
- •3.5. Практична частина методи дослідження структурно-функціональних властивостей міоглобіну.
- •3.5.1. Виділення міоглобіну з скелетного м’яза.
- •Хід роботи:
- •Очистка міоглобіну від сірчанокислого амонію і низькомолекулярних сполук методом гель-хроматографії.
- •3.5.3. Визначення пероксидазної активності метміоглобіну .
- •Хід роботи.
- •Хід визначення:
- •3.5.4. Автоокислення оксиміоглобіну.
- •Хід роботи:
- •Дослідження гетерогенності міоглобіну.
- •Хід роботи:
- •3.5.2. Дослідження гетерогенності міоглобіну.Методом диск-електрофорезу в поліакриамідному гелі
- •3. Диск-електрофорез.
- •Гемоглобін
- •3.5.5. Виділення гемоглобіну.
- •3.5.6. Визначення концентрації гемоглобіну
- •3.5.7. Визначення пероксидазної активності метгемоглобіну.
- •3.5.7. Автоокислення оксигемоглобіну.
- •Хід роботи:
- •Визначення спорідненості гемоглобну до кисню за методикою Іванова
- •Хроматографія білків на км-целюльозі.
- •Хід роботи:
- •Диск-електрофорез
- •Хід роботи:
- •3.2. Практична частина
- •3.2.1. Розділення білкової суміші методом гель-фільтрації
- •Дослідження гетерогенності міоглобіну.
- •3. Диск-електрофорез.
- •Хід роботи:
- •Фракціонування на іоннообмінниках.
- •Хід роботи:
- •Диск-електрофорез.
- •Хід роботи:
- •3.2.2. Фракціонування білків
- •3.2.4. Електрофорез білків сироватки крові на папері
- •3.2.5. Електрофорез білків в агаровому гелі
- •3.3. Принципи колонкової хроматографії
- •Оптимізація способу визначення карбоксигемоглобіну в крові людей
Хроматографія білків на км-целюльозі.
Гемоглобін окремих видів тварин складається з близьких по структурі молекул і може бути розділений на фракції. Одним з методів вивчення фракціонного складу гемоглобіну є іоннообомінна хроматографія.
Обладнання: колонка з КМ-целюльозою фірми “Reanal”, спектрофотометр СФ-4А, вага.
Реактиви: 1. 0.5 М NaOH.
0.5 М НCl.
Хід роботи:
Багатокомпонентність гемоглобіну вивчали методом іоннообомінної хроматографії на КМ-целюльозі фірми “Reanal” з номінальною ємкістю 0.7 0.1 екв./г за методикою Петерсона і Собера. Перед заповненням колонок целюльзу 15 хвилин суспендували 5-ти кратною кількістю 0.5 М NaOH, відмивали водою до нейтрального рН. Перемішуючи на протязі 15 хвилин целюльозу 5-ти кратною кількістю 0.5 М НCl, переводили її в Н+-форму. Після цього КМ-целюльозу вівмивали бідистильованою водою до нейтральної реакції, суспендували в 0.01 н натрій-фосфатному буфері рН 6.8 (стартовому) та заповнювали колонки розміром 2.850 см. Висота гелю дорівнює 40 см. На врівноважену стартовим буфером колонку наносили 400 мг розчину гемоглобіну завчасно діалізовану проти стартового буферу. Елюцію проводили 0.01 н натрій-фосфатним буфером в лінійному градієнті рН 6.8-7.6 на автоматичному апараті для хроматографії. Швидкість елюції 1 мл/хв., об’єм проб 5 мл. Екстинцію вимірювали на спектрофотометрі при 540 нм. За результатами спектрофотометричних вимірів будували криву елюції. Кількісну оцінку окремих фракцій гемоглобіну проводили методом зважування площі ділянок пиків, які окреслені гаусовської кривої.
Диск-електрофорез
Дослідження гетерогенності взірців проводили методом диск-електофорезу в поліакриламідному гелі, описану Маурером. Цей метод являє собою об’єднаня методів розділення макромолекул по молекулярній масі і заряду та має високу розділяючу здатність.
З хімічною точки зору, поліакриламід який використовуються для електофорезу є сополімером двох мономерів: акриламіду і метиленбісакриламіду. Структура полімеру описується наступною формулою:
-СН2-СН(СОNН)СН2-СН(СО-СН2)-
-СН2-СН(СОNН)СН2-СН(СО-СН2)-
Гідрофільні властивості цього гелю викликані наявністю амідних груп, які повторюються через рівні інтервали.
Процес полімеризації акриламіду і метиленбісакриламіду починається в присутності тетраметилметилендіаміна (ТЕМЕД) та каталізатора персульфат амонію ((NH4)2SO4).
Змінюючи концентрацію акриламіду і метиленбісакриламіду можна отримати гель з бажаючими розмірами пор.
При виборі концентрації акриламіду для отримання гелю враховують орієнтовану молекулярну масу фракціонованих речовин і форму їх молекул. Ми використовували гель 7.5%.
Обладнання: скляні трубочки, прилад для електрофорезу, джерело живлення.
Реактиви: Нами була вибрана наступна система для проведення диск-електрофореза:
1. Для приготування гелів:
Реактив А: 1 н НCl - 12 мл
ТРИС - 9.16 г
ТЕМЕД - 0.06 мл
Вода (б.дист.) - 25 мл
Реактив В: 1 н НCl - 12 мл
ТРИС - 1.495 г
ТЕМЕД - 0.115 мл
Вода (б/дист.) - 25 мл
Реактив С: метиленбісакриламід - 0.184 г
акриламід - 7 г
Вода (б. дист.) - 25 мл
Реактив D: метиленбісакриламід - 0.625 г
акриламід - 2.5 г
Вода (б. дист.) - 25 мл
Примітка: Акриламід та метиленбісакриламід розчиняти окремо (загальний об’єм зберігається).
Реактив Е: 0.004% рибофлавін (1 мг висушують на протязі доби під H2SO4 і розчиняють 25 мл бідистиляту).
Реактив F: 40% cахароза (40 г сахарози до 100 мл води б/д).
Персульфат амонію: 0.14% розчин (14 мг персульфату в 10 мл води б/д).
(Готують безпосередньо перед приготуванням гелю.)
2. Тріс-гліциновий буфер 0.05 М рН 8.3:
Тріс – 6 г + Гліцин – 28,8 г. + Вода бідист. – до 1 л.
Пред заповненням електрофоретичних камер буфер розвести в 10 разів.
3. Фіксуються: 5%-ним розчином ТХО або 7%-ним розчиним оцтової кислоти.
4. Фарбуються: 0,1% розчином Кумассі G-250 або амідочорним B-10.