Добавил:
kiopkiopkiop18@yandex.ru t.me/Prokururor I Вовсе не секретарь, но почту проверяю Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:

Ординатура / Хирургия / @xirurgi_2025 / @xirurgi_2025 - 1447 - файл

.pdf
Скачиваний:
0
Добавлен:
29.08.2026
Размер:
2 Мб
Скачать
Глава 1. БИОХИМИЯ МАКРОНУТРИЕНТОВ
https://t.me/med1917
дрогеназа), гидратирование (еноил-SКоА-гидратаза) ивновь окисление 3-го атома углерода (гидроксиацил-SКоА-дегидрогеназа). В последней, трансфе­разной реакции от жирной кислоты отщепляется ацетил-SКоА. Коставшейся (укороченной на два углерода) жирной кислоте присоединяется HS-КоА, иона возвращается кпервой реакции. Все повторяется до тех пор, пока впоследнем цикле не образуются два ацетил-SКоА.
Расчет энергетического баланса -окисления
При расчете количества АТФ, образуемого при -окислении жирных кислот, не-
обходимо учитывать параметры, указанные ниже.
Количество образуемого ацетил-SКоА определяется обычным делением числа
атомов углерода вжирной кислоте на 2.
Число циклов
ной кислоте как оцепочке двухуглеродных звеньев. Число разрывов между звеньями соответствует числу циклов -окисления. Эту же величину можно рассчитать по формуле (n / 2 1), где показатель n — чис ло а томов углеро да вкислоте.
Число двойных связей вжирной кислоте. Впервой реакции
исходит образование двойной связи при участии ФАД. Если двойная связь вжирной кислоте уже имеется, то необходимость в этой реакции отпадает и ФАДН2 не образуется. Количество необразованных ФАДН2 соответствует числу двойных связей. Остальные реакции цикла идут без изменений.
Количество энергии АТФ, потраченной на активацию, всегда соответствует
двум макроэргическим связям.
-окисления легко определить, исходя из представления ожир-
-окисления про-
19
Синтез жиров
Биосинтез жирных кислот наиболее активно происходит вцитозоле клеток печени,
кишечника и жировой ткани всостоянии покоя или после еды.
Условно можно выделить 4 этапа биосинтеза.
1. Образование ацетил-SКоА из глюкозы, других моносахаров или кетогенных аминокислот.
2. Перенос ацетил-SКоА из митохондрий вцитозоль:
может быть вкомплексе скарнитином, подобно тому как переносятся внутрь
митохондрии высшие жирные кислоты, но здесь транспорт идет вдругом направлении;
обычно осуществляется всоставе лимонной кислоты, образующейся впер-
вой реакции ЦТК.
Парентеральное питание: вопросы иответы
https://t.me/med1917
20
Поступающий из митохондрий цитрат в цитозоле расщепляется АТФ-цитрат-
лиазой до оксалоацетата иацетил-SКоА.
Оксалоацетат вдальнейшем восстанавливается до малата, ипоследний либо
переходит вмитохондрии (малат-аспартатный челнок), либо декарбоксилиру­ется впируват малик-ферментом («яблочный» фермент).
3.
Образование малонил-SКоА из ацетил-SКоА.
Карбоксилирование ацетил-SКоА катализируется ацетил-SКоА-карбоксилазой,
мультиферментным комплексом из трех ферментов.
4.
Синтез пальмитиновой кислоты осуществляется мультиферментным комплек-
сом «синтаза жирных кислот» (синоним пальмитатсинтаза) всоставе 6-ти фер­ментов иацил-переносящего белка (АПБ).
Ацил-переносящий белок включает производное пантотеновой кислоты фопантетеин (ФП), имеющий HS-группу, подобно HS-КоА. Один их ферментов ком­плекса, 3-кетоацил-синтаза, также имеет HS-группу всоставе цистеина. Взаимодей­ствие этих групп обусловливает начало ипродолжение биосинтеза жирной кислоты, аименно пальмитиновой кислоты. Для реакций синтеза необходим НАДФН.
Активные группы синтаз жирных кислот
В первых двух реакциях последовательно присоединяются малонил-SКоА кфос­фопантетеину ацил-переносящего белка иацетил-SКоА кцистеину 3-кетоацилсинтазы.
3-кетоацилсинтаза катализирует третью реакцию — перенос ацетильной группы на С2 малонила сотщеплением карбоксильной группы.
