
- •Экзаменационная программа (лечебный факультет) асептика
- •Внутрибольничные инфекции: источники инфицирования больного, источники эндо- и экзогенной инфекции, пути передачи инфекции от больного медперсоналу.
- •Методы профилактики воздушно – пылевой инфекции.
- •3. Методы профилактики воздушно-капельной инфекции.
- •6. Профилактика заражения вирусом иммунодефицита человека и парентеральных гепатитов в, с, д.
- •7. Определение понятий асептика, обеззараживание, очистка, дезинфекция, стерилизация.
- •8. Какие элементы включает асептика, что подлежит стерилизации и дезинфекции?
- •9. Методы асептики.
- •10. Предстерилизационная очистка, ее этапы, контроль качества предстерилизационной очистки.
- •11. Стерилизация паром под давлением, строение автоклава, стерилизуемые объекты, фазы стерилизационного цикла, режимы стерилизации.
- •12. Укладка медицинских изделий и материалов для автоклавирования, виды и правила укладок материала в биксы.
- •13. Правила пользования стерильным биксом и сроки хранения в нем стерильного материала.
- •14. Техника безопасности при автоклавировании.
- •15. Стерилизация и дезинфекция горячим воздухом, устройство сухожарового шкафа, стерилизуемые в нем изделия, режимы стерилизации и дезинфекции.
- •16. Контроль стерильности автоклавируемых изделий и стерилизуемых изделий горячим воздухом (технический, бактериологический, термический, использование индикаторов стерильности).
- •17. Холодные методы стерилизации (лучевая, уфо, ультразвук, газами и парами химических веществ)
- •18. Стерилизация и дезинфекция растворами химических веществ, меры предосторожности при работе с дезинфектантами, первая помощь при попадании их на кожу, в дыхательные пути, пищеварительный тракт.
- •19. Медицинская этика и деонтология при уходе за больными.
- •20. Организация хирургического отделения, его планировка, основные помещения и их устройство.
- •21. Операционный блок, его устройство и оборудование.
- •22. Виды уборки операционной и перевязочной, правила поведения медперсонала и студентов в операционной.
- •Переливание крови и кровезаменителей
- •25. Учение о изогемагглютинации и группы крови, методики определения групп крови.
- •26. Выбор крови, совместимой в отношении групп крови аво и резус-антигена d.
- •Система Резус (Rh-Hr).
- •27. Определение группы крови стандартными изогемагглютинирующими сыворотками.
- •28. Определение группы крови по цоликлонам.
- •29. Резус – фактор и способы его определения.
- •36. Компоненты крови, показания к их применению.
- •37. Препараты крови, показания к их применению
- •38. Посттрансфузионные реакции при переливании крови, их профилактика и лечение.
- •39. Посттрансфузионные осложнения при переливании крови, профилактика и лечение.
- •40. Реинфузия крови, переливание консервированной аутокрови.
- •41. Медицинские альтернативы переливанию крови.
- •42. Донорство, противопоказания к донорству, Техника забора крови от донора, организация доставки крови от станции переливания крови до лечебного учреждения.
- •43. Хранение крови, изменения в крови, возникающие при длительных сроках ее хранения
- •44. Способы консервации крови, консерванты и стабилизаторы крови.
- •45. Кровезамещающие жидкости, классификация, осложнения при их переливании, профилактика и лечение.
- •46. Кровезаменители для парентерального питания.
- •Кровотечения
- •52. Причины ранних и поздних вторичных кровотечений.
- •53. Реакция организма на кровопотерю, централизация кровообращения.
- •54. Способы определения объема кровопотери (гематокрит, шоковый индекс Альговера, постгеморрагический шок).
- •55. Признаки острой анемии.
- •56. Компенсация кровопотери, мероприятия первого и второго этапов.
- •Местное обезболивание
- •67. Общие осложнения местной анестезии, их профилактика и лечение.
- •82. Виды наркоза (внутривенный, ингаляционный). Показания к внутривенному наркозу, его недостатки и преимущества.
- •83. Ингаляционный наркоз (масочный, эндотрахеальный), механизм действия наркотических веществ (теории наркоза), медикаментозные препараты для ингаляционного наркоза.Учебник
- •84. Узлы наркозного аппарата.Учебник.
- •85. Дыхательные контуры при даче ингаляционного наркоза.Учбник.
- •86. Этапы наркоза (введение в наркоз, поддержание, выведение из наркоза).
- •87. Подготовка больного к наркозу, премедикация.
- •88. Осложнения наркоза на этапах его проведения.
