Добавил:
Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:

Презентация / РыскинаЕА_Лекция по энзимологии

.pdf
Скачиваний:
37
Добавлен:
10.03.2021
Размер:
2.22 Mб
Скачать

Альфа-амилаза (Диастаза, 1,4 альфа-Д- Глюканогидролаза) (КФ 3.2.1.1.)

Основной фермент, участвующий в гидролизе углеводов, а именно разложении крахмала и гликогена до декстринов, мальтозы и глюкозы. Места образования фермента – слюнные железы и поджелудочная железа. В сыворотке крови выделяют, таким образом, панкреатический (Р-тип) и слюнной (S-тип) α-амилазы. Кальций содержащий фермент.

Определение активности α-амилазы в сыворотке и моче используется преимущественно в диагностике

заболеваний поджелудочной железы.

ДЛЯ ОПРЕДЕЛЕНИЯ АКТИВНОСТИ АМИЛАЗЫ ПРЕДЛОЖЕНО БОЛЕЕ 200 МЕТОДОВ. В НАСТОЯЩЕЕ ВРЕМЯ ШИРОКОЕ РАСПРОСТРАНЕНИЕ ИМЕЮТ ФЕРМЕНТАТИВНЫЕ КОЛОРИМЕТРИЧЕСКИЕ МЕТОДЫ С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ РАЗЛИЧНЫХ ХРОМОГЕННЫХ СУБСТРАТОВ

Пример метода с использование хромогенных субстратов: В качестве

субстрата для a-амилазы используется мальтотриозид, связанный с

хромогеном 2-хлор-п-нитрофенолом (ХНФ). Под действием a-амилазы субстрат гидролизуется с выделением окрашенного 2-хлор-п-нитрофенола, мальтотриозы и глюкозы. Реакция протекает быстро и не требует присутствия в реакционной смеси коферментов. Скорость гидролиза субстрата и образования продукта (2-хлор-4-нитрофенола) прямо пропорционально активности a-амилазы в пробе и измеряется спектрофотометрически при длине волны 405 нм. Рекомендуется использовать ФЭК или полуавтоматический, автоматический биохимический анализатор, а именно - кинетический режим, обеспечивающий термостатирование фотометрической ячейки при 37С.

Амилаза

Мальтотриозид-ХНФ -----------

> ХНФ + Мальтотриоза + Глюкоза

Линейность метода: до 1500 Е/л. Норма: 25-125 Е/л (37°С).

АЛАНИНАМИНОТРАНСФЕРАЗА (АЛТ) – КФ 2.6.1.2. АСПАРТАТАМИНОТРАНСФЕРАЗА (АСТ) - КФ 2.6.1.1.

Эти ферменты играют центральную роль в обмене белков.

Избирательная тканевая локализация позволяет считать трансаминазы индикаторными (маркерными) ферментами:

АСТ для миокарда

АЛТ для печени

Соотношение активности аминотрансфераз - АСТ/АЛТ (коэффициент де Ритиса) позволяет судить о глубине повреждения клеток: АЛТ преимущественно локализована в цитоплазме, АСТ — в митохондриях.

СУЩЕСТВУЮЩИЕ МЕТОДЫ ОПРЕДЕЛЕНИЯ АКТИВНОСТИ ТРАНСАМИНАЗ В СЫВОРОТКЕ КРОВИ МОЖНО РАЗДЕЛИТЬ НА ДВЕ ОСНОВНЫЕ ГРУППЫ:

ФОТОКОЛОРИМЕТРИЧЕСКИЕ И СПЕКТРОФОТОМЕТРИЧЕСКИЕ:

Колориметрические методы основаны на образовании окрашенного динитрофенилгидразона пировиноградной кислоты. Наибольшее применение нашел метод Райтмана-Френкеля, являющийся технически простым и дающим воспроизводимые результаты.

Принцип метода: При определении активности АСТ и АЛТ пользуются тем, что образующийся продукт реакции пировиноградная кислота (ПВК) при добавлении 2,4 динитрофенилгидрозина (2,4ДНФГ) образует окрашенный гидразон ПВК в щелочной среде. Интенсивность окраски прямо пропорционально количеству образовавшейся ПВК, а значит и активности фермента.

 

АЛТ

 

Аланин + ά-кетоглутаровая кислота

ПВК + 2,4ДНФГ →

гидразон ПВК + NaOH коричневое окрашивание

 

АСТ

 

Аспартат + ά-кетоглутаровая кислота

ПВК + 2,4ДНФГ →

гидразон ПВК + NaOH коричневое окрашивание

ВОСНОВЕ СПЕКТРОФОТОМЕТРИЧЕСКИХ МЕТОДОВ ОПРЕДЕЛЕНИЯ АКТИВНОСТИ АЛТ И АСТ ЛЕЖИТ

ИСПОЛЬЗОВАНИЕ ОПТИЧЕСКОГО ТЕСТА ВАРБУРГА

Эти методы являются наиболее специфичными и точными для исследования активности трансаминаз сыворотки крови, требуют постановки индикаторных реакций, в которые вовлекаются продукты основной реакции:

Скорость окисления НАДН(Н+) пропорциональна активности

аланин аминотрансферазы (АЛТ): L-аланин + a-кетоглутарат ↔ пируват + L-глутамат

пируват + НАДН(Н +) ↔ лактат + НАД

Скорость окисления НАДН(Н+) пропорциональна активности

аспартатаминотрансферазы (АСТ): L-аспартат + a-кетоглутарат ↔ оксалоацетат + L-глутамат

оксалоацетат + НАДН(Н+) ↔ малат + НАД

КРЕАТИНКИНАЗА (КК) - ФЕРМЕНТ, КАТАЛИЗИРУЮЩИЙ ОБРАТИМУЮ РЕАКЦИЮ ПЕРЕНОСА ОСТАТКА ФОСФОРНОЙ КИСЛОТЫ С АТФ НА КРЕАТИН.

