
- •ГЛАВА 1
- •ГЛАВА 2
- •МОРФОЛОГИЯ РАНЕВОГО ПРОЦЕССА
- •2.2.1 МОРФОЛОГИЯ ОГНЕСТРЕЛЬНОЙ РАНЫ
- •2.2.2. МОРФОЛОГИЯ ГНОЙНОЙ РАНЫ, ЗАКРЫТОЙ ШВАМИ
- •ГЛАВА 3
- •3. 1. МИКРОЦИРКУЛЯЦИЯ ПРИ РАНЕВОМ ПРОЦЕССЕ
- •3.2.1 КАЛЛИКРЕИН-КИНИНОВАЯ СИСТЕМА
- •3.2.2. БИОГЕННЫЕ АМИНЫ
- •3.2.3 СИСТЕМА КОМПЛЕМЕНТА
- •3.3. ОБМЕН ВЕЩЕСТВ И ЭНЕРГИИ В РАНЕ
- •3.3.2. ГЛИКОЗАМИНОГЛИКАНЫ (МУКОПОЛИСАХАРИДЫ)
- •ГЛАВА 4
- •СИСТЕМА ГЕМОСТАЗА ПРИ РАНЕВОЙ ИНФЕКЦИИ
- •4.1. РОЛЬ ОБЩИХ И МЕСТНЫХ ФАКТОРОВ ГЕМОСТАЗА ПРИ РАНЕВОМ ПРОЦЕССЕ
- •4.2. ЛОКАЛЬНАЯ ГНОЙНАЯ ИНФЕКЦИЯ И СИСТЕМА ГЕМОКОАГУЛЯЦИИ
- •4.3. ХИРУРГИЧЕСКИЙ СЕПСИС И СИСТЕМА ГЕМОКОАГУЛЯЦИИ
- •ГЛАВА 5
- •5.1. МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЕ АСПЕКТЫ РАНЕВОЙ ИНФЕКЦИИ
- •5.2.3. СЛУЧАЙНЫЕ РАНЫ
- •5.3. ХАРАКТЕРИСТИКА ОСНОВНЫХ ВОЗБУДИТЕЛЕЙ РАНЕВОЙ ИНФЕКЦИИ
- •5.4. КОМПЛЕКСНОЕ БАКТЕРИОЛОГИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ БИОПТАТОВ ГНОЙНЫХ РАН
- •5.4.1. БАКТЕРИОЛОГИЧЕСКИЙ КОНТРОЛЬ МИКРОФЛОРЫ ПРИ ХИРУРГИЧЕСКОЙ ОБРАБОТКЕ ГНОЙНЫХ РАН
- •ГЛАВА 6
- •6.2.2. ОПСОНИЗАЦИЯ
- •6.2.3. ФАГОЦИТОЗ
- •6.2.4. ФУНКЦИЯ ЛИМФОЦИТОВ
- •6.2.5. СЫВОРОТОЧНЫЕ ФАКТОРЫ
- •ГЛАВА 7
- •КЛИНИКА РАНЕВОГО ПРОЦЕССА
- •7.1. КЛАССИФИКАЦИЯ РАН
- •7.2. КЛАССИФИКАЦИЯ РАНЕВОГО ПРОЦЕССА
- •7.4. ОБЪЕКТИВНЫЕ КРИТЕРИИ ОЦЕНКИ ТЕЧЕНИЯ РАНЕВОГО ПРОЦЕССА
- •7.4.1. КЛИНИЧЕСКАЯ КАРТИНА
- •7.4.2. СКОРОСТЬ ЗАЖИВЛЕНИЯ РАНЫ
- •7.4.3. БАКТЕРИОЛОГИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ
- •7.4.5. МЕСТНАЯ ГЕМОСТАТИЧЕСКАЯ РЕАКЦИЯ
- •7.4.6. БИОХИМИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ РАНЕВОГО ЭКССУДАТА
- •7.4.7. ИССЛЕДОВАНИЕ ЭЛЕКТРОПОТЕНЦИАЛОВ ОБЛАСТИ РАНЫ
- •7.4.8. ИНФРАКРАСНАЯ ТЕРМОГРАФИЯ РАНЫ
- •7.4.9. СОСТОЯНИЕ МИКРОЦИРКУЛЯЦИИ
- •7.4.10. КРИТЕРИИ ЖИЗНЕСПОСОБНОСТИ ТКАНЕЙ РАНЫ
- •7.4.11. СИЛА НАТЯЖЕНИЯ РАНЫ
- •7.4.12. НАПРЯЖЕНИЕ РЕСПИРАТОРНЫХ ГАЗОВ В ОБЛАСТИ РАНЫ
- •7.4.14. ФЕРМЕНТАТИВНЫЕ ИЗМЕНЕНИЯ