- •Реанимация (учебник)
- •Операция
- •98. Основные показания (абсолютные, настойчивые, относительные) и противопоказания к проведению операций (степень операционного риска).
- •99. Медицинская документация предоперационного периода (предоперационный эпикриз, степень операционного и анестезиологического риска, согласие больного на операцию).
- •Степень операционного и анестезиологического риска
- •100. Основные задачи предоперационного периода, обследование и подготовка больного к операции.
- •101. Основные задачи послеоперационного периода, профилактика послеоперационных осложнений.
- •102. Современный шовный материал (абсорбирующийся и неабсорбирующийся), классификация по строению нити.
- •Онкология
- •103. Отличительные признаки доброкачественных и злокачественных опухолей.
- •104. Ранняя онкопатология (предболезнь, предрак, карцинома in situ, ранний инвазивный рак).
- •105. Предраковые заболевания (факультативный и облигатный предрак).
- •106. Методы диагностики опухолей, рентгенологические и эндоскопические признаки злокачественных опухолей.
- •107. Морфологические методы диагностики опухолей.
- •108. Оценка распространенности опухолевого процесса (классификация опухолей по системе tnm, отечественная классификация стадии онкопроцесса).
- •109. Типы операций при злокачественных опухолях.
- •110. Понятие о абластики и антибластики при оперативном лечении злокачественных опухолей.
- •111. Показания и противопоказания для санаторно-курортного лечения больных, оперированных по поводу злокачественных опухолей.
- •112. Понятие операбильности и резектабильности у больных злокачественными опухолями, хоспис, эйтаназия.
- •Десмургия
- •Транспортная иммобилизация
- •Химические ожоги пищевода и желудка
- •127. Клиника и диагностика рубцовых сужений пищевода (дисфагия, рентгенологическое и эндоскопическое исследование пищевода).
- •128. Лечение рубцовых сужений пищевода (бужирование, стентирование, эзофагопластика).
- •128. Клиника и диагностика перфораций пищевода при бужировании, врачебная тактика.
- •Костно - суставной туберкулез
- •129. Туберкулез костей и суставов, патогенез, патологическая анатомия, фазы развития костно-суставного туберкулеза.
- •130. Принципы диагностики и лечения костно-суставного туберкулеза.
- •131. Туберкулез позвоночника, клиника, диагностика, лечение.
- •132. Туберкулезный коксит, клиника, диагностика, лечение.
- •133. Туберкулезный гонит, клиника, диагностика, лечение.
- •134. Актиномикоз, клиника, диагностика, лечение.
- •Гнойная хирургия раны, раневая инфекция.
- •135. Классификация ран (по происхождению, от характера повреждения тканей, по отношению раневого канала к полостям тела, степени инфицированности).
- •136. Классификация ран по степени инфицированности, их различия (асептические, свежеинфицированные, гнойные).
- •137. Фазы раневого процесса (воспаления, регенерации, образования и реорганизации рубца), их характеристика.
- •138. Классические типы заживления ран (заживление первичным натяжением, вторичным натяжением, под струпом). Особенности заживления ран вторичным натяжением.
- •139. Характеристика «здоровых» и «патологических грануляций».
- •140. Оказание первой медицинской помощи пострадавшему при ранении.
- •141. Основные виды первичной хирургической обработки раны (ранняя, отсроченная, поздняя), их отличие.
- •30% Не подлежат пхо
- •143. Общее лечение гнойных ран (антибиотикотерапия, дезинтоксикационная, иммунокорригирующая терапия).
- •Антисептика.
- •144. Антисептика, определение, виды современной антисептики (механическая, физическая, химическая, биологическая).
- •145. Механическая антисептика, хирургическая обработка ран (первичная и вторичная, радикальная и частичная), туалет раны.
- •146. Физические методы антисептики (уфо, воздействие ультразвука, лучей лазера), механизмы воздействия их на микрофлору.
- •147. Химические антисептики, классификация, механизм действия.
- •148. Показания и противопоказания для антибиотикотерапии, основы рациональной антибиотикотерапии.
- •149. Предоперационная антибиотикопрофилактика, показания, способы проведения.
- •150. Осложнения при применении антибиотиков, их профилактика и лечение.
- •151. Этапы проведения туалета раны.
- •152. Вульнеросорбция, применение протеолитических ферментов.
- •153. Способы дренирования ран, показания к установке и удалению дренажей.