Далее кетогруппа вреакциях восстановления (3-кетоацил-редуктаза), дегидрата­ции (дегидратаза) иопять восстановления (еноил-редуктаза) превращается вметиле­новую собразованием насыщенного ацила, связанного сфосфопантетеином.
Ацилтрансфераза переносит полученный ацил на цистеин 3-кетоацил-синтазы, кфосфопантетеину присоединяется малонил-SКоА ицикл повторяется 7 раз до обра­зования остатка пальмитиновой кислоты. После этого пальмитиновая кислота отще­пляется шестым ферментом комплекса тиоэстеразой.
— 6-фос-
Реакции синтеза жирных кислот. Удлинение цепи жирных кислот
Синтезированная пальмитиновая кислота при необходимости поступает вэндо­плазматический ретикулум или вмитохондрии. Здесь с участием малонил-S-КоА иНАДФН цепь удлиняется до С18 или С20.
Удлиняться могут иненасыщенные жирные кислоты (олеиновая, линолевая, лино­леновая) собразованием производных эйкозановой кислоты (С20). Но двойная связь клетками организма вводится не далее 9 атома углерода, поэтому -3- и -6-полине­насыщенные жирные кислоты синтезируются только из соответствующих предшест­венников.
Глава 1. БИОХИМИЯ МАКРОНУТРИЕНТОВ
https://t.me/med1917
Например, арахидоновая кислота может образоваться вклетке только при нали­чии линоленовой или линолевой кислот. При этом линолевая кислота (18:2) дегидри­руется до -линоленовой (18:3) и удлиняется до эйкозотриеновой кислоты (20:3), последняя далее вновь дегидрируется до арахидоновой кислоты (4). Так формируются жирные кислоты
Для образования жирных кислот -3 ряда, например, тимнодоновой (20:5), необ­ходимо наличие -линоленовой кислоты (18:3), которая дегидрируется (18:4), удлиня­ется (20:4) иопять дегидрируется (20:5).
-6 ряда.
ПРОТЕИНЫ
Как аминокислоты превращаются вбелок?
Для синтеза белка в организме человека используются альфа-аминокислоты, которые как правило имеют L-конфигурацию. Альфа-аминокислоты — это соедине­ния, которые имеют аминогруппу икарбоксильную группу увторого (альфа) атома углерода. Хотя внекоторых белках присутствуют другие виды аминокислот, но это достаточно редкая ситуация. Например, впротромбине содержится гамма-карбок­сиглутаминовая кислота. Ворганизме синтез происходит из 20 аминокислот.
Соединяясь между собой, альфа-карбоксильная группа одной аминокислоты иальфа-аминогруппа другой аминокислоты образуют пептид. Сначала это моно­пептид, затем дипептид идалее до полипептида. Такая связь между аминокислотами называется пептидной. Врезультате получается первичная структура белка. Индиви­дуальность белков зависит от последовательности ивида аминокислот, атакже от их количества. Пептидная цепь обладает значительной гибкостью. Врезультате межце­почечного му (конфор мацию).
собой, образуя водородные связи. Пептид пытается образовать максимальное коли­чество водородных связей между цепями, чтобы приобрести компактную конформа­цию, но этот процесс ограничен наличием большого количества двойных связей. Врезультате образования водородных связей-мостиков образуется вторичная структура белка. Существует три основные формы вторичной структуры: альфа-спираль, бе­та-структура ибеспорядочный клубок. Кроме этого, имеется еще одна структура обо­значаемая, как бета-поворот. Врезультате взаимодействия между боковыми группа­ми аминокислот молекулы белка приобретают третичную структуру. Образуются дис­ульфидная инековалентные связи вмолекуле белка. Усложных белков, в которых имеются две пептидные цепи, соединенные между собой нековалентными связями,
взаимодействия она приобретает определенную пространственную фор-
Карбоксильные группы и аминогруппы разных цепей взаимодействуют между
21
Парентеральное питание: вопросы иответы
https://t.me/med1917
22
формируется четвертичная структура. Синтез белка происходит врибосомах, всинтезе участвуют несколько молекул нуклеиновых кислот. Для синтеза белка необходимы аминокислоты, которые могут поступать из внутриклеточного пула, или образовывать­ся вследствие распада белка исинтеза заменимых аминокислот.
Одним из важных продуктов, синтезируемых из аминокислот, является креатин.
Креатин фосфата креатин является «депо» макроэргических связей, используется для быстрого ресинтеза АТФ во время работы клетки.
