По этой классификации инфекционные болезни подразделяются на 5 групп:

• алиментарные (главные факторы передачи возбудителя инфекции - инфицированные корма, вода, почва и навоз);

• аэрогенные (воздушно-капельные инфекции);

• трансмиссивные (возбудитель инфекции передается живыми переносчиками - насекомыми, клещами);

• инфекции с заражением животных непосредственно через внешние покровы без участия переносчиков;

• инфекции с невыяатенными путями заражения (неклассифицированная группа).

Указанные выше группы болезней дополнительно подразделяют на подгруппы.

4. По локализации болезни (В.Б. Башенин, Л.В. Громашевский и др.). Классификация основана на локализации возбудителя инфекции в организме и на механизме его передачи, в соответствии с этим болезни разделяют на 4 группы:

• кишечные инфекции (локализация возбудителя в основном в кишечнике);

• инфекции дыхательных путей (локализация возбудителя в слизистых оболочках дыхательной системы - альвеолах, бронхах, зеве и др.);

• кровяные инфекции (локализация возбудителя в кровеносной и лимфатической системах);

• инфекции наружных покровов (включают болезни кожи, ее придатков, наружных слизистых оболочек, а также раневые инфекции).

5. По виду и возрасту животных. По данной классификации, положенной в основу программы курса эпизоотологии для высших и средних специальных учебных заведений России по специальности "Ветеринария", все инфекционные болезни животных подразделяют на 10 групп:

• болезни, общие для всех или нескольких видов домашних животных;

• болезни молодняка;

• болезни жвачных;

• болезни свиней;

• болезни лошадей;

• болезни птиц;

• болезни кроликов;

• болезни плотоядных;

• болезни пчел;

• болезни прудовых рыб

Приведенные выше классификации инфекционных болезней позволяют дополнительно выделить и учитывать специфические особенности конкретных болезней, а также источники возбудителей инфекций и пути их проникновения в организм животных; установить основные участки локализации болезни; определить вид и группы животных, наиболее подверженных определенным заболеваниям. Все это необходимо учитывать при разработке и применении методов и средств диагностики, терапии и профилактики при инфекционных болезнях собак и кошек.

Например, генотипические и фенотипические признаки патогенных микроорганизмов определяют степень их устойчивости к воздействию различных факторов внешней среды.

По устойчивости к химическим дезинфицирующим средствам возбудителей основных инфекционных болезней животных разделяют на четыре группы (С.П. Убираев, 1999 г.):

• малоустойчивые (возбудители болезни Ауески, лептоспироза, сальмонеллеза и др.);

• устойчивые (возбудители бешенства, вирусного энтерита, инфекционного гепатита плотоядных, микроспории, трихофитии, чумы плотоядных и др.);

• высокоустойчивые (возбудители туберкулеза животных, паратуберкулезного энтерита крупного рогатого скота и др.);

• особо устойчивые (возбудители сибирской язвы, брадзота, эмкара и других споровых инфекций).

36.

1. Приготовление раствора кальцинированной соды. Сода кальцинированная техническая (углекислый натрий), выпускается в виде мелкокристаллического белого порошка с содержанием углекислого натрия не менее 91 %, упаковывается в 4-5-6-слойные бумажные мешки весом нетто не более 50 кг.  Перед приготовлением рабочего раствора в имеющейся кальцинированной соде определяют общую щелочность (в пересчете на Na₂CO₃). 1 г соды, предварительно высушенной до постоянной массы при 105-110°С, взвешивают с точностью до 0,0002, помещают в коническую колбу вместимостью 300 мл, растворяют в 50 мл воды, добавляют 1 капли раствора метилового оранжевого и титруют 0,5 н раствором соляной кислоты до появления розово-оранжевой окраски. Содержание общей щелочности в пересчете на Na₂CO₃ (X) в процентах вычисляют по формуле:                                         X= ( У х 0.0265 х 100)/ G  где: У - объем точно 0,5 н раствора соляной кислоты, израсходованной на титрование, в мл;       0,0265 - количество углекислого натрия, соответствующее 1 мл точно 0,5 н раствора соляной кислоты, в г;       G - навеска соды в г.  Расчет необходимого количества кальцинированной соды для приготовления рабочего раствора производят по формуле. Например, в тлеющейся кальцинированной соде содержится 95 % Nа₂СО₃, а нужно приготовить 100 л 2 %-ного раствора. Х = 2 х 100 : 95 = 2,105 кг. Эти означает, что для получения 100 л 2 %-ного раствора кальцинированной соды нужно взять 2,1 кг имеющейся кальцинированной соды и 97,9 л теплой воды и при помешивании растворить соду в воде.  КОНТРОЛЬ КОНЦЕНТРАЦИИ РАСТВОРОВ КАЛЬЦИНИРОВАННОЙ СОДЫ. В коническую или круглую плоскодонную колбу емкостью 100 мл пипеткой наливают10 мл испытуемого раствора, добавляют 3 капли метилоранжа и титруют 0,1 н раствором серной кислоты до перехода желтой окраски в розовую.  Расчет содержания щелочных компонентов в пересчете на кальцинированную соду (в %) производят по формуле:                   А = Б х 0,053 х К,  где: А - содержание суммы щелочных компонентов в % в пересчете на кальцинированную соду;       Б - количество 0,1 н серной кислоты, пошедшее на титрование, мл;       0,053 - постоянный коэффициент суммы щелочных компонентов;        К - поправка к титру для пересчета на 0,1 н кислоту, если она приготовлена не из фиксанала. При приготовлении из фиксанала К = 1.

