
- •Министерство сельского хозяйства и продовольствия республики беларусь
- •Введение
- •Раздел 1. Физиология и биохимия растительной клетки
- •Работа 1. Проницаемость живой и мертвой протоплазмы
- •Работа 2. Влияние ионов калия и кальция на состояние протоплазмы
- •Работа 3. Определение редуцирующих сахаров
- •Работа 4. Определение кислотного числа жиров
- •Работа 5. Определение изоэлектрической точки белка
- •Работа 6. Обнаружение дегидрогеназ в растительных тканях
- •Работа 7. Газометрическое определение активности каталазы растительных тканей
- •Работа 8. Влияние кислотности среды на активность каталазы
- •Работа 9. Влияние температуры на скорость гидролиза крахмала амилазами
- •Раздел 2. Водный обмен растений
- •Работа 10. Определение содержания воды и сухого вещества в растительном материале
- •Работа 11. Получение полупроницаемой перепонки и наблюдение явлений осмоса
- •Работа 12. Явления плазмолиза и деплазмолиза в растительной клетке
- •Работа 13. Определение водного потенциала растительных тканей с помощью рефрактометра (по н. А. Максимову и н. С. Петинову)
- •Работа 14. Определение осмотического потенциала клеточного сока методом плазмолиза
- •Работа 15. Влияние света и влажности воздуха на транспирацию
- •Работа 16. Определение интенсивности транспирации по методу л.А.Иванова (при помощи торсионных весов)
- •Работа 17. Определение относительной транспирации
- •Работа 18. Определение интенсивности транспирации объёмным методом (в модификации в. П. Моисеева)
- •Работа 19. Определение водного дефицита растений
- •Раздел 3. Фотосинтез
- •Работа 20. Изучение химических свойств пигментов зеленого листа
- •Работа 21. Оптические свойства пигментов
- •Работа 22. Определение содержания хлорофилла в листьях
- •Работа 23. Определение интенсивности истинного фотосинтеза по количеству накопленного сухого вещества
- •Работа 24. Определение чистой продуктивности фотосинтеза
- •Раздел 7. Дыхание растений
- •Работа 25. Расходование органических веществ на дыхание
- •Работа 26. Влияние температуры на интенсивность дыхания
- •Работа 27. Определение величины дыхательного коэффициента
- •Раздел 8. Минеральное питание растений
- •Работа 28. Влияние отдельных элементов минерального питания на рост и развитие растений
- •156,36 Г MgSо42н2о содержит 32,06 г s,
- •Работа 29. Определение общей и рабочей адсорбирующей поверхности корней методом д.А.Сабинина и и.И.Колосова
- •Работа 30. Влияние концентрации раствора аммиачной селитры (нитрата аммония) на прорастание семян
- •Работа 31. Антагонизм ионов
- •Раздел 9. Рост и развитие растений
- •Работа 32. Влияние света на рост растений
- •Работа 33. Влияние температуры на рост растений
- •Работа 34. Влияние гетероауксина на рост корней
- •Работа 35. Влияние гетероауксина на укоренение черенков
- •Работа 36. Обнаружение углеводов при прорастании семян масличных культур
- •Раздел 11. Приспособление и устойчивость растений
- •Работа 37. Влияние температуры на прорастание семян
- •Работа 38. Защитное действие сахара на протоплазму при замораживании
- •Работа 39. Определение солеустойчивости растений
- •Раздел 12. Физиология и биохимия формирования качества урожая сельскохозяйственных культур
- •Работа 40. Определение белка в семенах по биуретовой реакции
- •Поставитиь стрелки!!!!