Особенно показательна роль креатина вмышечной ткани. Креатинфосфат обе­спечивает срочный ресинтез АТФ в первые секунды работы (5–10 с), когда никакие другие источники энергии (анаэробный гликолиз, аэробное окисление глюкозы, -окис­ление жирных кислот) еще не активированы, икровоснабжение мышцы не увеличено. Вклетках нервной ткани креатинфосфат поддерживает жизнеспособность клеток при отсутствии кислорода.
При мышечной работе ионы Са+, высвободившиеся из саркоплазматического ретикулума, являются активаторами креатинкиназы. Реакция интересна тем, что на ее примере можно наблюдать обратную положительную связь — активацию фермента продуктом реакции — креатином. Это позволяет избежать снижения скорости реакции в ходе работы, которое должно было бы произойти по закону действующих масс из-за снижения концентрации креатинфосфата вработающих мышцах.
Около 3 % креатинфосфата вреакции неферментативного дефосфорилирования постоянно превращается вкреатинин. Количество креатинина, выделяемое здоровым человеком всутки, всегда практически одинаково изависит только от объема мышеч­ной массы. Концентрация креатинина вкрови имоче является ценным диагностиче­ским показателем.
Синтез креатина идет последовательно впочках и печени в двух трансфераз­ныхреакциях. По окончании синтеза креатин стоком крови доставляется вмышцы или мозг.
Здесь при наличии энергии АТФ (во время покоя или отдыха) он фосфорилирует­ся собразованием креатинфосфата.
На рис. 1.7 представлены пути метаболизма аминокислот для образования энер­гии через синтез молекул АТФ.
Конечный продукт катаболизма аминокислот половина выводимого азота проходит стадию образования аммиака, из которого за­тем синтезируется мочевина. Другая часть сразу превращается в мочевину, минуя стадию образования аммиака. При обоих вариантах из аминокислот после потери азота образуются главным образом альфа-кетокислоты. Дальнейший катаболизм дан­ных соединений ведет кобразованию пировиноградной кислоты иперехода вцикл Кребса. Аланин, цистеин исерин превращаются впируват напрямую.
Другие аминокислоты проходят более длинный путь. Вначале они превращаются впромежуточные продукты цитратного цикла, азатем углерод аминокислот покидает данный цикл всоставе оксалоацетата, который превращается вфосфоенолпируват идалее уже впируват.
— вещество скелетных мышц, миокарда, нервной ткани. Ввиде креатин-
— мочевина. Следует отметить, что
Глава 1. БИОХИМИЯ МАКРОНУТРИЕНТОВ
https://t.me/med1917
23
Аминокислоты
Аммиак
Мочевина
Азотистые основания
Биогенные амины
Т
р
а
н
с
а
м
и
н
и
3-ФГК
р
о
в
а
н
и
е
2-ФГК
АТФ
субстр.
2H+ + 2e
ГликогенБелки
Глюкозо-1-Ф
Глюкоза
Глюкозо-6-Ф
Фруктозо-6-Ф
Фруктозо-1,6-диФ
АДФ
1,3-диФГК
ГАФ
НАД
НАДН
АТФ
АДФ
субстр.
ФЕП Пируват Лактат
2H+ + 2e
CO₂
Ацетил~SKoA
Оксалоацетат (C4)
Цитрат (C6)
ДОАФ
ПФП
НАДН
CO₂
НАДФН пентозы
Глицерол-3-Ф
НАД
Кетоновые тела
Холестерин
2H+ + 2e
Липиды
Жирные кислоты
2H+ + 2e
+
НАДН
+ H
ФАДН2
2e
ФМН
Мембрана
[FeS]
nH
2e
n
+
Рис. 1.7. Взаимосвязь процессов окисления из различных субстратов
Малат (C4)
Фумарат (C4)
[FeS]
Q
-Кетоглутарат (C5)
Сукцинат (C4) Сукцинат~SKoA (C4)
ГТФ
ГДФ
2e
[FeS]
nH
+ Ф
Цитохромы
n
+
Fe³
C
субстр.
n
Цитохромы
Fe³+ Fe
[FeS]
n
Изоцитрат (C6)
CO₂
2H+ + 2e
2H+ + ½O₂
+
+
Fe²
Cu²+/ Cu
+
nH
CO₂
2H+ + 2e
2e
+
H₂O
АДФ
+ Ф
nH
АТФ
+
Парентеральное питание: вопросы иответы
https://t.me/med1917
24
Аминокислоты участвуют вглюконеогенезе. При этом нужно помнить, что глюко­генез возможен только из тех аминокислот, из которых образуется пируват. Катабо­лизм лейцина илизина не включает стадию пировиноградной кислоты; углеродная часть превращается непосредственно вацетоуксусную кислоту иацетил-КоА, из кото­рых синтез углеводов не возможен
— это кетогенные кислоты. Тирозин, фенилаланин,
трип тофан являются игликогенными икетогенными.