 Приготовление осветленных растворов хлорной извести   Раствор хлорной извести для дезинфекции готовят одним из следующих способов;   а) приготавливают концентрированный 10 %-ный раствор, содержащий 2,5-3,0 % активного хлора, дают ему отстояться в течение суток, прозрачный раствор сливают, определяют содержание активного хлора в нем и, в зависимости от его содержания, готовят рабочие растворы требуемой концентрации. Содержание активного хлора в концентрированном растворе хлорной извести определяют по его плотности денсиметром со шкалой 1,00-1,10 или титрованием;   б) по второму способу вначале определяют содержание активного хлора в сухой хлорной извести, а затем, пользуясь прилагаемой ниже таблицей, рассчитывают необходимое количество хлорной извести для приготовления требуемого количества осветленного раствора нужной концентрации. Для приготовления осветленного раствора от вешенное количество хлорной извести вносят в соответствующую ем кость, заливают водой, перемешивают и после отстаивания в течение суток полученный над осадком верхний прозрачный слой сливают и используют для дезинфекции.

 Приготовление растворов препарата "каспос". Каустифицированная содо-поташная смесь (каспос) по внешнему виду представляет желтоватую жидкость, содержащую 40-42 % едких щелочей и до 2 % других солей. При отстаивании выпадает небольшой осадок. Препарат хорошо растворяется в воде (без подогрева).   Каспос применяют для мойки и дезинфекции в тех же случаях, когда для этого рекомендовано применение едкого натра, но концентрация раствора препарата каспос во всех случаях должна быть в полтора раза больше, чем концентрация раствора едкого натра.

Бактериологический контроль

Он включает различные методики контроля качества обеззараживания предметов внешней среды и прежде всего имеющих важное эпидемиологическое значение с точки зрения их возможного влияния на пути передачи инфекции.

Лабораторный контроль наиболее доступен по поводу инфекций кишечной группы. Существующие методы бактериологического контроля при них легко выполнимы и дают возможность получить результаты исследования в практически приемлемые сроки (через 48—72 часа).

При сибирской язве и туберкулезе требуются специальные наблюдения над лабораторными животными, что делает бактериологический контроль в этих случаях очень сложным и длительным. Принятый в последнее время лабораторный контроль смывов, взятых в очагах туберкулеза, не требующий заражения животных, может выполняться культуральным методом.

Показателем эффективности проведенной дезинфекции при кишечных инфекциях является отсутствие роста кишечной палочки в посевах, сделанных из взятых на месте контроля смывов. Устойчивость кишечной палочки к действию дезинфицирующих растворов примерно такая же, как и устойчивость возбудителей большинства кишечных инфекций. Это дает основание пользоваться методом обнаружения кишечной палочки при многих кишечных инфекциях, включая инфекционный гепатит, полиомиелит и др. 2.

Основой контроля качества дезинфекции предметов внешней среды является метод взятия проб (смывов) с поверхностей, применимый при всех видах дезинфекции. Важно отметить, что обнаружение кишечной палочки при контроле текущей дезинфекции является достаточно объективным показателем допущенного при уходе за больным фекального загрязнения предметов внешней среды и, следовательно, нарушения установленных правил санитарно-гигиенического режима или правил обеззараживания выделений и предметов, ими загрязненных. Обнаружение кишечной палочки при контроле профилактической дезинфекции указывает на возможную опасность обсеменения предметов внешней среды возбудителями инфекций кишечной группы.

Смывы берут с помощью трафарета (10X10 см) с 2—3 смежных участков контролируемого объекта только после окончания дезинфекции (не ранее чем через 45 минут и не позднее 2 часов). Практика убедительно показывает, что такой срок может быть сокращен до 15—30 минут с момента окончания дезинфекции. Это даст возможность отказаться от ранее принятого метода взятия проб в очаге в присутствии исполнителей дезинфекции, заменив его так называемым внезапным контролем.

При отборе проб с поверхностей контролировать на зараженность кишечной палочкой следует предметы, подвергшиеся обеззараживанию и имеющие преимущественное значение в механизме передачи кишечных инфекций, а именно посуду для выделений, ручку слива, поверхность унитаза, дверь, ночной горшок, обеденный етол, клеенку, матрац, одеяло больного, пол, подоконники, предметы обстановки, стены у постели больного, столовую и чайную посуду (стаканы, ложки, вилки, ножи, полотенца, носовые платки), при капельных инфекциях, кроме того, игрушки. Всего такие пробы следует взять в среднем не меньше чем с 10 предметов общей площадью 200—300 см2.

При контроле качества текущей дезинфекции число контролируемых предметов следует увеличить до 15—20 и включить, кроме указанного, взятие смывов с рук, ухаживающих лиц и их платья. Контролю подлежат преимущественно чистые предметы и вещи, находящиеся в употреблении больного.

Для контроля результатов обеззараживания белья разработан метод закладывания в него (на разной глубине сосуда с дезинфицирующим раствором — вверху, в середине и внизу) искусственно зараженных тестов до начала обеззараживания с исследованием их по окончании обеззараживания на наличие или отсутствие кишечной палочки (такие пробы приходится брать в присутствии исполнителей дезинфекции, а также при контроле в прачечных, когда требуется провести обеззараживание белья до стирки).

В зависимости от результатов исследования доставленных в лабораторию проб (не позднее чем через час после взятия их) дается оценка удовлетворительно — при отсутствии роста кишечной палочки во всех исследованных пробах и неудовлетворительно — при обнаружении кишечной палочки хотя бы в одной из них.

46.