- •Тканевая селекция земляники на устойчивость к комплексу грибных патогенов
- •Введение
- •1. Требования к организации работ, состав питательных сред
- •2. Сомаклональная изменчивость каллусных клеток и методы повышения ее частоты
- •3.Выбор исходного экспланта, индукция и культивирование каллусов
- •4. Тканевая селекция земляники на устойчивость к фитопатогенным грибам
- •4.1. Приготовление селективных сред
- •4.2. Отбор каллусов на резистентность к культуральным фильтратам фитопатогенных грибов
- •5. Индукция морфогенеза из изолированных тканей земляники
- •6. Клональное микроразмножение и укоренение побегов земляники. Адаптация растений-регенерантов к выращиванию в почве
- •7. Тестирование растений-регенерантов земляники на устойчивость к фитопатогенам и их морфо-биологическое описание
- •Заключение
- •Литература
- •394087, Воронеж, ул. Мичурина, 1
4. Тканевая селекция земляники на устойчивость к фитопатогенным грибам
Наиболее распространенными и вредоносными грибными заболеваниями земляники ананасной (Fragaria x ananassa Duch.) являются мучнистая роса, вертициллезное увядание, различные фитофторозы, белая пятнистость, бурая пятнистость, серая гниль.
Нами была отработана методика тканевой селекции земляники на резистентность к грибам Phytophthora cactorum(Leb. et Cohn) Shroet и Botritis cinerea Pers. Гриб Ph. cactorum вызывает фитофторозное увядание земляники и фитофторозную гниль ягод.
Фитофторозное увядание начинается с потери тургора периферийными листьями куста. Затем поникают и буреют центральные листья. У основания черешков появляются некрозы, растения распластываются по земле и засыхают.
Фитофторозная гниль ягод начинается с появления на них бурых пятен, затем развиваются микроспорангии. Мякоть становится горьковатой и приобретает резинообразную консистенцию.
В России это заболевание получило широкое распространение [46, 47, 48]. Гибель растений и потеря урожая от Ph. cactorum у восприимчивых сортов может достигать 50-100 %.
Гриб Botritis cinerea Pers. вызывает серую гниль, которая приводит в благоприятных для гриба условиях к потере 50 и более процентов урожая [49, 50, 51]. Он широко распространен, особенно в регионах с большим количеством осадков и умеренным теплом. Это факультативный паразит. Гриб выделяет токсины, убивающие клетки растений, и развивается на мертвых органических остатках. B. cinerea поражает ткани многих видов растений. У земляники серая гниль поражает листья, бутоны, цветки, завязи и зрелые ягоды. На пораженных плодах сначала появляются бурые пятна, они быстро расширяются и покрывают всю поверхность. Потом появляются конидиеносцы, покрывающие плоды сплошным серым налетом.
Поскольку как фитофтороз, так и серая гниль обусловлены главным образом действием токсинов на клетки и ткани растений, устойчивость к патогенам определяется устойчивостью клеток к токсинам. Это позволяет проводить селекцию на резистентность на клеточном или тканевом уровне [42].
4.1. Приготовление селективных сред
Селективные среды для каллусных культур земляники готовят путем введения культуральных фильтратов патогенов в среды для субкультивирования каллусов. В качестве селективного агента можно использовать также очищенные токсины грибов, но это не всегда целесообразно. Культуральные фильтраты грибов содержат целый комплекс веществ, роль которых в патогенезе не является зачастую вполне выясненной. Поэтому по данным ряда авторов, обобщенных в работе Ю.Ю. Глебы и К.М. Сытника [3] предпочтительнее использовать для клеточной и тканевой селекции культуральные фильтраты патогенов, а не их токсины.
Нами были использованы культуральные фильтраты грибов Ph. cactorum и B. cinerea, полученные в лаборатории иммунитета ВНИИГиСПР Л.А.Ищенко и И.Н.Чесноковой.
Оптимальные концентрации селективного агента следует подбирать индивидуально. Они не должны вызывать стопроцентной гибели каллусных культур, но должны подавлять рост большинства каллусов.
Чтобы осуществить подбор оптимальных концентраций селективного агента, мы рекомендуем готовить среды для субкультивирования каллусов с содержанием культурального фильтрата патогена 0 (контроль), 5, 10, 15, 20, 25 и 30%. На приготовленные среды нужно высадить каллусы земляники и культивировать их в течение месяца в условиях, описанных в разделе 3.
Через месяц рост каллусов оценивают по шестибалльной шкале, где 0 - отсутствие роста, а 5 баллов - увеличение объема каллуса в 5 и более раз.
Следует иметь в виду, что при градуальном возрастании концентрации селективного агента в среде в ряде случаев снижение интенсивности роста каллусов происходит не монотонно. При небольших концентрациях (10 % фильтрата) может происходить, вопреки ожиданиям, некоторое увеличение интенсивности пролиферации каллуса. Причины этого явления достаточно подробно описаны в литературе [52, 53, 54]. На практике же следует учитывать, что у сортов земляники, различающихся по устойчивости к патогену, концентрации культурального фильтрата, при которых будет наблюдаться некоторая стимуляция пролиферации каллусных культур, и концентрации, при которых будет достигаться устойчивое снижение интенсивности роста каллусов, будут различными. (Этот факт может быть использован для предварительного тестирования на устойчивость).
Поэтому при подборе концентраций селективного агента в среде для тканевой селекции необходимо брать ряд постепенно нарастающих концентраций и каллусы сортов земляники заведомо различающихся по устойчивости к патогену. Для работы следует выбирать концентрацию культурального фильтрата в среде, при которой у среднеустойчивых к патогену сортов сохраняют способность к росту 5-15 % каллусов.
Для культурального фильтрата гриба Ph. cactorum эта концентрация равна 20 %, для гриба B. cinerea 15-20 %.
Необходима проверка грибных токсинов на термостабильность. Если они окажутся неустойчивыми к высоким температурам, следует применять холодную стерилизацию культуральных фильтратов путем пропускания их через мембранные фильтры с последующим добавлением в ламинар-боксе в разогретую среду.
Опытами, проведенными в лаборатории биотехнологии ВНИИГиСПР, доказана достаточно высокая термостабильность токсинов Ph. cactorum и B. cinerea. Это позволяет вносить их в питательные среды до автоклавирования, что значительно проще технически.