- •Содержание
- •1.Обзор литературы 9
- •2. Эксперементальная часть 22
- •Глава 3. Охрана труда. 60
- •Глава 4. Экология и охрана окружающей среды. 64
- •Глава 5. Организационно-экономическая оценка эффективности применения перевалки при доращивании ех vitro растений. 66
- •Введение
- •1.Обзор литературы
- •1.1. Происхождение, биологические особенности роста и плодоношения современных сортов малины и ежевики
- •1.2.Основные апробационные признаки сортов
- •1.3.Описание исследуемых сортов
- •1.3.1. Малина обыкновенная
- •1.3.2.Малина ремонтантная
- •1.3.3.Ежевика
- •1.3.4. Малино-ежевичные сорта
- •1.3.5. Сорта малины черной
- •1.4.Адаптацияin vitroрастений к нестерильным условиям
- •1.5. Доращивание укорененного материала в контейнерах
- •2. Эксперементальная часть
- •2.1. Цель и задачи исследований
- •Задачи исследований
- •2.2.Методика исследований
- •2.3. Природно-климатические и метеорологические условия проведения исследований.
- •Средняя продолжительность, начало и конец периодов с определенной температурой и соответствующие суммы температур.
- •Высота снежного покрова по месяцам (мм)
- •Метеорологические данные за 2011 год
- •2.4.Результаты исследований
- •2.4.1. Особенности роста и развития двухлетнихex vitroрастений рода Rubus в зависимости от сроков адаптации и подготовки растений к доращиванию.
- •2011 Год
- •2.4.2. Особенности роста и развития однолетнихex vitroрастений рода Rubus в зависимости от объема контейнеров для доращивания.
- •Продолжение таблицы 2.4.2.12.
- •Продолжение таблицы 2.4.2.13.
- •2.4.3. Особенности роста и развития двулетнихex vitroрастений рода Rubus в зависимости от объема контейнеров для доращивания.
- •2.4.4. Сравнительный анализ трех сроков адаптации и различных режимов зимнего хранения при доращивании ремонтантной малины.
- •Глава 3. Охрана труда.
- •3.1. Меры безопасности при работе в теплицах
- •3.2. Меры предосторожности при работе с регуляторами роста и биологически активными веществами.
- •Глава 4. Экология и охрана окружающей среды.
- •Глава 5. Организационно-экономическая оценка эффективности применения перевалки при доращиванииех vitroрастений.
- •Рекомендации производству
- •Список используемой литературы
1.3.3.Ежевика
ЛАУТОН, КИТТАНИНИ.Американские сорта, морфологически близкие между собой, относящиеся к группе пряморослых ежевик. Выдерживают морозы до – 20… –25о С. Побеги высотой 2-2,5 м, шиповатые. Цветки крупные, белые. Ягоды массой 3-3,5 г, широко-яйцевидные, фиолетово-черные. Цветение в условиях Майкопской опытной станции ВНИИР происходит с третьей декады мая до начала июня, созревание – с третьей декады июля до конца августа. Ягоды используют для приготовления продуктов переработки высокого качества.
ТОРНФРИ.Один из первых коммерческих сортов ежевики бесшипными побегами, созданный в США в 1966 году. Он формирует мощный куст с длинными (до 4 – 5 м) полустелющимися побегами. Цветки крупные, диаметром 3-3,5 см, лепестки розовые. Ягоды крупные, массой до 5 г (длиной до 3 см), яйцевидные, фиолетово-черные, кисловато-сладкие. В условиях средней полосы России цветет во второй половине июня, созревание плодов заканчивается в конце августа. Ягоды используют для приготовления высококачественных продуктов переработки. Сорт низкой зимостойкости, но устойчив к антракнозу побегов, ржавчине и стеблевому раку.
