фекально-оральный, путь – вода!!!, контактно-бытовой, пища

IV. Диагностика

Лабораторная диагностика – бактериологический метод (материал – рвота, испражнение, сточные воды)

1 этап – параллельно посев на щелочной агар(12-24ч), среду TCBS –элективная среда! (1824ч), 0,5-1мл 1% пептонной воды (среда накопления). 37 градусов.

Компоненты TCBS – пептон и дрожжевой экстракт – источники азота и витаминов В, Oxgall

– бычья желчь, желчные соли подавляют рост Грам+, тиосульфат натрия – источник серы и индикатор на H2S (вместе с цитратом Fe), бром тимоловый синий – индикатор pH, ферментация сахарозы – желтые колонии.

2 этап (6-8ч) Отбор подозрительных колоний с щелочного агара (ЩА), среды TCBS и высев на ЩА и среду TCBS. Микроскопия. Постановка ПЦР, иммобилизационный тест

3-й этап (12-14ч) Пересев из 2-ой среды накопления на плотные элективные питательные среды (TCBS)

4-й этап (18-24ч). Отбор типичных колоний. Тест на оксидазу, РА с холерными сыворотками 0-1, 0-139, РИФ, диагностические бактериофаги, пересев на щелочной агар

Бактериоскопический метод – висячая или раздавленная капля (на подвижность)

Серодиагностика.

АТ появляются на 5-7-ой день

РА (вспомогательный характер)

РПГА с диагностикумом эритроцитарным или полимерным холерным антигенным О1 или О139.

V.Современные методы диагностики

ИФА

ПЦР

VI. Вакцинопрофилактика

Все вакцины используются только по эпидемическим показаниям, действуют 6 месяцев.

Холерная О-вакцина – антимикробный иммунитет (профилактика носительства)

Холероген-анатоксин – антитоксический иммунитет (профилактика тяжелого течения заболевания)

Вакцина холерная бивалентная химическая (Россия) – таблетки, смесь из холерогенаанатоксина и О-антигенов

Моновалентная убитая вакцина (комм. название “Durokal”) – целые клетки V. cholerae.

Убитая бивалентная корпускулярная вакцина пероральная (О1 и О139)

VII. Серопрофилактика - нет

VIII. Вакцинотерапия - нет

IX. Особенности

Холера – острое инфекционное заболевание, характеризующееся поражением тонкой кишки, нарушением водно-солевого обмена, интоксикацией, в тяжелых случаях – обильный понос с быстрой потерей жидкости (рисовый отвар), солей, как итог – обезвоживание и смерть.

Патогенез

38. Возбудитель чумы. Характеристика. Лабораторная диагностика. Специфическая профилактика Принципы лечения

Чума (pestis) - острое природно-очаговое зоонозное заболевание, вызы-ваемое Y.pestis, характеризующееся тяжелой интоксикацией, серозно-геморрагическим воспалением в лимфатических узлах, легких и других ор-ганах, а также сепсисом

2. I. Характеристика возбудителя

Циркуляция возбудителей осуществлялась между дикими животными и кровососущими членистоногими. Человек, попадая в природный очаг заражался при нападении на него членистоногих или же при непосредственном контакте с инфицированными дикими животными.

Резервуар: суслики, сурки, песчанки, хомяки, полевки, крысы и морские свинки.

Антопоургические очаги чумы являются вторичными, где источником и резервуаром инфекции являются домовые виды крыс и мышей. Вторичные очаги выявлены в местностях между 35о северной и 35о южной широты. У этих грызунов чума протекает нередко в виде хронической формы или в виде бессимптомно-го носительства. В населенных пунктах во время эпизоотий чумы среди грызунов отмечается зараженность некоторых видов домашних животных - кошек, верблюдов, собак и др.