Добавил:
Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:

Учебно-методическое пособие к большому практикуму по биохимии. В двух частях. Ч.2. Биохимия пищевых продуктов

.pdf
Скачиваний:
0
Добавлен:
15.08.2026
Размер:
740 Кб
Скачать

Обработка результатов

Расчет количества аскорбиновой кислоты в пробе производят по фор-

муле

X =

A ·B ·100

,

(3.3)

 

C ·D

 

где X – содержание аскорбиновой кислоты, миллиграмм-проценты; A – количество раствора 2,6-дихлорфенолиндофенола, мл, израсходованное на титрование, за вычетом контроля; C – количество мл вытяжки, взятое для титрования; B – общее количество вытяжки, мл; D – количество вещества в граммах, взятое для анализа; 100 – количество граммов исследуемого материала, взятое для вычисления процентного содержания.

Для достижения аналитической точности эксперимент выполняют

втрёх аналитических повторностях.

3.8.Количественное определение витамина С в продуктах

питания методом йодометрии

Аскорбиновая кислота (витамин С) выполняет жизненно важные функции в организме – принимает участие в окислительно-восстановительных реакциях в качестве кофермента оксидоредуктаз.

В пищевых продуктах витамин С содержится как в восстановленной (аскорбиновая кислота), так и в окисленной форме (дегидроаскорбиновая кислота). Количественные химические методы определения аскорбиновой кислоты основаны на ее восстановительных свойствах.

Реактивы и материалы:

раствор йода спиртовой (C = 5%),

раствор крахмала (C = 1%),

растительные объекты (фрукты и овощи),

31

соляная кислота (C = 2%),

ступка и пестик,

центрифуга.

Подготовка материалов

Раствор йода спиртовой. Для приготовления раствора йода 2 г калия йодистого растворить в 40 мл смеси воды и этилового спирта (1 : 1). В полученной смеси растворить 5 г металлического йода. Когда йод полностью растворится, довести объём раствора до 100 мл этиловым спиртом (возможно использование аптечной спиртовой настойки йода). Перед проведением анализа развести полученный раствор в 40 раз.

Проведение анализа

Точную навеску исследуемого материала (сухие ягоды шиповника – 1 г, хвоя – 1 г, капуста – 5 г, картофель – 5 г) тщательно растирают в фарфоровой ступке с 4 мл 2%-й соляной кислоты. Затем без потерь переносят содержимое ступки в мерную колбу на 50 мл, несколько раз смывая ступку водой и сливая ее по стеклянной палочке в ту же колбу, и доводят объём раствора дистиллированной водой до метки. Полученную смесь оставляют на 5–10 мин.

К 10 мл вытяжки добавить 100 мкл раствора крахмала (1%) в качестве индикатора. Затем полученный раствор титруют раствором йода. Точкой эквивалентности служило возникновение устойчивого синего окрашивания, сохраняющегося в течение 30 с.

Обработка результатов

Расчет содержания аскорбиновой кислоты в исследуемых объектах был произведен исходя из того, что 1 мл 0,125%-го раствора йода окисляет 0,88 мг аскорбиновой кислоты.

Расчёт содержания витамина С в 1 г продукта проводят по формуле

X =

A ·0,88 ·B

,

(3.4)

 

C ·10

 

где A – объём раствора йода, ушедшего на титрование; 0,88 – грамм-эквива- лент аскорбиновой кислоты; B – суммарный объём вытяжки, мл; C – масса плодов, г; 10 – объём вытяжки, взятый для анализа, мл.

3.9. Колориметрическое определение аскорбиновой кислоты (по Г. Н. Чупахиной)

При количественном определении аскорбиновой кислоты в растениях широко распространенным методом титрования растительных вытяжек 2,6-дихлорфенолиндофенолом имеются некоторые трудности, связанные

32

с определением конца титрования. Синяя краска 2,6-дихлорфенолиндофе- нол восстанавливается в бесцветное соединение присутствующей в растительной вытяжке аскорбиновой кислотой (реакция Тильманса) таким образом, что на одну молекулу аскорбиновой кислоты приходится две молекулы краски. Избыток краски в кислой среде обусловливает розовое окрашивание вытяжки, однако полученное окрашивание раствора нестабильно, интенсивность его все время уменьшается до полного исчезновения, поэтому результат титрования во многом зависит от его времени.