- •Нагноительные заболевания мягких тканей
- •Панариций
- •Остеомиелит
- •Общие понятия о хирургической инфекции
- •Анаэробная гнилостная инфекция. Столбняк. Сепсис
- •Ожоги и отморожения
15. Стерилизация и дезинфекция горячим воздухом, устройство сухожарового шкафа, стерилизуемые в нем изделия, режимы стерилизации и дезинфекции.
СТЕРИЛИЗАЦИЯ И ДЕЗИНФЕКЦИЯ ГОРЯЧИМ ВОЗДУХОМ
Стерилизация горячим воздухом производится в воздушных стерилизаторах /сухожаровых шкафах/, в которых создается температура до 160-200 гр.С.. Они состоят из стерилизационной камеры с герметично закрывающейся дверцой, снабжены термо-метрами и реле времени, элекронагревателем.
Проникновение тепла к стерилизуемым объектам осуществ-ляется преимущественно за счет конвекции /перемещения/ воздуха. Более нагретый воздух поднимается вверх и, соприкасаясь с холодными предметами, отдает им свое тепло. Охлажденный воздух перемещается вниз, где вновь нагревается и поднимается вверх. Такой механизм действует до тех пор, пока будет существовать разница температур. Наличие в современных моделях стерилизаторов специальных вентилляторов, существенно сокращает время перемещения воздуха.
Используются два режима воздушной стерилизации:
- 180 ± 10 гр.С при экспозиции 60 ± 5 мин;
- 160 ± 10 гр.С при экспозиции 150 мин..
Дезинфекция проводится при температуре 120 ± 4 гр.С в течение 45 ± 5 мин..
Горячим воздухом стерилизуют термостойкие материалы, не изменяющие своих свойств при указанных температурах: изделия из металла /в том числе и из коррозионнонестойкого/, стекла, тонкого фарфора /толстый фарфор плохо прогревается/, термостойкой силиконовой резины, шприцы с отметкой 200 гр.С.
Горячим воздухом не стерилизуют:
- ткани, перевязочный материал и операционное белье, т.к. они могут обуглиться и воспламениться;
- изделия из полиэтилена и других пластиков;
- резиновые трубки и катетеры /в том числе мочеточниковые/;
- бумажные и пергаментные изделия /обугливание при 170 гр.С/;
- воду и водные растворы, которые закипают и тем нарушают сухость камеры.
Изделия стерилизуют только сухими, или без упаковки в открытых емкостях, или в упаковке из влагопрочной непропитанной бумаги, или в открытых металлических контейнерах, крышки которых ставят рядом и после стерилизации закрывают ими кон-тейнер с инструментами.
16. Контроль стерильности автоклавируемых изделий и стерилизуемых изделий горячим воздухом (технический, бактериологический, термический, использование индикаторов стерильности).
Методы контроля стерильности - технический, бактериоло-гический, термический.
Технический - периодическая проверка адекватности показателей манометров и термометров в автоклаве, термометров в сухожаровом шкафу, а так же размещение термометров в различных участках стерилизационной камеры и в стерилизационных коробках или пакетах.
Бактериологический контроль стерильности
Бактериологический контроль стерильности инструментов, операционного белья, перевязочного материала бактериологические лаборатории СЭС проводят не реже 2 раз в год, баклаборатории ЛПУ- 1 раз в месяц /Приказ МЗ СССР N 720 от 31.07.78 г. Приложение 2. Приказ МЗ СССР N 254 от 03.09.91 г/.
Технология взятия посевов на стерильность
хирургического инструментария
Хирургический инструментарий с помощью стерильного пин-цета извлекают из бикса или мягкой упаковки и целиком погружают в пробирки с питательными средами. Если инструменты крупных размеров /иглодержатели, ранорасширители и т.д./, производят смыв с поверхности инструмента стерильной салфеткой или стерильной палочкой с ватным тампоном, смоченным в стерильном физиологическом растворе и помещают в стерильную пробирку с питательной средой. В отдельные пробирки помещают иглы.
Посев на стерильность хирургического белья
С помощью стерильных пинцета и ножниц /предварительно проведя через пламя горелки/ отрезают небольшие кусочки ткани /завязка, внутренние швы/ и погружают в пробирки с питательными средами, по возможности не касаясь стенок пробирок.
Посев на стерильность шовного материала
Подготовленный к работе шелк /ласан/, кетгут перекладывают в стерильные баночки, предварительно разрезав на мелкие кусочки длиной 1-2 см. В лаборатории кетгут перед посевом подвергают специальной обработке для нейтрализации и отмывания нейтрализующего раствора.
