- •Министерство образования Российской Федерации
- •Рецензент
- •Содержание
- •Занятие №1
- •Занятие №2
- •Занятие №3
- •Занятие №4
- •Теоретические вопросы
- •Занятие №5
- •Теоретические вопросы
- •Занятие №6
- •Занятие №7 Коллоквиум по темам:
- •Занятие №8
- •Занятие №9
- •Занятие №10
- •Занятие №11
- •Занятие №12
- •Занятие №13
- •Занятие №14
- •Занятие №15 Коллоквиум по темам:
- •Занятие №16
- •Занятие №17
- •Рекомендуемая литература
- •Занятие
- •Теоретические вопросы
- •Занятие
- •Занятие
- •Занятие
- •Занятие
- •Занятие
- •Занятие
- •Занятие
- •Элементы организованного и неорганизованного осадков мочи по возможности идентифицируют, а также зарисовывают в тетрадях. Занятие
- •Занятие
- •Рекомендуемая литература
Занятие №11
Тема. Нарушения системы эритроцитов.
Цель занятия. Изучить причины, механизм развития, гематологические показатели и клинические проявления различных видов анемий.
Теоретические вопросы:
1. Эритроцитозы, определение понятия, виды, клинические проявления.
2. Характеристика абсолютных и относительных, наследственных и приобретенных эритроцитозов, их этиология и патогенез.
3. Анемии, определение, принципы классификации ( по этиологии, патогенезу, типу кроветворения, цветовому показателю, регенераторной способности костного мозга, размеру и форме эритроцитов).
4. Острая постгеморрагическая анемия, этиология, патогенез, стадии, гематологические проявления.
5. Гемолитическая анемия, причины, механизмы развития, гематологические проявления.
6. Железодефицитная анемия, причины, механизмы развития, гематологические проявления.
7. В-12-(фолиево)-дефицитная анемия, причины, механизмы развития, гематологические проявления.
8. Гипо- и апластические анемии, причины, механизмы развития, гематологические проявления.
9. Клинические проявления и компенсаторно-приспособительные механизмы при анемиях.
10. Принципы диагностики и лечения анемий.
11. Осмотическая резистентность эритроцитов, определение понятия, виды.
12. Причины и механизм нарушения осмотической резистентности и скорости оседания эритроцитов, их диагностическое значение.
Работа №1.Характеристика показателей красной крови при экспериментальной гемолитической анемии.
Материальное оснащение:
1.Пробирки простые |
- 5 шт. |
2. Штатив на 5 гнезд |
- 2 шт. |
3. Пипетки на 0,02мл |
- 4 шт. |
4. Пипетки на 5мл |
- 4 шт. |
5. Иглы от шприца для прокола вены |
- 2 шт. |
6. Стеклянная палочка в стакане |
- 2 шт. |
7. Стакан с ватой |
- 2 шт. |
8. Обезжиренные предметные стекла |
- 4 шт. |
9. Стекло со шлифованными гранями |
- 2 шт. |
10. Ванночка для окраски мазков со стеклянными рельсами |
- 2 шт. |
11. Полоски фильтровальной бумаги |
- 20 шт. |
12. Чашки Петри, выстланные влажной фильтровальной бумагой |
- 2 шт. |
13. Счетная камера и шлифованное покровное стекло к ней |
- 2 шт. |
14. Микроскопы |
- 4 шт. |
15. Фотоэлектроколориметр |
- 1 шт. |
16. Этиловый спирт (960) |
- 20 мл |
17. Трансформирующий раствор (ацетонциангидрин – 0,5мг; калий железосинеродистый – 0,2г; натрия гидрокарбонат – 1г; дистиллированная вода – до 1л) |
- 20 мл
- 20 мл |
18. Калибровочный раствор гемиглобинцианида (61,23 мг/100 мл) |
- 10 мл |
19. 1% раствор хлорида натрия |
- 20 мл |
20. Смесь Никифорова (960 этиловый спирт и этиловый эфир в соотношен 1:1) |
- 100 мл |
21. Насыщенный раствор бриллианткрезолбладу в абсолютном спирте (краска – 1,2г; абсолютный спирт – до 100 мл) |
- 10 мл |
22. Животные: кролик с гемолитической анемией |
1 шт. |
Методика проведения опыта.
Гемолитическая анемия у кролика воспроизводится путем подкожного введения 1% раствора фенилгидразина солянокислого (5мг/кг) трехкратно в течение 6 дней (с двухдневным интервалом).
В день занятия из краевой вены кролика (после прокола) набирают 0,02 мл крови в пробирку с заранее налитым трансформирующим раствором в количестве 5 мл, при этом кровь разводится в 251 раз. Содержимое пробирки тщательно перемешивают, оставляют стоять на 10 мин, а затем фотометрируют на фотоэлектроколориметре при длине волны 560нм (зеленый светофильтр) в кювете с толщиной слоя 1 см против холостой пробы (трансформирующий раствор).
