
- •Позиционирование нуклеосом может контролировать доступность промоторов
- •Распределение нуклеосом на молекуле ДНК подчиняется определенным
- •Позиционирование нуклеосом на ДНК
- •Участки гиперчувуствительности к ДНК азе I (DHS) – места, свободные от нуклеосом как
- •Эритроид-специфичные DHSs
- •Расположение нуклеосом на ДНК определяется
- •АА, ТТ, ТА через каждые 10 пар (в местах контакта малой бороздки ДНК
- •DHS – участок гиперчувствительности к ДНКазе, экспериментально обнаруженный в определенных клетках
- •Существуют транскрипционные факторы, способные связываться с ДНК в составе нуклеосомы и стимулировать сборку
- •Свободный
- •NuRF
- •NuRF
- •NuRF
- •Расстояние между промотором и активаторным участком часто бывает достаточно большим. Тогда возникает два
- •факторы ремоделирования хроматина могут не только «открывать», но и «закрывать» промоторы. Это случается,
- •UBC4 активируется фактором теплового шока Hsf1.
- •Перемещение нуклеосомы в другую, даже более выгодную с энергетической точки зрения, позицию не
- •Присутствие нуклеосом на регуляторных последовательностях (например, на промоторах) может создать серьезные проблемы для
- •ATP-dependent chromatin remodeling complex
- •Под действием комплекса ремоделирования хроматина RSC I возникают нестабильные нуклеосомы, связывающие 180 п.н.
- •АТФазы факторов ремоделирования хроматина относятся к суперсемейству ДНК хеликаз,
- •механизм работы комплексов ремоделирования хроматина (реакция слайдинга, для которой достаточно собственно АТФазы
- •Эксперименты с использованием single molecule FRET показали, что ДНК перемещается относительно ядра нуклеосомы
- •связанная с нуклеосомой АТФаза ISWI взаимодействует с entry site, HSL-2 site и хвостом
- •active
- •РЕГУЛЯТОРНЫЕ ЭЛЕМЕНТЫ ЭУКАРИОТИЧЕСКОГО ГЕНОМА
- •Регуляторные элементы геномного домена
- •CAGE – Cap Analysis of Gene Expression
- •Промоторы
- •В CpG островках расположено около 60% всех промоторов, в том числе абсолютное большинство
- •В тех промоторах, которые располагаются в CpG островках, большинство сайтов связывания транскрипционных факторов
- •DHS, unstable nucleosome
- •TATA-box, Inr, DPE and MTE
- •Впромоторах с несколькими TSS (CpG островки), после старта транскрипции присутствует ряд позиционированных нуклеосом.
- •Многие, а возможно и большинство промоторов работают двунаправленно
- •Set 1 - COMPASS– H3 K4 di- et tri-methylation; Set1- monomethylation Set 2
- •ЭНХАНСЕРЫ
- •энхансеры контролируют частоту транскрипционных пульсов
- •it has been estimated that there may be
- •В ходе дифференцировки появление типичных для энхансера модификаций (chromatin signature) обычно предшествует активации
- •Неработающие энхансеры в стволовых клетках, которые будут активированы по ходу дифференцировки
- •Позиции активных и потенциальных (репрессированных в данном типе клеток) энхансеров можно предсказать на
- •Создание особого хроматинового ландшафта на энхансерах может обеспечиваться рядом механизмов
- •Ферменты, вносящие, удаляющие и считывающие модификации гистонов на энхансерах
- •Энхансеры служат местами посадки РНК полимеразы II, которая синтезирует различные типы некодирующей РНК.
- •Существуют разные классы РНК, транскрибирующейся с энхансеров
- •Наряду с короткими двунаправленными транскриптами (eRNA), внутригенные энхансеры могут направлять и снтез протяженных
- •Промотор гена Mpg
- •Зачем нужна eRNA?
- •РНК-полимераза может служить “транспортным средством”, обеспечивающим
- •Подавление транскрипионной активности энхансера приводит к снижению уровня экспрессии активируемых этим энхансером генов
- •Привлечение к энхансеру гистондезацетилаз
- •Почему на энхансерах нет триметилирования Н3К4, хотя энхансеры транскрибируютсмя Pol II?
- •Супер-энхансеры

UBC4 активируется фактором теплового шока Hsf1.
при
фактора

Перемещение нуклеосомы в другую, даже более выгодную с энергетической точки зрения, позицию не происходит спонтанно. Эту работу выполняют комплексы ремоделирования хроматина
A
B
A’

Присутствие нуклеосом на регуляторных последовательностях (например, на промоторах) может создать серьезные проблемы для работы регуляторных механизмов.
Эти проблемы решаются при участии комплексов ремоделирования хроматина
существует три основных группы комплексов ремоделирования хроматина
GROUP PROTOTIPE
SWI/SNF
ISWI
CHD
destabilisation
sliding
Transfer of nucleosomal to another sequence
swi2/snf2 (yeast)
NURF (Drosophila) CHD-1 (yeast) NURD (Drosophila)
swi/snf activities
ATPase
swi2/snf2 (bromodomain)
ISWI
Chd3/Chd4 (Mi-2) (chromodomain)
NURF activities
NURD activities
sliding + deacetylation des histones (HDAC1, HDAC2)

ATP-dependent chromatin remodeling complex
acetyl-lysine–binding domain |
Binding histone tail |
Chromatin organisation modifier |
Narlikar GJ, et al. Cell, 2002, 108:475487


Под действием комплекса ремоделирования хроматина RSC I возникают нестабильные нуклеосомы, связывающие 180 п.н. ДНК. В составе этих, содержащих избыточные 33 п.н. ДНК нуклеосом многие контакты ДНК с гистонами нарушены, в силу чего ДНК становится доступной для действия многих ферментов и снимаются накладываемые обычными нуклеосомами ограничения конформационной подвижности ДНК
Shukla et al., (2010) Remosomes: generated non-mobilized particles approximately 180
DNA loosely associated with the histone octamer.
. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 107, 1936– 1941

АТФазы факторов ремоделирования хроматина относятся к суперсемейству ДНК хеликаз,
хотя и не обладают способностью расплетать ДНК (но могут перемещаться вдоль цепи от 3’ к 5’ концу, либо перемещать саму цепь)

механизм работы комплексов ремоделирования хроматина (реакция слайдинга, для которой достаточно собственно АТФазы
образование петли у место входа ДНК на нуклеосому (нет экспериментальных подтверждений)
связывание АТФазы с областью SHL-2 (два витка от центра симметрии, где реализуются
наиболее прочные контакты ДНК с гистонами –
доказано
изменение параметров двойной срирали (twist distortion) , благодаря наличию сходной с хеликазной активности. Следствие – нарушение всех контактов с ДНК в этой области
изменение конфигурации октамера (АТФаза связывается с областью выхода хвоста гистона Н4)

Эксперименты с использованием single molecule FRET показали, что ДНК перемещается относительно ядра нуклеосомы очень медленно (ранее считалось, что перемещение происходит шагами по 10 или 50 пар)
вытаскивание из |
затаскивание в нуклеосому |
вытаскивание 3 п.н., |
нуклеосомы 7 п.н., |
3 п.н., частичное снятие |
восстановление |
создание напряженного |
напряжения |
напряжения |
участка между SHL2 и |
|
|
entry site |
|
|

связанная с нуклеосомой АТФаза ISWI взаимодействует с entry site, HSL-2 site и хвостом гистона Н4