Добавил:
Upload Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:
Методичка госп хир Хир. Инфекция.doc
Скачиваний:
0
Добавлен:
01.07.2025
Размер:
10.63 Mб
Скачать

Техника забора и транспортировки биологического материала для проведения микробиологического исследования

Мате- риал

Техника забора

Примечание

Кровь

Пробы крови забирают из кубитальной вены. Кожу в месте пункции предварительно обрабатывают йодом (или йод + спирт) в течение 1 минуты с помощью ватного тампона - следует использовать концентрические движения от места пункции к периферии. Непосредственно перед забором крови кожу обрабатывают 70% спиртом. При проведении вене­пункции используют стерильные перчатки, иглу и шприц. Путем венепункции получают как минимум 10 мл крови (у детей 2 мл). Кровь собирается в шприц и вводится затем во флаконы с питательной средой; соотношение объемов крови и среды должно быть не более 1:10. Резиновую крышку флакона перед проколом иглой обрабатывают спиртом. Пробы крови для анализа на анаэробную флору лучше собирать в вакуумные пробирки типа Vacutainer. Пробы крови следует немедленно доставить в микробиологическую лабораторию; при невозможности немедленной транспортировки следует избегать охлаждения проб - их следует инкубировать при температуре 37-С.

1. Следует избегать забора крови из катетеров. 2. Кровь для анализа забирается до назначения антибиотиков, в крайнем случае - непосредственно перед введнием очередной дозы препарата. 3. Для получения опти-мальных результатов следует забирать как минимум 3 пробы в течение 24 часов, а лучше 5-6 раз в течение 48 часов.

Поверхностные раны

Первоначально следует удалить отделяемое раны в поверхностных слоях. Затем забирают материал из глубоких участков, а также из краев раны с помощью стерильного тампона, который помещают в транспортную среду, а при отсутствии последней - в стерильный контейнер, который маркируется. Гной следует аспирировать в шприц.

Не доставлять тампоны с исследуемым материалом в лабораторию в открытом виде без контейнера. При подозрении на анаэробную инфекцию следует также произвести биопсию тканей; материал для анализа следует транспортировать в герметичных контейнерах.

Абсцессы

После дезинфекции кожи (см. кровь) жидкость или гной аспирируют путем пункции полости абсцесса стерильной иглой. При немедленной транспортировке в лабораторию аспират может быть оставлен в шприце после тщательного удаления из него воздуха; иглу при этом следует снять, наконечник шприца закрыть стерильным колпачком. При отсроченной транспортировке материал для анализа помещают в герметичный контейнер.

При отсроченной транспортировке следует избегать охлаждения полученного материала.

При гнойно-хирургической инфекции типичным является выявление нейтрофильного типа экссудата. Гнойные экссудаты имеют нейтрофильный тип (в лейкограмме нейтрофилы составляют 90-95 %). Гнойный экссудат отличается от серозно-гнойного тем, что все нейтрофильные лейкоциты находятся в стадии цитолиза и деструкции. Гнойный экссудат имеет щелочное или нейтральное значение рН. Уровень белка превышает 3 %.

С целью оценки фаз раневого процесса применяют морфологический анализ раневых отпечатков.

Оценка стадий репаративной реакции в ране проводится по классификации М. Ф. Камаева (1971), где автор выделяет три типа:

  • дегенеративно-некротический тип;

  • дегенеративно-воспалительный тип;

  • регенеративный тип