Реактивы и материалы:

гидроксид натрия (C = 0,01 моль/л),

щелочной раствор 2,6-дихлорфенолиндофенола (C = 0,025%),

растительный материал,

ФЭК или спектрофотометр.

Подготовка материалов

0,025% щелочной раствор 2,6-дихлорфенолиндофенола. Для приго-

товления раствора краски берут 0,0625 г 2,6-дихлорфенолиндофенола, навеску переносят в мерную колбу на 250 мл, куда приливают 150–200 мл теплой дистиллированной воды и 600 мкл 0,01 н натриевой щелочи. Колбу встряхивают в течение 10–15 мин до полного растворения краски; после того как содержимое колбы примет комнатную температуру, раствор доводят до метки водой и взбалтывают.

Построение калибровочного графика

Для построения калибровочной кривой 10 мг аскорбиновой кислоты растворяют в 100 мл 2%-й соляной кислоты. Из данного раствора готовят разведения, содержащие 1, 2, 3 мкг и т. д. аскорбиновой кислоты в 1 мл.

К 10 мл каждой пробы добавляют по 1 мл свежеприготовленного 0,025%-го раствора 2,6-дихлорфенолиндофенола.

Как только к пробе прилита краска, включают секундомер. Растительную вытяжку с краской хорошо перемешивают, раствор заливают в кювету толщиной 10 мм. Кювету вставляют в держатель кювет колориметра, нулевую точку которого предварительно устанавливают по 2%-й соляной кислоте. Фотометрирование ведут при 530 нм (зеленый светофильтр). Параллельно колометрируют 10 мл 2%-й соляной кислоты с 1 мл краски (контроль).

Проведение анализа

Навеску измельчают ножницами из нержавеющей стали, так как следы тяжелых металлов способствуют окислению аскорбиновой кислоты. Измельченный материал заливают 10 мл 2%-й соляной кислоты и быстро растирают. Гомогенат количественно переносят в мерную колбу на 100 мл,

33

объем доводят до метки раствором 2%-й соляной кислоты, которая является одним из лучших стабилизаторов аскорбиновой кислоты в растворе, к тому же она осаждает белки. Содержание колбы встряхивают, центрифугируют (10 000 об/мин 10 мин). Из супернатанта берут три пробы по 10 мл. К каждой пробе добавляют по 1 мл свежеприготовленного 0,025%-го раствора 2,6-дихлорфенолиндофенола.

Как только к пробе прилита краска, включают секундомер. Растительную вытяжку с краской хорошо перемешивают, раствор заливают в кювету толщиной 10 мм. Кювету вставляют в держатель кювет колориметра, нулевая точка которого предварительно устанавливают по 2%-й соляной кислоте. Фотометрирование ведут при 530 нм (зеленый светофильтр). Параллельно колориметрируют 10 мл 2%-й соляной кислоты с 1 мл краски (контроль).

В том случае, когда вытяжка растений содержит значительное количество аскорбиновой кислоты (около 700 мкг на 1 г), при добавлении 1 мл краски к 10 мл вытяжки краска полностью обесцвечивается аскорбиновой кислотой. В этом случае вытяжку необходимо разбавить вдвое 2%-й соляной кислотой и учесть это при расчете содержания аскорбиновой кислоты.

Обработка результатов

Содержание аскорбиновой кислоты на 1 г исследуемого материала вычисляют по формуле

X =

a ·V

,

(3.5)

 

m

 

где X – количество аскорбиновой кислоты, мкг; – содержание аскорбиновой кислоты в 1 мл вытяжки, найденное по калибровочной кривой, мкг; V – объем экстракта, полученного из данной навески, мл; m – навеска исследуемого материала, г.

3.10. Спектрофотометрическое определение содержания аскорбиновой кислоты

Для определения содержания аскорбиновой кислоты в продуктах возможно использование метода спектрофотометрии в ультрафиолетовом диапазоне спектра без добавления красителей. Однако данный метод отличается большой погрешностью, поскольку при 265 нм поглощается не только аскорбиновая кислота, но и некоторые другие сопутствующие соединения.