При тех же условиях обрабатывают и измеряют стандартный раствор с концентрацией гемоглобинцианида – 61,23 мг/100мл, что соответствует количеству гемоглобина в крови, равному 15,4 г/100мл при разведении ее в 251 раз.
Концентрация гемоглобина в крови (Гб, г%) вычисляется по формуле:
Гб = (Еоп/Ест) С К 0,001, где
Еоп – экстинция опытной пробы;
Ест – экстинция стандартного раствора;
С – концентрация гемиглобинцианида в стандартном растворе, мг%;
К – кратность разведения крови;
0,001 – коэффециент для пересчета мг/100 в г/100мл.
Одновременно берут 0,02мл крови в пробирку, в которую предварительно наливают 4 мл 1% раствора хлорида натрия (кровь разводится в 200 раз). Содержимое пробирки перемешивают и оставляют стоять до момента счета.
Счетную камеру подготавливают следующим образом. Камеру с сеткой и покровное стекло насухо протирают. Затем покровное стекло прижимают к камере с такой силой, чтобы по краям его появились радужные полосы.
Перед заполнением счетной камеры разведенной кровью содержимое пробирки встряхивают. Затем стеклянной палочкой отбирают каплю разведенной крови и подносят ее к краю покровного стекла, следя за тем, чтобы она равномерно заполнила всю поверхность камеры с сеткой.
Эритроциты подсчитывают под малым увеличением (окуляр-7х, объектив-8х) в 5 больших (80 малых) квадратах сетки Горяева и вычисляют по формуле:
Эр=(А С 4000)/В, где
Эр - искомое число эритроцитов;
А – сумма клеток, подсчитанных в малых квадратах сетки;
В – количество сосчитанных малых квадратов (80);
С – разведение крови (в 200 раз)
4000 – множитель, приравнивающий объем малого квадрата (1/4000 мм3) к 1 мм3.
Для характеристики степени насыщаемости гемоглобином отдельного эритроцита определяют так называемый цветовой показатель (ЦП) по следующей формуле:
ЦП=(Гб 3)/Эр, где
Гб – концентрация гемоглобина (в г%);
Эр – первые две цифры (сотни тысяч) эритроцитов;
3 – постоянный коэффициент.
Параллельно оценивают количество ретикулоцитов в крови. Для этого на предварительно окрашенное краской (бриллиант-крезолблау) предметное стекло помещают каплю исследуемой крови и делают мазок обычным способом. Препарат помещают во влажную камеру на 8-10 минут, затем высушивают его и рассматривают под иммерсионной системой микроскопа (окуляр-15х, объектив – 90х).
Подсчитывают 1000 эритроцитов и определяют среди них процентное содержание ретикулоцитов (ретикулоциты отличаются от окрашенных в зеленый цвет эритроцитов наличием в цитоплазме синих зерен или сетки). Для облегчения подсчета эритроцитов из бумаги вырезают кружок, соответствующий диаметру окуляра микроскопа. В центре кружка проделывают небольшое четырехстороннее отверстие и вставляют в оптическую систему окуляра.
Работа №2. Изучение показателей красной крови при экспериментальной постгеморрагической анемии.
Материальное оснащение:
1.Животные: кролик с постгеморрагической анемией - 1 шт.
Остальное см. в работе №1.
Методика проведения опыта:
У кролика за 2 дня до занятия выпускают 40-50% крови, вследствие чего развивается острая постгеморрагическая анемия.
В день занятий в крови, взятой из краевой вены, определяют концентрацию гемоглобина, подсчитывают число эритроцитов и ретикулоцитов, вычисляют цветовой показатель (способы оценки указанных параметров крови см. в работе №1).
Результаты, полученные в работах 1 и 2, сопоставляют и анализируют. В заключении обсуждают механизмы развития постгеморрагической и гемолитической анемий.
Работа №3. Характеристика клеточного состава крови больных с различными видами анемий.
Материальное оснащение.
1.Мазки крови больных:
с постгеморрагической анемией - 2 шт.
с гемолитической анемией - 2 шт.
с В12 – дефицитной анемией - 2 шт.
2.Микроскоп - 1 шт.
3.Иммерсионное масло в масленке - 10 мл.
Ход анализа.
Под иммерсионной системой микроскопа (окуляр – 15х, объектив – 90х) изучают готовые мазки крови больных с указанными анемиями. Обращают внимание на патологические формы эритроцитов (анизо-, пойкилоцитоз; мегалобластический тип гемопоэза и др.). Обнаруженные в мазках крови измененные эритроциты зарисовывают в тетрадях. Делают выводы по проделанной работе.