Любая заменимая аминокислота может синтезироваться ворганизме внеобходи­мых количествах. При этом углеродная часть получается из глюкозы, ааминогруппа — из другой аминокислоты путем трансаминирования.
Аланин, аспаратат, глутамат образуются из пирувата, оксалоацетата и -кетоглутарата соответственно. Глутамин образуется из глутаминовой кислоты при помощи глутаминсин­тетазы. Аспарагин синтезируется из аспартата иглутамина при помощи фермента аспара­гинсинтетазы. Пролин образуется из глутамина. Гистидин из АТФ ирибозы.
Кроме этого, из аминокислот синтезируются биогенные амины (серотонин, ГАМК, дофамин, гистамин идр).
Таким образом, процессы окисления исинтеза взаимосвязаны между всеми ну­триентами, на течение процессов обмена оказывают влияние гормоны, нервная систе­ма ивоспалительные реакции.
Для критических состояний характерны взаимосвязанные метаболические про-
блемы, решение которых является сложной задачей и затрудняет безопасное проведение парентерального питания. Они описаны впоследующих главах руко­водства:
инсулинорезистентность (см. главу «Глюкоза»);
 повышенный катаболизм белка;
нарушение окисления макронутриентов;
 высокая концентрация свободных жирных кислот;
 повышенный основной обмен.
Литература
1
David E. Metzler. Biochemistry: The Chemical Reactions of Living Cells.— 2nd edition.— Aca-
demic Press, 2003.— Т. 2.— 1973 с.— ISBN 978-0-1249-2541-0.
2
David L. Nelson, Michael M. Cox. Lehninger Principles of biochemistry.— Fifth edition.— New
York: W. H. Freeman and company, 2008.— 1158 p.— ISBN 978-0-7167-7108-1.
3
Campbell N. A., Reece J. B., Urry L. A. e. a. Biology. 9 ed.— Benjamin Cummings, 2011.— 1263p.—
ISBN 978-0-321-55823-7.
4
Кольман Я., Рём К.-Г. Наглядная биохимия.— 4-е изд.— М.: БИНОМ. Лаборатория знаний,
2012.— 469 с.— ISBN 978-5-9963-0620-6.
5
Биологическая химия супражнениями изадачами / Под ред. С. Е. Северина.— М.: Изда-
тельская группа «ГЭОТАР-Медиа», 2011.— 624 с.
А. И. Ярошецкий
https://t.me/med1917
Глава 2. РАСТВОРЫ ГЛЮКОЗЫ
ДЛЯ ПАРЕНТЕРАЛЬНОГО ПИТАНИЯ
Углеводы являются одним из основных источников энергии ворганизме человека, обеспечивая до 50–60 % всех энергозатрат. Глюкоза является основным углеводом­мономером, участвующим вметаболизме человеческого организма. При невозмож­ности энтерального введения глюкозы ее необходимо применять парентерально. Сле­дует отметить, что сама глюкоза не является незаменимым нутриентом, так как может синтезироваться из всех основных субстратов — жиров и аминокислот (глюконеоге­нез). Тем не менее, так называемые инсулиннезависимые органы (головной мозг, клетки крови, мозговое вещество почек, грануляционная ткань, макрофаги) использу­ют глюкозу как главный источник энергии. При окислении 1 г глюкозы образуется 4,1ккал энергии. Кроме глюкозы, для парентерального введения могут быть исполь­зованы идругие моносахариды — фруктоза, галактоза.
Минимальная суточная норма глюкозы составляет около 2 г/кг. Максимально реко­мендованное количество вводимой глюкозы не должно превышать 5 г/кг/сут вого человека вусловиях аэробного гликолиза скорость окисления глюкозы составляет около 3 мг/кг/мин. При развитии критического состояния или сепсиса скорость окис­ления глюкозы снижается до 1,5–2 мг/кг/мин4. Поступление избытка глюкозы ворга­низм приводит кактивации процессов липонеогенеза, втом числе, развития жировой дистрофии печени. Парентеральное введение стандартного количества глюкозы уболь­ных сочень низкой массой тела может привести кразвитию полиорганной недоста­точности (синдром возобновления питания — «рефидинг-синдром»).