БЛЕК САТИН.Бесшипый сорт, близок по основным хозяйственно-биологическим признакам к сорту Торнфри
1.3.4. Малино-ежевичные сорта
ЛОГАНБЕРРИ (Логанова ягода). Один из первых малино-ежевичных гибридов, выделенный в США в 1881 году. Куст менее мощный, чем у ежевики, побеги стелющиеся, шиповатые. Плоды крупные, конические, красно-пурпуровые со своеобразным ароматом. Урожайность умеренная. Зимостойкость низкая. Созревание плодов позднее. Существует много клонов Логанберри, среди которых есть и бесшипные формы с более ранним сроком созревания ягод.
ТАЙБЕРРИ.Получен в Великобритании в 1979 году от скрещивания тетраплоидной малины сорта Моллинг Джуел с октоплоидной ежевикой Аврора. Сорт имеет крупные (до 5 см в длину), красные, вкусные разносозревающие (в июле) ягоды, урожайность которых превышает 20 т с гектара. Плодоношение у него сосредоточено на коротких боковых веточках, что упрощает уборку урожая. Сорт пользуется большой популярностью в ряде стран Западной Европы и Северной Америки. К недостаткам сорта относятся его низкая зимостойкость и сильношиповатые стелющиеся побеги.
1.3.5. Сорта малины черной
КУМБЕРЛЕНД. Наиболее известный в России сорт малины черной, выведенной в США более ста лет назад. Куст средней высоты (1,5–2м), с аркообразно изогнутыми побегами, покрытыми острыми, многочисленными шипами и густым восковым налетом. Корневых отпрысков не образует. Размножается укоренением верхушек побегов. Зимостойкость средняя (выдерживает морозы до – 30оС), желательно укрывать побеги снегом или другим утепляющим материалом. Продуктивность может достигать до 3-4 кг ягод с куста. Ягоды мелкие (до 2 г), округлые, черно-фиолетовые, блестящие, с беловатым налетом между костянками, сладкие, с привкусом ежевики, транспортабельные. Ягоды созревают дружно, легко отделяются от плодоложа. Сорт вынослив к основным болезням и вредителям малины, однако в дождливые сезоны растения сильно повреждаются антракнозом. [9]
1.4.Адаптацияin vitroрастений к нестерильным условиям
Адаптация растений-регенерантов к условиям выращивания ex vitro является заключительным и наиболее критическим этапом микроразмножения растений. До сих пор неудачи на этом этапе у многих видов растений существенно снижают эффективность их размножения in vitro. Поэтому важно выявить причины, приводящие к гибели микрорастений.
Некоторые авторы выделяют комплекс факторов, влияющих на жизнеспособность микрорастений в период адаптации. Условия in vitro, и главным образом его отдельные элементы, такие как сахароза в питательной среде и высокая влажность воздуха внутри емкости для выращивания, подавляют функции растения, необходимые для развития в ex vitro условиях.
Условия дефицита углекислого газа вызывают соответствующее приспособление ассимиляционной ткани листьев, изменение функциональной активности фотосинтетического аппарата. [6]
Иссушение в этот период приводит к гибели. Это связано с нефункционирующими устьицами, недостатком кутикулярного воска, сильной транспирацией, а также сокращением поглощения воды корнями. Устьица in vitro растений не функционируют в течение 10-14 дней после пересадки. Поэтому микрорастения, высаженные на адаптацию, в течение этого периода теряют большое количество воды. По данным некоторых авторов, причиной может быть длительное нахождение растений под влиянием цитокининов, а также условия дефицита углекислого газа. Поэтому желательно, чтобы ко времени переноса растений они имели листья с функционирующими устьицами. Иначе это приведет к увяданию при переходе к естественным условиям выращивания. [6; 11]
Следует еще раз подчеркнуть значение поддержания в адаптационной теплице оптимальной для in vitro растений влажности. Благодаря высокой влажности воздуха (более 75%), высаженные на адаптацию растения не погибают даже при высоких температурах +45…+50 оС. Однако, при снижении влажности воздуха в теплице до 60% гибель листового аппарата будет наблюдаться уже при температуре воздуха +40 оС.[14]