Реактивы и материалы:

Na3PO4 (pH 7,3–7,4) (C = 0,21 моль/л),

растительный материал,

соляная кислота (C = 2%),

спектрофотометр с возможностью измерения в УФ-диапазоне спектра.

34

Подготовка материалов

0,21 М Na3PO4 (pH 7,3–7,4)

3,444 г Na3PO4 растворяют в 50 мл дистиллированной воды. Объём раствора доводят до 100 мл. Если рН отличается от указанной, доводят её соляной кислотой или натриевой щёлочью.

Проведение анализа

Навеску растительного материала 2 г (точный вес) гомогенизируют с 10 мл 2%-й соляной кислоты. Гомогенат переносят в мерную колбу на 50 мл.

Объем доводят до метки раствором 0,21 М Na3PO4. Экстракт центрифугируют 10 мин при 10 000 об/мин, экстинцию раствора измеряют на спектрофотометре при 265 нм против стандарта – раствора 0,21 М Na3PO4.

Обработка результатов

 

Результаты вычисляют по формуле

 

 

X =

A265нм ·V

,

(3.6)

1,65 ·104

 

 

где X – содержание аскорбиновой кислоты, мкМ; 1,655 · 104 – коэффициент молярной экстинкции аскорбиновой кислоты; A265нм – оптическая плотность, определённая на спектрофотометре при 265 нм.

Содержание аскорбиновой кислоты выражают в мкг на грамм сырого веса. Молярная масса аскорбиновой кислоты равна 176 г/моль.

3.11. Фотометрическое определение каротина

Сущность метода состоит в экстракции каротина петролейным эфиром или бензином и фотометрическом измерении интенсивности окраски экстракта, которая зависит от содержания каротина.

Реактивы и материалы:

исследуемый материал (морковь, тыква, апельсин, манго, мандарин),

калия дихромат,

натрий сернокислый безводный,

окись алюминия,

окись кальция,

песок,

петролейный эфир,

фотоэлектроколориметр.

35

Построение калибровочного графика

Готовят основной раствор дихромата калия. Для этого 0,720 г дихромата калия растворяют в дистиллированной воде в мерной колбе вместимостью 1000 мл, затем объем раствора доводят до метки дистиллированной водой и тщательно перемешивают. Оптическая плотность полученного раствора равна оптической плотности раствора каротина концентрации

0,00416 мг/мл.

В пять мерных колб вместимостью 100 мл из бюретки приливают каждый раз от нуля 10, 20, 30, 40, 50 мл основного раствора дихромата калия и доводят объем раствора до метки дистиллированной водой, тщательно перемешивают.

Измерение оптической плотности растворов сравнения проводят в кювете с толщиной поглощающего слоя 10 мм при длине волны 450 нм. Оптическую плотность растворов дихромата калия измеряют относительно дистиллированной воды.

Для построения калибровочного графика на горизонтальной оси наносят значения объемов основного раствора двухромовокислого калия, взятых для приготовления растворов сравнения, на вертикальной оси – соответствующую оптическую плотность растворов.

Проведение анализа

Берут навеску плодов 3 г. Массу записывают с точностью до третьего знака после запятой. Навеску переносят в фарфоровую ступку, добавляют 5 г очищенного и прокалённого песка, 15 г сернокислого натрия. Смесь тщательно растирают не менее 3–4 мин. Хорошо растертую навеску без потерь переносят в колбу, приливают 100 мл петролейного эфира. Добавляют в колбу 10 г окиси алюминия, 0,5 г окиси кальция, перемешивают стеклянной палочкой, плотно закрывают колбу пробкой. Плотно закрытую колбу термостатируют в течение 2 ч при температуре 35 °С.

После термостатирования осторожно, не перемешивая, отбирают прозрачный отстоявшийся раствор и переносят в кювету фотоэлектроколориметра. Проводят измерение при длине волны 450 нм в кювете с толщиной слоя 10 мм против петролейного эфира.