В зависимости от темпа поступления глюкозы ворганизм и состояния метаболизма возможны следующие пути превращения глюкозы:
окисление глюкозы (гликолиз — аэробный ианаэробный),
накопление глюкозы вдепо (синтез гликогена),
трансформация глюкозы вжиры (липонеогенез),
синтез пентоз (пентозо-фосфатный шунт).
1
. Уздоро-
25
Парентеральное питание: вопросы иответы
https://t.me/med1917
26
Метаболическая реакция организма на инфузию глюкозы
Инфузия 5 % глюкозы обладает волемическим эффектом, сходным свведением раствора Рингера, но несколько бóльшим (незначительно) перемещением во внесосу­дистое пространство2. Нутритивная ценность 5–10 % растворов глюкозы невелика. Дляпарентерального питания через центральный венозный катетер используют концент­рированные растворы глюкозы — 20–50 %, через периферический катетер — 10–13 %.
В норме эндогенный синтез глюкозы натощак составляет около 2,5 мг/кг/мин.
Внутривенное введение растворов глюкозы подавляет эндогенный ее синтез уздоро­вых добровольцев при любой скорости инфузии глюкозы вдиапазоне до 4 мг/кг/мин: чем выше темп инфузии глюкозы, тем больше подавлен ее синтез. Абсолютная сте­пень подавления эндогенной продукции глюкозы (до 75 %) наиболее выражена при введении глюкозы вдозе 4 мг/кг/мин (24г/ч или 120 мл 20 % глюкозы/ч или 60 мл 40 % глюкозы/ч при массе тела 100 кг) (рис. 2.1) 3.
3,00
2,25
1,50
0,75
Эндогенный синтез глюкозы, мг/кг/мин
0
Рис. 2.1. Эффекты внутривенной инфузии глюкозы на эндогенный синтез глюкозы уздоровых добровольцев
1 мг/кг/мин 2 мг/кг/мин 4 мг/кг/мин 4 мг/кг/мин + инсулин
Инфузия глюкозы, мг/кг/мин
3
До инфузии глюкозы Во время инфузии глюкозы
Скорость потребления глюкозы увеличивается только при инфузии глюкозы вдо­зе около 4 мг/кг/мин, несмотря на увеличение концентрации глюкозы вплазме крови при инфузии глюкозы со скоростью 2 мг/кг/мин. Скорость клиренса глюкозы растет, только если достаточное количество инсулина вводится параллельно свведением глюкозы 4мг/кг/мин для управления развивающейся при инфузии глюкозы гипергли­кемией. Приблизительно 43 % введенной глюкозы напрямую окисляется при скорости введения 1–2мг/кг/мин. Прямое окисление глюкозы снижается до 32 % при увеличе­нии скорости инфузии до 4 мг/кг/мин вне зависимости от использования инсулина 3.
Это связано стем, что возможности прямого окисления глюкозы составляют около 2–3 мг/кг/мин. При превышении этого порога введенная глюкоза идет на другие ме­таболические процессы 4 (рис. 2.2).
Глава 2. РАСТВОРЫ ГЛЮКОЗЫ ДЛЯПАРЕНТЕРАЛЬНОГО ПИТАНИЯ
https://t.me/med1917
27
9,00
6,75
4,50
2,25
Скорость инфузии и окисления глюкозы, мг/кг/мин
0
Рис. 2.2. Взаимосвязь между скоростями инфузии иокисления глюкозы
2 мг/кг/мин 4 мг/кг/мин 7 мг/кг/мин 9 мг/кг/мин
Инфузия глюкозы Окисление глюкозы
Инфузия глюкозы, мг/кг/мин
4
Инфузия глюкозы влияет на синтез инсулина иглюкагона — при введении глюко­зы внутривенно вплазме в3–4 раза растет концентрация инсулина, аконцентрация глюкагона снижается на 25–30 % 5.