- •Работа 41. Определение содержания клейковины в зерне
- •Работа 42. Определение индекса деформации клейковины
- •Работа 43. Колориметрический метод определения сахаров
- •Работа 44. Определение содержания крахмала поляриметрическим методом
- •Работа 45. Определение содержания масла в семенах при помощи рефрактометра (по а.И. Ермакову)
- •Работа 46. Быстрый рефрактометрический метод определения йодного числа жиров
- •Работа 47. Определение общей кислотности растительных тканей
- •Работа 48. Обнаружение алкалоидов в растениях
- •Работа 49. Обнаружение дубильных веществ в растениях
- •Работа 50. Определение аскорбиновой кислоты (витамина с)
- •Работа 51. Количественное определение каротина
- •Раздел 1. Физиология и биохимия растительной клетки 4
- •Раздел 2. Водный обмен растений 22
- •Раздел 3. Фотосинтез 45
- •Виктор Потапович Моисеев, Николай Петрович Решецкий
- •213407 Г. Горки Могилевской обл., ул. Мичурина, 5
Работа 29. Определение общей и рабочей адсорбирующей поверхности корней методом д.А.Сабинина и и.И.Колосова
Поглотительная способность корневой системы зависит от её длины, физиологической активности и соотношения деятельной и недеятельной поверхности. К деятельной или рабочей адсорбирующей поверхности относят поверхность молодых корней и корневых волосков, интенсивно поглощающие элементы минерального питания и воду. К недеятельной относят поверхность старых корней, лишенных корневых волосков и покрытых пробкой, они не участвуют или слабо участвуют в процессах поглощения минеральных элементов и воды.
У более продуктивных растений формируется большая общая поверхность корней и, что особенно важно, имеющая большую рабочую поверхность. Путем сравнения величины адсорбирующей поверхности корней у различных сортов и гибридов можно выделить из них перспективные формы для конкретных условий произрастания.
Метод Д.А.Сабинина и И.И.Колосова основан на представлении об адсорбционном характере начального этапа поглощения веществ корнями. В качестве адсорбируемого вещества используется раствор метиленового синего, поглощение которой можно определить по изменению концентрации опытного раствора. Если допустить, что ионы и молекулы при адсорбционном насыщении поверхности корней располагаются в один слой, то можно определить площадь, на которой они адсорбируются.
Установлено, что при двукратном 1,5-минутном погружении корневой системы в раствор метиленовой синей происходит адсорбционное насыщение как деятельной, так и недеятельной поверхности корней, а при третьем погружении метиленовая синяя поглощается только деятельной поверхностью, которая за этот промежуток времени десорбировала поглощенную ранее краску внутрь корня.
Известно, что 1 мг раствора метиленового синего покрывает 1,1 м2 поверхности адсорбента. Поэтому, зная количество поглощенного метиленового синего корнями можно определить их поглощающую поверхность.
Цель работы. Определить общую, рабочую и недеятельную поверхность корневой системы у растений различных сортов сельскохозяйственных культур и растений, выращенных на питательных смесях с исключением отдельных элементов минерального питания.
Ход работы. Вначале определяют объем корневой системы, для этого в мерный цилиндр наливают воду до определенного деления, погружают в нее корни, предварительно обсушенные фильтровальной бумагой, и учитывают объем вытесненной воды.
Для определения адсорбирующей поверхности корней в три пронумерованных стакана наливают 0,0002 н. раствор метиленовой синей в количестве, превышающем объем корневой системы в 10 раз. Корни последовательно погружают на 1,5 мин в каждый стакан. При этом растворы в стаканах перемешивают путем их кругового вращения. После каждого погружения дают возможность синьке стечь с корней в тот же стакан, в котором они находились.
Окрашенные корни после извлечения их из третьего стакана промывают водой и помещают в стакан с раствором хлорида кальция, где наблюдают выделение метиленовой синей из корней, что указывает на наличие обменной адсорбции.
Затем опытные растворы из трех стаканов разбавляют дистиллированной водой в соотношении 1:9 (1 часть раствора + 9 частей воды) в малых стаканах на 50 мл. Одновременно с опытными растворами разбавляют исходный стандартный раствор метиленовой сини (4-й стаканчик). После этого определят их оптическую плотность на фотоэлектроколориметре (ФЭК). При работе на ФЭКе используют желтый светофильтр. Без разбавления растворы нельзя колориметрировать, так как их оптическая плотность очень высокая.