Наиболее точными методами определения общей активности КК считаются методы, основанные на оптическом тесте Варбурга. Определение активности фермента можно проводить как по прямой, так и по обратной реакции, определяя содержание креатина или креатинфосфата:

Прямая реакция:

Креатин + АТФ креатинкиназа Креатинфосфат + АДФ

АДФ + Пируватфосфат пируваткиназа

АТФ + Пируват

Пируват + НАДН лактатдегидргеназа

Лактат + НАД

Клиническое значение: Повышение общей активности КК имеет место при мышечных повреждениях (инфаркт миокарда, травма мышцы), при мышечной дистрофии, полимиозите, сильном мышечном напряжении (беге), гипотиреозе, инсульте.

Норма общей активности КК варьирует в зависимости от метода: 10-50 МЕ.

УНИФИЦИРОВАННЫМ МЕТОДОМ ЯВЛЯЕТСЯ ФОТОКОЛОРОМЕТРИЧЕСКИЙ

МЕТОД, ОСНОВАННЫЙ НА ОПРЕДЕЛЕНИИ КОНЦЕНТРАЦИИ

НЕОРГАНИЧЕСКОГО ФОСФОРА, ОСВОБОЖДАЮЩЕГОСЯ В РЕЗУЛЬТАТЕ ГИДРОЛИТИЧЕСКОГО РАСЩЕПЛЕНИЯ КРЕАТИНФОСФАТА. НЕОРГАНИЧЕСКИЙ ФОСФОР ОПРЕДЕЛЯЮТ ФОТОКОЛОРИМЕТРИЧЕСКИ

Нормальные величины:

Общая активность КК (сыворотка) до 6 МЕ

Изоферменты КК - сыворотка (электрофорез):

ВB — отсутствие или следы

MB < 4-6% общей активности

MM > 94-96%общей активности

Влияющие факторы: in vitro: завышает результаты исследования наличие фосфора в посуде, гемолиз (из-за наличия в эритроцитах аденилаткиназы).

in vivo: повторные мышечные инъекции, тяжелые мышечные нагрузки, хирургические операции, этанол, длительная анестезия ведут к увеличению активности фермента в сыворотке.

ИЗОФЕРМЕНТЫ КРЕАТИНФОСФОКИНАЗЫ ОПРЕДЕЛЯЮТ ПРИ ПОМОЩИ ЭЛЕКТРОФОРЕЗА (НА АГАРЕ, В ПОЛИАКРИЛАМИДНОМ ГЕЛЕ) И КОЛОНОЧНОЙ

ХРОМАТОГРАФИИ.

НАИБОЛЬШЕЕ КЛИНИЧЕСКОЕ ЗНАЧЕНИЕ ИМЕЕТ ОПРЕДЕЛЕНИЕ АКТИВНОСТИ ИЗОФЕРМЕНТОВ КРЕАТИНКИНАЗЫ:

КК-МВ (СЕРДЕЧНЫЙ ИЗОФЕРМЕНТ, ИЗМЕНЯЮЩИЙСЯ ПРИ ПОВРЕЖДЕНИИ КЛЕТОК МИОКАРДА),

КК-ВВ (МОЗГОВОЙ ИЗОФЕРМЕНТ, ОТРАЖАЮЩИЙ ПАТОЛОГИЮ КЛЕТОК ГОЛОВНОГО МОЗГА),

КК-ММ (МЫШЕЧНЫЙ ИЗОФЕРМЕНТ, НАХОДЯЩИЙСЯ В СКЕЛЕТНЫХ МЫШЦАХ).

После инфаркта миокарда КК-МВ повышается быстро (за 3-5 ч) и сохраняется повышенной 2-3 дня. Показатель не повышается при инфаркте легкого и поражении паренхимы печени.

Содержание КК-ММ повышается в сыворотке при повреждении скелетных мышц, мышцы сердца, мозга, при заболеваниях мышц, после тяжелой физической нагрузки.

ЛАКТАТДЕГИДРОГЕНАЗА (ЛДГ) - ЦИТОПЛАЗМАТИЧЕСКИЙ ФЕРМЕНТ, ОБРАТИМО КАТАЛИЗИРУЮЩИЙ ВОССТАНОВЛЕНИЕ ПИРУВАТА В ЛАКТАТ

Существуют следующие методы определения общей активности ЛДГ в сыворотке крови. Эти методы высокочувствительны.

1. Колориметрические методы. Динитрофенилгидразиновый метод основан на определении количества пировиноградной кислоты (продукт реакции) с помощью 2,4-дининтрофенилгидразина, который образует с пируватом в щелочной среде окрашенное соединение (см. АЛТ).

2. Спектрофотометрические методы основаны на различии спектров поглощения окисленной и восстановленной форм НАД (оптический тест Варбурга).

Лактат + НАД

Лактатдегидрогеназа

Пируват + НАДН

Норма (варьирует в разных методах): до 250 МЕ при 37 °С.

Клиническое значение. Общая активность ЛДГ в сыворотке крови резко повышена при мегалобластных и пернициозных анемиях, обширных опухолевых процессах, вирусных гепатитах, шоке, гипоксии. Выраженное повышение наблюдается при циррозах печени, обтурационных желтухах, заболеваниях почек, опорно-мышечного аппарата, опухолях, при сердечной недостаточности.