Вобщем виде влияние скорости введения глюкозы на метаболизм выглядит сле­дующим образом 4. При темпе введения глюкозы 1–2 мг/кг/мин (100–200 г/сут при массе тела 70 кг) бóльшая часть глюкозы окисляется, подавление глюконеогенеза низкое. При темпе инфузии глюкозы 4 мг/кг/мин (400 г/сут при массе тела 70 кг) глю­конеогенез подавлен на 80 %, 50 % глюкозы превращается вжиры (триацилглицери­ды). Притемпе инфузии 7–8 мг/кг/мин (700–800 г/сут при массе тела 70 кг) 75 % глюкозы превращается в жиры (липонеогенез), возникает одышка. Максимальная скорость утилизации глюкозы 5 мг/кг/мин (500 г/сут при массе тела 70 кг). При ката­болизме (травма, ожоги, сепсис) низкое потребление углеводов (100–200 г/сут) имеет небольшое влияние на катаболизм белка ине подавляет глюконеогенез. Максималь­ное подавление глюконеогенеза происходит при потреблении 600 г глюкозы/сут. Ин­фузия углеводов 200–600 г улучшает азотистый баланс, дальнейшее увеличение ко-
4
личества глюкозы не подавляет катаболизм
.
Влияние инфузии липидов на метаболизм глюкозы
Известно, что «жиры сгорают впламени углеводов». Этому существует следующее объяснение. Ацетил-КоА, образовавшийся при окислении жирных кислот, включает­ся в цикл Кребса (цикл трикарбоновых кислот) при условии сбалансированности метаболизма жиров и углеводов. Включение ацетил-КоА вцикл Кребса зависит от доступности оксалоацетата для образования цитрата. Однако, если окисление жиров преобладает, судьба ацетил-КоА изменяется. Объясняется это тем, что вотсутствие углеводов или при нарушении их использования снижен синтез оксалоацетата из пирувата. При голодании или диабете оксалоацетат расходуется на образование глю­козы и поэтому не может конденсироваться с ацетил-КоА. В таких условиях путь
Парентеральное питание: вопросы иответы
https://t.me/med1917
28
метаболизма ацетил-КоА отклоняется всторону образования кетоновых тел (ацето­ацетата иD-3-гидроксибутирата).
Парентеральное введение жировой эмульсии приводит кувеличению концентра-
ции глюкозы иинсулина вплазме крови, но не влияет на скорость синтеза глюкозы
6
(нарушение утилизации глюкозы)
.
При нормальной концентрации инсулина инфузия жировых эмульсий конкуриру­ет сглюкозой за потребление периферическими тканями вне зависимости от гипер­гликемии. При инсулиновой недостаточности введение жировой эмульсии может приводить кгипергликемии не из-за конкуренции за утилизацию, аиз-за значитель­ного усиления эндогенного синтеза глюкозы 7.
Особенности метаболизма глюкозы при критических состояниях.
Инсулинорезистентность
Метаболизм углеводов и жиров кардинальным образом меняется при крити­ческих состояниях и сепсисе, когда увеличивается окисление жиров и снижается окисление углеводов (табл. 2.1), что диктует необходимость снижения количества итемпа вводимой глюкозы иувеличение доли липидов в составе парентерального питания 8.
Таблица 2.1. Сравнение окисления глюкозы илипидов после операции на сердце иприсепсисе
Энергопотребность покоя, ккал/сут 1390 1610 НД
Окисление глюкозы, мкмоль/кг/мин 4,3 1,75 <0,05
Окисление липидов, мг/кг/мин 0,6 1,26 <0,05
Другая глобальная проблема извращенного метаболизма при критических состо­яниях — инсулинорезистентность кемии инарушению обмена глюкозы, но икардинальным образом меняет метабо­лизм жиров ибелков, приводя кусилению катаболизма, снижению эффективности нутритивной поддержки, увеличению послеоперационных осложнений (в первую оче­редь, инфекционных) иухудшению исходов болезни.
При инсулинорезистентности (в отличие от здоровых людей) инфузия глюкозы практически не уменьшает эндогенный синтез глюкозы. Это позволяет снабжать боль­шим количеством глюкозы так называемые инсулиннезависимые ткани, такие как макрофаги игранулирующие раны. Применение упациентов вкритических состояни­ях изокалорического питания сразличными пропорциями глюкозы ижира не изменяет эндогенный синтез глюкозы всоотношении глюкозы кобщей энергии от 28 до75 % Следует отметить, что при инсулинорезистентности окисление глюкозы снижено не-
Кардиохирургия Сепсис р
9–10
, которая не только приводит кувеличению гли-
8
11
.
Соседние файлы в папке @xirurgi_2025