Концентрацию метиленовой синей в первом, втором и третьем опытных стаканах рассчитывают по формуле:
C
=
,
где С – концентрация метиленовой синей в опытных растворах, мг/мл;
Ск – концентрация метиленовой синей в исходном растворе (0,064 мг/мл);
Ек – оптическая плотность исходного раствора метиленовой синей;
Е – оптическая плотность метиленовой синей в опытных растворах.
Результаты определения оптической плотности и концентрации растворов записывают в табл. 36.
Т а б л и ц а 36. Результаты определения концентрации метиленовой синей
Анализи-руемое растение (вариант) |
Объем корневой системы, мл |
Показание оптической плотности метиленовой синей в стаканах |
Концентрация метиленовой синей в стаканах, мг | |||||
1-м (Е1) |
2-м (Е2) |
3-м (Е3) |
4-м (Ек) |
1-м (С1) |
2-м (С2) |
3-м (С3) | ||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
Концентрацию растворов в стаканах можно определить другим способом – по графику. Для этого определяют оптическую плотность растворов метиленового синего известной концентрации и по полученным данным строят график. Зная оптическую плотность исследуемых растворов находят их концентрации по графику и полученный результат умножают на 10 (с учетом 10-кратного разбавления).
Адсорбирующую поверхность корневой системы рассчитывают, пользуясь формулами, приведенными в табл. 37. Исходное содержание метиленового синего в растворе определяют путем умножения концентрации исходного раствора (Ск) на объем раствора в стакане (V). Количество оставшегося в стаканах метиленового синего после 1,5-минутного погружения корней определяют путем умножения концентраций этих растворов (С1, С2, С3) на их объем (V). Количество поглощенного метиленового синего из каждого стакана определяют как разницу между исходным содержанием и количеством оставшейся краски после погружения корней.
Т а б л и ц а 37. Расчет адсорбирующей поверхности корневой системы
Вариант |
Объем раствора метиленовой синей в стакане, мг |
Начальное содержание метиленовой синей в стакане, мг |
Осталось краски в растворе после погружения корней в стаканах, мг |
Поглощено корнями краски из растворов в стаканах, мг |
Адсорбирую-щая поверхность корней, м2 |
Удельная поверхность, м2/мл | ||||||||
В первом |
Во втором |
В третьем |
Из первого |
Из второго |
Из первого и второго вместе |
Из третьего |
Общая |
Рабочая |
Недеятельная |
Общая |
Рабочая | |||
V |
А =VСк |
А1=VС1 |
A2=VC2 |
A3=VC3 |
B1=A-A1 |
B2=A-A2 |
B3= B1+B2 |
C =A-A3 |
D = B31,1 |
D1 = C1,1 |
D2 = D – D1 |
D/V·10 |
D1/V | |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
Умножая 1,1 м2 на число миллиграммов метиленовой синей, поглощенной из первого и второго стаканов (В3), получают величину общей адсорбирующей поверхности корней. Умножением 1,1 м2 на количество миллиграммов краски, поглощенной из третьего стакана (С) находят величину рабочей адсорбирующей поверхности. Разница между величинами общей и рабочей адсорбирующей поверхности дает представление о величине недеятельной поверхности корней. Удельную адсорбирующую поверхность корней находят путем деления величин общей и рабочей поверхности на объем корней.
Результаты опыта анализируют и делают выводы.
Вопросы:
Что понимают под общей, рабочей и недеятельной адсорбирующей поверхностью корней?
Какие факторы влияют на поглотительную способность корней? Недостаток какого элемента минерального питания сильнее всего влияет на поглотительную способность корней?
На чем основан метод определения адсорбирующей поверхности корней в данной работе? Почему учитывается отдельно количество метиленовой синей, поглощенной из первых двух и третьего стакана?
Материалы и оборудование: 0,0002 н. раствор метиленового синего (64 мг в 1 л дистиллированной воды), стаканы на 50 мл, стаканы на 100…1000 мл, мерные цилиндры для определения объема корней, фильтровальная бумага, ФЭК, хлорид кальция.