Отделяемое из женских половых органов

Забор материала проводит акушер-гинеколог, до начала мануального исследования.

Материал с вульвы и предверия влагалища собирают стерильным ватным тампоном; из влагалища (после введения зеркал и подъемника) берут мазки с заднего свода или с участков слизистой с видимыми изменениями; из цервикального канала - тонким ватным цервикальным тампоном, смоченным стерильным физиологическим раствором; из матки - с помощью шприца- аспиратора. При исследовании на хламидии берут соскоб влагалищного эпителия. Из полученного материала сразу готовят мазки.

Материал доставляют в лабораторию немедленно (мазки в стерильных чашках Петри). Материал можно хранить не более 2 часов в холодильнике. При подозрении на анаэробную инфекцию немедленно проводят посев материала.

Отделяемое ран

Забор материала осуществляет врач с соблюдением всех правил асептики, который берут стерильным ватным тампоном круговыми вращательными движениями от центра раны к ее краям, отдельным тампоном для мазка и для посева.

Материал из дренажа засасывают стерильным шприцем 1-2 мл и переливают в стерильную пробирку.

Доставка материала для бактериологического исследования осуществляется в течение 1 часа, хранение не более 2 часов в холодильнике.

При подозрении на анаэробную инфекцию, вызванную неспорообразующими анаэробами, материал доставляют в одноразовых шприцах (без попадания в них воздуха) или в пенициллиновых флаконах с пробками и алюминиевыми колпачками (материал вносят через прокол), заполненными газовой смесью (80% - азота, 10% - водорода; 10% - углекислого газа) [Колесов А.П. с соавт.,1989].

Отделяемое глаз

Взятие материала осуществляет врач-офтальмолог, не ранее чем через 5-6 часов после приема препаратов или процедур.

Материал с коньюктивы берут бактериологической петлей или стерильной глазной палочкой. Ватный тампон используют при обильном гнойном отделяемом. Посев на среды проводят сразу же, одномоментно готовят мазки.

Испражнения

При исследовании на дисбактериоз материал получают путем естественной дефикации. Исследование следует начинать не позже чем через 1 час с момента забора материала.

1.2. Организация и проведение микробиологических исследований

На современном этапе диагностического процесса для микробиологической лаборатории весьма актуальной является проблема качественного выделения чистой культуры (контролю качества проведения исследования должно уделяться пристальное внимание). Этот важный этап анализа, от которого зависит результат идентификации микроорганизма, определения его свойств (в том числе резистентности к антибиотикам) и назначения адекватного лечения пациенту.

1.2.1. Получение чистой культуры

Начальным этапом бактериологического исследования является выделение из исследуемого материала, полученного с соблюдением правил забора с учетом патогенетического характера и течения инфекционного процесса, изолированной колонии и накопление чистой культуры. Это очень важно, так как неправильный подбор питательных сред и условий культивирования делает не возможным выделение этиологически значимых возбудителей данной инфекционной патологии. Поэтому, при подготовке к посеву клинического материала, врач бактериолог должен отчетливо представлять, что он должен искать, в этом неоценимую помощь ему должен оказать врач клиницист, направивший данный материал на исследование.

Для эффективного и качественного бактериологического исследования необходимо правильно сделать подбор питательных сред для последующего исследования. Питательные среды должны отвечать поставленной цели, т.е. соответствовать трофическим потребностям выделяемых микроорганизмов, обеспечивать их рост в наиболее короткие сроки. А также давать возможность первичной идентификации от сопутствующей микрофлоры при ее возможном наличии (кроме забора материала из первоначально стерильных полостей, органов и тканей, например: брюшная и грудная полости; кровь, спиномозговая жидкость; биоптаты из органов и тканей). Вторым компонентом успешной работы, является выбор условий культивирования: температуры (например: микоплазмы рационально культивировать при температуре 35⁰С), содержания или отсутствия кислорода (например: нейссерии и стрептококки требуют 10% СО₂ в атмосфере; кампилобактерии – минимальное содержание кислорода; клостридии и бациллы – полное отсутствие кислорода и т.д.); времени инкубации (например: микобактерии культивируют не менее 3-4 недель, а энтеробактерии – 18-20 часов и т.п.).

Одним из направлений оптимизации и повышения эффективности и качества бактериологических исследований на первом этапе исследования, накопление и выделение этиологически значимых микроорганизмов, является применение высоко селективных сред для их выделения.