Обработка результатов

 

Массовую долю каротина , мг/кг, вычисляются по формуле

 

X =

V ·4,16 · f

,

(3.7)

 

m

 

где V – объем основного раствора двухромовокислого калия, найденный по графику, мл; 4,16 – коэффициент перевода основного раствора двухромовокислого калия в эквивалентное количество миллиграммов каротина; f – коэффициент разбавления экстракта каротина; m – масса навески, г.

СПИСОК РЕКОМЕНДУЕМОЙ ЛИТЕРАТУРЫ

1.ГОСТ 5475-69. Масла растительные. Методы определения йодного числа. М. : Изд-во стандартов, 1987. 6 с.

2.ГОСТ 26593-85. Масла растительные. Метод измерения перекисного числа. М. : Изд-во стандартов, 1987. 6 с.

3.ГОСТ 31933-2012. Масла растительные. Методы определения кислотного числа и кислотности. М. : Стандартинформ, 2019. 14 с.

4.Егорова, А. Ю. Химия синтетических и натуральных продуктов (экспериментальные и теоретические задачи): учеб.-метод. пособие / А. Ю. Егорова, О. А. Мажукина. Саратов : Издательский центр «Наука», 2014. 95 с.

5.Методические указания по выполнению внеаудиторной СРС по курсу «Пищевая химия» для бакалавров направления 552400 – Технология продуктов питания: учебное пособие / ВСГТУ ; сост. Т. Ф. Чиркина, О. В. Пестерева. УланУдэ : Издательство ВСГТУ, 2000. 54 с.

6. Нечаев,

А. П. Пищевая химия: учебник для вузов / А. П. Нечаев,

С. Е. Траубенберг, А.

А. Кочеткова [и др.] ; под ред. А. П. Нечаева. 5-е изд.

СПб. : ГИОРД,

2004.

640 c.

7.Руководство по методам контроля качества и безопасности биологически активных добавок к пище. М. : Федеральный центр госсанэпиднадзора Минздрава России, 2004. 240 с.

8.Святкина, Л. И. Идентификация и фальсификация пищевых продуктов: лабораторный практикум / Л. И. Святкина. Иркутск : ИГУ, 2011. 60 с.

9.Технологическая химия и физика молока и молочных продуктов: метод. указания к выполнению лабораторных работ / сост. Н. С. Безверхая, Т. Н. Садовая. Краснодар : КубГАУ, 2020. 41 с.

10.Физиологические и биохимические методы анализа растений: практикум / авт.-сост. Г. Н. Чупахина. Калининград : Изд-во Калинингр. гос. ун-та, 2000. 59 с.

ПРИЛОЖЕНИЯ

Приложение 1. Правила работы в химической лаборатории

1.Работать в лаборатории разрешается только в халатах.

2.Длинные волосы должны быть подобраны.

3.Все процедуры при выполнении работы можно проводить только на своем рабочем месте или в вытяжном шкафу.

4.При возникновении каких-либо неясностей работу прекратить и обратиться за разъяснением к преподавателю или лаборанту.

5.В процессе работы все флаконы с реактивами должны находиться на отведенных для них местах.

6.Необходимо соблюдать осторожность при работе с кислотами и щелочами.

7.Запрещается отмеривать реактивы путем всасывания ртом в пипетку.

8.Запрещается закрывать пальцем отверстия пробирок и колб при взбалтывании растворов.

9.При нагревании пробирки в пламени горелки следить, чтобы отверстие пробирки не было направлено на кого-либо из работающих. Во избежание выброса содержимого из пробирки нагрев производить постепенно, постоянно встряхивая ее и периодически вынимая из пламени. Во избежание ожогов и поражения от брызг и выбросов не следует наклоняться над сосудом, в который налита какая-либо жидкость.

10.Пролитый реактив немедленно удалить со стола.

11.При попадании на кожу кислоты или щелочи необходимо тотчас же пораженный участок обильно промыть водой, обработать нейтрализующими веществами: 2%-ным раствором бикарбоната натрия или 2%-ным раствором уксусной кислоты.

12.Запрещается принимать пищу в лаборатории.

13.Запрещается трогать и включать приборы без разрешения преподава-

теля.

14.После окончания работы показать преподавателю результаты эксперимента и, получив разрешение на окончание работы, привести в порядок свое рабочее место.

15.Использованную посуду освободить от содержимого, сполоснуть и сдать лаборанту.

