Добавил:
Upload Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:
Иммунодиагностика.docx
Скачиваний:
72
Добавлен:
20.03.2016
Размер:
82.36 Кб
Скачать

2. Обнаружение вируса.

Вируссодержащий материал вносят в 1-е лунки двух рядов микропланшета по 0,025 мл. Во все остальные лунки этих рядов, включая и первые лунки, добавляют по 0,025 мл 0,85 % раствора хлорида натрия. Делают раститровку вируса, как описано выше. Далее во все лунки первого ряда вносят по 0,025 мл известной иммунной сыворотки против предполагаемого вируса, в разведении 1:20. Во второй ряд (контроль) вносят по 0,025 мл растворителя. Смесь оставляют на 30 мин при 37о С, затем во все лунки двух рядов добавляют по 0,025 мл 1 % взвеси эритроцитов курицы. Учет реакции ведут через 60 мин экспозиции при 37о С.

В контрольном ряду вирусная гемагглютинация будет наблюдаться, например, до 8-ой лунки. В опыте могут быть два варианта. Если гемагглютинирующий вирус не соответствует по специфичности сыворотке, то в этом случае титр гемагглютинации в первом ряду лунок будет соответствовать второму ряду. Если вирус гомологичен известной иммунной сыворотке, то произойдет из взаимодействие, следовательно, взаимная нейтрализация, Поскольку ГВ в этих лунках не будет, это проявится укорочением числа лунок с реакцией гемагглютинации в первом ряду, по сравнению с лунками второго ряда. Например, в 1 ряду гемагглютинация составит 5 лунок.

Реакция применяется в вирусологических исследованиях для поиска антител или вируса в соответствующем материале.

Метод гашения действия.

Метод основан на нейтрализации вируса и его болезнетворного действия.

РН - реакция нейтрализации.

Для проведения метода требуются

1. Вирус с выраженной инфекционной активностью.

2. Антисыворотка известная или исследуемая.

3. Биологический объект (лабораторное животное, культуры тканей, эмбрионы).

  1. Растворители (физиологический раствор при работе с животными, среда 199, Игла, Эрла - для работы с культурой клеток).

Вируссодержащий материал (ВСМ) предварительно титруют, определяя конечное разведение, которое может вызвать повреждение тканей или инфицирование животных или эмбрионов.

Готовят 10-кратные разведения ВСМ в пробирках, используя для каждого разведения отдельную пипетку. Для этого, в пробирки вносят 1 мл растворителя и в первую пробирку 0,1 мл ВСМ. Из первой пробирки переносят во вторую 0,1 мл вируссодержащей жидкости, перемешивают, переносят 0,1 мл в третью и т.д. Каждое разведение вируса из пробирки вносят в несколько лунок, содержащих пласт клеток, по 0,2 мл. Наблюдают за культурой клеток 2-3 суток. Титр вируса выражают в 50 % дозе - ТКИД50, это гибель 50 % клеток.

Постановка опыта. В пробирках делают последовательные разведения испытуемых сывороток в объеме 0,5 мл. Во все лунки вносят по 100 ТКИД ВСМ, выдерживают смесь 1-2 ч при комнатной температуре, затем каждое разведение вносят в пласт клеток в лунках. Если вирус был нейтрализован антителами, то размножения в культуре не последует - это проявится отсутствием ЦПД (цитопатического действия). Там, где вирус оставался нативным, отмечено ЦПД.

Вариант с животными. Например, проводят выявление антител в сыворотках людей с подозрением на бешенство. К 10-кратным разведениям ВСМ в пробирках добавляют равный объем исследуемой сыворотки в разведении 1:10. Параллельно делают контрольный ряд (нормальная сыворотка). Пробирки оставляют на 1 ч при 37о С. Смесь вводят в мозг молодым взрослым белым мышам и наблюдают 30 суток. Мыши, зараженные смесью вируса с антителами, не болевают, а зараженные смесью вируса с нормальной сывороткой погибают от энцефалита.

Цветная проба. Антисыворотки смешивают с вирусом по 0,4 мл (ТКИД50). Через 2 ч вносят 0,2 мл смеси в лунку с культурой клеток и наслаивают сверху вазелин 0,2 мл для изоляции от кислорода воздуха. На протяжении 6-8 дней регистрируют изменение цвета среды. В лунках, где был внесен нейтрализованный вирус, цвет среды изменится от красного к желтому. Там, где вирус был живым, клетки погибли, а цвет среды оставался красным.

Феномен иммуноконъюгации

Основан на конъюгации метки разной природы на одном из компонентов реакции антиген-антитело или на дополнительном агенте.

РИА - радиоиммунологический анализ.

Прямой метод.

В лунки двух рядов полистироловых планшет вносят исследуемый на антиген экстракт, в концентрации 0,05 мкг, выдерживают 12 ч при комнатной температуре, отмывают планшет физиологическим раствором, содержащим 5 % по объему фосфатного буфера и 2 % твина-20. В качестве конъюгата используют иммунный глобулин, который соответствует по специфичности предполагаемому антигену, меченный J 125.

Вносят конъюгат во все лунки двух рядов. Выдерживают 60 мин при 37о С, трижды отмывают растворителем и определяют дозаторами остаточную долю связавшейся метки, против той, которая была на конъюгате.

Непрямой метод.

Полистироловые планшеты, применяемые для ИФА, нагружают антигеном в рабочей дозе (предварительно выбирается доза, связывающая 50 % метки). Для этого, растворимый антиген (вируссодержащую жидкость) заливают в лунки микротитратора пипетками по 0,1 мл и оставляют на ночь при комнатной температуре. На другой день лунки с антигеном трижды отмывают растворителем для удаления свободного антигена.

В лунки с сорбированным антигеном вносят по 0,1 мл разведения испытуемой на антитела сыворотки. Разведения сыворотки предварительно готовят в пробирках и по 0,1 мл вносят в лунки планшета, начиная с последней пробирки (вносят в последнюю лунку) и т.д. Планшету оставляют на 40 мин при 37о С, трижды отмывают растворителем для удаления свободных компонентов сыворотки.

Предварительно готовят конъюгат. Из антисыворотки кроличьей против сывороточных белков человека получают глобулин, путем высаливания 40 % сульфатом аммония. От соли глобулин очищают одним из методов, например, пропуская через сефадекс G50. Затем этот глобулин добавляют к смеси J 125 и хлорамина Т в равных объемах, через 2 мин реакцию останавливают с помощью NaHSO3 и проводят разделение меченого глобулина и свободных компонентов на сефадексе-G25. Меченый глобулин консервируют 0,2 % азида натрия.

Заранее приготовленный конъюгат вносят во все лунки планшет по 0,1 мл, выдерживают в течение 40 мин при 37о С, а затем трижды отмывают лунки растворителем. Далее в лунках плпншет следует проводить определение доли связанного йода по сравнению с количеством его в конъюгате.