Учет результатов
Материал СТЕРИЛЕН при отсутствии роста во всех посевах.
Материал НЕ СТЕРИЛЕН при росте микрофлоры.
Метод бактериологического контроля стерильности изделий и материалов наиболее точный, но ретроспективный, т.к. результат приходит поздно.
Термические методы контроля стерильности
Термические методы основаны на свойстве ряда веществ менять цвет или плавиться при воздействии определенной температуры.
Так плавление серы происходит при 111-120 гр.С, резорцина - 110-119 гр.С, бензойной кислоты - 121 гр.С, мочевины - 132 гр.С, антипирина - 113 гр.С.. Перед стерилизацией флакончики с этими порошкообразными веществами закладываются в центр бикса.
Использование индикаторов стерильности
ИС-120, ИС-132, ИС- 160, ИС- 180
/научно-производственная фирма «Винар»/
Индикатор представляет собой полоску бумаги, на одной стороне которой нанесен индикаторный слой, изменяющий свой цвет до цвета эталона при соблюдении режима стерилизации. Эталон - полоска бумаги, одна сторона которой окрашена в цвет, с которым должен совпадать цвет индикатора при соблюдении режима стерилизации.
Индикаторы изготавливаются в соответствии с ТУ 80-153-01* /согласовано с МЗ РФ 10.06.93 г/.
Каждый из индикаторов применяется лишь для определенного режима стерилизации, как паром, так и в сухожаровом шкафу.
Стерилизация считается эффективной, если цвет всех инди-каторов, заложенных в камеру стерилизатора, соответствует или чуть темнее цвета эталона.
Если цвет индикатора, светлее даже в одной какой-либо точке стерилизатора, вся партия изделий считается нестерильной и использование ее запрещается.
Контролю подлежат все паровые и воздушные стерилизаторы. Контролируется каждый цикл стерилизации. Количество полосок индикатора, которые закладываются для контроля одного цикла стерилизации, зависит от размеров камеры стерилизатора.
За зонами контроля закрепляются номера. В каждую из зон помещается не менее одной контрольной упаковки с индикаторной полоской. Контрольной упаковкой могут быть пакеты, свертки, бик-сы с инструментами и материалами. Наиболее удобны индикатор-ные полоски с адгезивным слоем, что позволяет наклеивать их на поверхность упаковок.
После окончания цикла стерилизации индикаторы из конт-рольных упавок извлекаются и сравниваются с эталоном. Отрабо-танные индикаторы подклеиваются в журнал учета стерилизации, в специально выделенные для этого колонки.
Документирование индикаторов позволяет накапливать ин-формацию, которая необходима для контролирующих органов и ретроспективного анализа при неудовлетворительном бактерио-логическом контроле.
Индикаторы, заложенные в упаковки с инструментами и материалами, проверяет перед их использованием медицинский персонал.
КИПЯЧЕНИЕ
Кипячение используется для дезинфекции посуды, резины, инструментов стойких к коррозии. Режущие инструменты не ки-пятятся, т.к. после этого они тупятся. Металлические инструменты кипятят в дистиллированной воде с добавлением двууглекислого натрия /2% растворе соды/ в течение 30 мин. с момента закипания. Добавление в воду бикарбоната натрия декальцинирует воду, повышает ее точку кипения на 1-2 гр.С, растворяет белки и жиры на инструментах, разрушает оболочки бактерий, что увеличивает бактерицидный эффект.
Резину, шприцы, стекло, кипятят в дистиллированной воде в течение 45 мин..
Кипячение может проводиться в любой металлической посуде с крышкой или в специальном приборе /кипятильнике/.
ОБЖИГАНИЕ
Обжигают лишь металлические инструменты. Обжигание проводят в пламени горящего спирта /600 гр.С/. При этом сгорают все микроорганизмы и их споры, находящиеся на поверхности инструмента. Под пламенем сохраняется низкая температура, при которой бактерии не погибают. Метод допустим, когда инструмент необходим при состояниях, угрожающих жизни больного.
Обжигание проводят в металлических емкостях с бортиками, предотвращающими растекание спирта /лоток, внутренняя повер-хности крышки кипятильника, металлический тазик/. Металличес-кую емкость ставят на подставку, наливают 15-20 мл спирта, укла-дывают инструменты и поджигают спирт. Инструменты используют после того, как они остынут. Немедленное их охлаждение про-водится под струей стерильного физраствора или фурацилина.
Метод пожаро - и взрывоопасен /наличие кислорода или паров наркотических веществ в помещении/.