38

Приложение 2. Правила работы на фотоэлектроколориметре

Фотоэлектроколориметр (ФЭК) предназначен для измерения экстинкции прозрачных окрашенных растворов (колориметрия), а также для измерения величины светорассеяния непрозрачных растворов и суспензий (нефелометрия). Каждый ФЭК снабжен набором светофильтров, позволяющих варьировать длину волны света, проходящего через раствор (в переделах видимой части спектра), а также комплектом стеклянных кювет с разным расстоянием между рабочими гранями для проведения измерения при разной толщине слоя раствора.

Общая схема прибора КФК-2 и обозначения: 1 – рукоятка установки светофильтра (около рукоятки маркировка по длине волны); 2 – ручка перемещения кювет в кюветном отделении; 3 – ручка включения чувствительности фотоприемников (обозначена цифрами 1, 2 и 3 черного цвета при работе в диапазоне волн от 315 до 540 нм и красного цвета – в диапазоне от 590 до 980 нм); 4 – микроамперметр (по верхней шкале измеряют коэффициент светопропускания (от 0 до 100%), а по нижней – оптическую плотность раствора (от 0 до 1,5); 5 – ручка «грубой» настройки микроамперметра; 6 – установка «точной» настройки микроамперметра;

7 – крышка кюветного отделения

I.Подготовка прибора к работе:

1)установить нужный светофильтр (рукояткой 1);

2)рукоятку 3 (чувствительность фотоэлемента) установить на цифру 1 соответствующего цвета: при работе в диапазоне волн от 315 до 540 нм чувствительность обозначена цифрами черного цвета и в диапазоне от 590 до 980 нм – красного;

3)проверить, выключен ли микроамперметр (рукоятки 5 и 6 должны быть повернуты до отказа влево);

4)прибор включить (вилку в сеть; тумблер, расположенный на задней стенке в нижнем левом углу, переключить в положение «вкл»). При этом загорается лампочка накаливания;

5)прибор прогреть в течение 15–20 мин.

39

II.Измерение оптической плотности раствора:

1)кювету с контролем или растворителем поставить в дальнее (от исследователя) гнездо кюветодержателя, кювету с исследуемым раствором (опытом) – в ближнее гнездо кюветодержателя;

2)кювету с контролем (или растворителем) поместить в световой поток поворотом ручки 2 до отказа влево;

3)закрыть крышку кюветного отделения (7);

4)установить стрелку микроамперметра на 0 по нижней шкале поворотом ручки 5 («грубой» настройки). В случае необходимости воспользоваться ручкой 6 («точной» настройки); Примечание. Если не удается вывести стрелку микроамперметра на 0, необ-

ходимо повысить чувствительность фотоэлемента. Для этого необходимо: а) микроамперметр выключить (рукоятки 5 и 6 до отказа влево); б) рукоятку переключения чувствительности фотоэлемента (3) поставить

на цифру 2 соответствующего цвета; в) вывести стрелку микроамперметра на 0 по нижней шкале (т. е. повто-

рить действия, указанные в пункте 4).

Если и в этом случае стрелка микроамперметра не выводится на 0, необходимо еще раз повысить чувствительность фотоэлемента, повторяя все действия, перечисленные в пунктах «а», «б» и «в», но установив рукоятку 3 на цифру 3 соответствующего цвета;

5)заменить в световом потоке кювету с контролем на кювету с исследуемым раствором (опытом), поворачивая рукоятку 2 до отказа вправо;

6)записать величину оптической плотности исследуемого раствора по нижней шкале микроамперметра;

7)микроамперметр выключить (рукоятки 5 и 6 до отказа влево).

III.Завершение работы на приборе:

1)реактивы из кювет вылить;

2)кюветы сполоснуть дистиллированной водой и поставить в чашку Петри вверх донышком (кюветы необходимо полоскать только после полного завершения работы или методики, в промежутках между отдельными измерениями этого делать не следует!);

3)прибор выключить (тумблер, расположенный на задней стенке в левом углу, переключить в положение «выкл.»; вилку вынуть из розетки);

4)крышку кюветного отделения закрыть.

40

Соседние файлы в предмете [НЕСОРТИРОВАННОЕ]