Дисбаланс между листовым аппаратом и корневой системой в плане функциональных возможностей, их размера и строения, высокий уровень восприимчивости к патогенной инфекции ставят микрорастения в значительно более трудное положение, чем проростки семян сорных и даже культурных растений. Корнацкий С.А. отмечает, что рост и развитие последних происходят постепенно и последовательно под действием запаса нативных гормонов, витаминов и питательных веществ, поэтому адаптация к условиям окружающей среды происходит естественно и безболезненно, за исключением случаев воздействия сильнопатогенной инфекции. Однако даже среди относительно генетически-однородного семенного материала разные партии отличаются жизнеспособностью в полевых условиях и силой роста.Различия в действии упомянутых Корнацким С.А. факторов и обуславливают высокий процент гибели растений-регенерантов в сравнении с проростками семян. [6; 11]
В тех случаях, когда после обработки ауксинами у микрочеренков появляется каллус и формируются толстые корни. В этом случае, как правило, между корнями и побегами осуществляется плохая сосудистая связь. В формирующихся боковых корнях также отмечаются изменения в проводящей системе. Нормально образующиеся корни те, которые регенерируют без образования каллуса. Следует также отметить, что формирующаяся в условиях in vitro корневая система регенерантов часто характеризуется отсутствием корневых волосков, а также корней второго порядка. Выявлено, что у микрорастений функционирующая корневая система формируется за 2-4 недели, в зависимости от породы, что необходимо для обеспечения водопотери в случае снижения влажности воздуха. Резкое снижение влажности воздуха, как отмечалось выше, губительно в этот момент. Периода от двух до пяти дней, в течение которых адаптация должна проходить постепенно, как правило, достаточно для того, чтобы обеспечить полную сохранность растений. [6; 11]
Как правило, микрорастения садовых культур для адаптации к нестерильным условиям в марте – апреле переносят в обогреваемые теплицы, где их пересаживают в пикировочные ящики, кассеты, пластиковые контейнеры или пленочные укрытия, заполненные приготовленным заранее искусственным субстратом. В течение периода адаптации в теплицах поддерживается высокая относительная влажность 75-90% и температура воздуха 22-28°С, а также освещенность 2-5 тыс. люкс при фотопериоде 15-18 часов [3; 4; 15; 17; 20].
Большинство исследователей рекомендуют для перевода микрорастений из стерильных условий произрастания в нестерильыне использовать микрорастения определенных параметров с длиной корней и высотой микропобега 2,0 см и более (кондиционные растения).[20; 24]. Для адаптации микрорастений малины оптимальным считается возраст 45-60 дней. [17; 19; 20].
Большое влияние на процессы адаптации регенерантов ex vitroоказывают искусственные субстраты. Известны способы адаптации и доращивания микрорастений в условиях зимних обогреваемых теплиц на искусственных субстратах, состоящих из органической основы (кора хвойных пород, торф, компост, льняная костра, почва, древесные опилки) [14; 16; 18] и инертных материалов (песок, вермикулит, минеральная вата, перлит, цеолит, глауконит) [5; 20; 21].
В технологии клонального микроразмножения наиболее часто используют смесь перлита и низинного или верхового торфа [3; 7; 8], которую обеззараживают 0,1% раствором бенлата, эупарена [9; 18,], противомикробными растворами с добавлением терразола [18] или обрабатывают горячим паром [16].
Наблюдается преимущество обеззараживания субстрата при переводе пробирочных растений в нестерильные условия. Так как препараты действуют на самом критическом этапе адаптации, повышая жизнеспособность и смягчают стресс при акклиматизации.
Отказ от стерилизации почвенного субстрата горячим паром при использовании растворов препаратов, перечисленных выше, значительно упрощает процесс пересадки, экономит время, затраты труда и электроэнергию. [10]
Таким образом, на этапе микроразмножения для растений-регенерантов необходимо создание таких условий, при которых они будут способны продолжить свой рост и развитие в новых для них условиях – ex vitro. Только с учетом всех перечисленных факторов можно обеспечить успех этапа адаптации, а процесс доращивания сделать предсказуемым.