Работа № 4. Оценка осмотической резистентности эритроцитов при постгеморрагической и гемолитической анемиях у кроликов.
Материальное оснащение:
1.Пробирки простые - 27 шт.
2.Штативы на 10 гнезд - 3 шт.
3.Пипетки на 1 мл. - 3 шт.
4.Пипетки на 2 мл. - 6 шт.
5.Игла от шприца для прокола вены - 3 шт.
6.Центрифуга лабораторная - 1 шт.
7.1% раствор хлорида натрия - 50 мл.
8.Дистиллированная вода - 50 мл.
9.Гепарин - 1 мл.
10. Животные: кролик с постгеморрагической
анемией - 1 шт.
кролик с гемолитической анемией - 1 шт.
кролик контрольный - 1 шт.
Методика проведения опыта.
Способы моделирования постгеморрагической и гемолитической анемий см. в работах 1 и 2.
В день занятия из краевой вены кролика после прокола иглой берут 2-3 мл крови с двумя каплями гепарина. Содержимое пробирки сразу же перемешивают для предотвращения образования сгустков крови и центрифугируют 10 минут при 2000 об/мин. Для анализа используют эритроцитарную массу.
Из 1 % раствора хлорида натрия готовят ряд разведений (табл.1).
Таблица 1
№ пробирок |
1 |
2 |
3 |
4 |
5 |
6 |
7 |
8 |
9 |
1% р-р NaCI, в мл. |
1,8 |
1,6 |
1,4 |
1,2 |
1,0 |
0,9 |
0,8 |
0,6 |
0,5 |
Дист. вода, в мл. |
0,2 |
0,4 |
0,6 |
0,8 |
1,0 |
1,1 |
1,2 |
1,4 |
1,5 |
Конц. р-ра NaCI,в% |
0,9 |
0,8 |
0,7 |
0,6 |
0,5 |
0,45 |
0,4 |
0,3 |
0,25 |
Взвесь эритроцитов |
П о д в е к а п л и | ||||||||
Результаты |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
Максимальная осмотическая резистентность эритроцитов определяется в той первой пробирке, в которой наблюдается полный гемолиз. Минимальная осмотическая резистентность эритроцитов регистрируется после центрифугирования пробирки ( при 1000 об/мин. в течение 5 минут), содержащей супернатант со следами гемолиза ( розовый оттенок надосадочной жидкости).
В норме:
минимальная осмотическая резистентность эритроцитов – 0,46- 0,48% раствор хлорида натрия;
максимальная осмотическая резистентность эритроцитов– 0,28 -0,32 % раствор хлорида натрия.
В данной работе исследуют кровь опытных и контрольного кроликов. Полученные результаты сопоставляют и анализируют.
В заключении обсуждают возможные механизмы нарушения физико-химических свойств эритроцитов при изученных анемиях.
Работа № 5.Характеристика скорости оседания эритроцитов при развитии острого воспалительного процесса.
Материальное оснащение.
1.Капилляр Панченкова - 5 шт.
2.Штатив Панченкова - 1 шт.
3.Лезвие для безопасной бритвы - 1 шт.
4.Часовое стекло - 1 шт.
5.Стеклянная палочка в стакане - 1 шт.
6.Стакан с ватой - 1 шт.
7.5% раствор трехзамещенного цитрата натрия - 10 мл.
8.Этиловый спирт (960) - 10 мл.
9.Животные: крысы с воспалительной реакцией - 2 шт.
крыса интактная - 1 шт.
Методика проведения опыта.
Эксперимент ставят на двух крысах. За двое суток до занятия одной из них вводят в брюшную полость 7- 8 мл стерильного мясопептонного бульона, а другой - подкожно 0,5 мл скипидара. В обоих случаях развивается регионарное асептическое воспаление.
На занятии у опытной и контрольной (интактной) крыс определяют скорость оседания эритроцитов. Для этого капилляр Панченкова промывают раствором цитрата натрия. Затем цитрат натрия набирают до метки “P” (¼ полного объема капилляра) и вдувают его на часовое стекло.
После надреза боковой поверхности корня хвоста животного в капилляр Панченкова набирают кровь до метки “K” (полный объем капилляра). Кровь переносят на часовое стекло и тщательно перемешивают его с цитратом стеклянной палочкой. В результате получается разведение крови в цитрате в соотношении 4:1. Затем цитратную кровь набирают в капилляр до метки “K” и ставят в штатив Панченкова. Через 1 час регистрируют СОЭ по высоте отстоявшегося слоя плазмы в мм (мм/ч).
Результаты опытов сопоставляют с контролем. В заключении обсуждают вероятные механизмы изменения СОЭ при воспалительной реакции.
Работа №6. Решение ситуационных задач по теме.