- •7.5. ЗАЖИВЛЕНИЕ РАНЫ ПЕРВИЧНЫМ НАТЯЖЕНИЕМ
- •7.5.1. КЛИНИЧЕСКАЯ КАРТИНА
- •7.6. ЗАЖИВЛЕНИЕ ГНОЙНОЙ РАНЫ, ЗАКРЫТОЙ ШВАМИ
- •7.6.1. КЛИНИЧЕСКАЯ КАРТИНА
- •7.6.2. ОБЪЕКТИВНЫЕ КРИТЕРИИ ОЦЕНКИ ТЕЧЕНИЯ РАНЕВОГО ПРОЦЕССА
- •7.7 ЗАЖИВЛЕНИЕ РАНЫ ВТОРИЧНЫМ НАТЯЖЕНИЕМ
- •7.7.1. КЛИНИЧЕСКАЯ КАРТИНА
- •7.7.2. ОБЪЕКТИВНЫЕ КРИТЕРИИ ОЦЕНКИ ТЕЧЕНИЯ РАНЕВОГО ПРОЦЕССА
- •ГЛАВА 8
- •МЕСТНОЕ ЛЕЧЕНИЕ ГНОЙНЫХ РАН
- •8.1. ХИРУРГИЧЕСКОЕ ЛЕЧЕНИЕ
- •8.1.1. ХИРУРГИЧЕСКАЯ ОБРАБОТКА ГНОЙНОЙ РАНЫ
- •8.1.1.1. Терминология и основные понятия
- •8.1.1.3. Предоперационная подготовка и обезболивание
- •8.1.1.4. Техника хирургической обработки гнойного очага
- •8.1.2.3. Обработка гнойной раны лучами лазера
- •8.1.2.4. Обработка гнойной раны ультразвуком
- •8.1.4. ЗАКРЫТИЕ ГНОЙНОЙ РАНЫ
- •8.1.4.1. Наложение швов на гнойную рану
- •8.1.4.2. Кожная пластика гнойной раны
- •8.2. МЕСТНАЯ ЛЕКАРСТВЕННАЯ ТЕРАПИЯ
- •8.2.1. ПРЕПАРАТЫ ДЛЯ ЛЕЧЕНИЯ ГНОЙНОЙ РАНЫ В I ФАЗЕ РАНЕВОГО ПРОЦЕССА
- •8.2.1.1. Антимикробные препараты
- •8.2.1.2. Некролитические препараты
- •8.2.2. ПРЕПАРАТЫ ДЛЯ ЛЕЧЕНИЯ ГНОЙНОЙ РАНЫ ВО II ФАЗЕ РАНЕВОГО ПРОЦЕССА
- •ОБЩЕЕ ЛЕЧЕНИЕ РАНЕВОЙ ИНФЕКЦИИ
- •9.1 ХИМИОТЕРАПИЯ РАНЕВОЙ ИНФЕКЦИИ
- •9.1.2. ВЫБОР АНТИБИОТИКА
- •9.1.3. КРИТЕРИИ ОЦЕНКИ ЭФФЕКТИВНОСТИ ЛЕЧЕНИЯ
- •9.1.4. ОСЛОЖНЕНИЯ АНТИБАКТЕРИАЛЬНОЙ ТЕРАПИИ
- •9.2. ИММУНОТЕРАПИЯ РАНЕВОЙ ИНФЕКЦИИ
- •9.2.1. ОБЩИЕ ПРИНЦИПЫ ИММУНОТЕРАПИИ ГНОЙНОЙ ХИРУРГИЧЕСКОЙ ИНФЕКЦИИ
- •9.2.3. ИММУНОКОРРЕКЦИЯ КЛЕТОЧНЫМИ ПРЕПАРАТАМИ КРОВИ
- •9.2.4. АКТИВНАЯ ИММУНИЗАЦИЯ
- •9.2.5. ИММУНОМОДУЛЯЦИЯ
- •9.3.2. ПРИМЕНЕНИЕ ИНГИБИТОРОВ ПРОТЕАЗ
- •9.3.4. ПРИМЕНЕНИЕ ГЕМОСТАТИЧЕСКИХ ПРЕПАРАТОВ
- •10.1. ИСТОРИЯ ВОПРОСА
- •10.2. МЕТОДИКА ЛЕЧЕНИЯ
- •10.4. ЛЕЧЕНИЕ РАН РАЗЛИЧНОЙ ЭТИОЛОГИИ
- •10.4.1. ОБШИРНЫЕ ГНОЙНЫЕ РАНЫ
- •10.4.2. ЛОКАЛЬНЫЕ ОЖОГИ
- •10.4.7. РОЖИСТОЕ ВОСПАЛЕНИЕ
- •10.5. РЕЗУЛЬТАТЫ ЛЕЧЕНИЯ
- •ГЛАВА 11
- •ОСОБЫЕ ВИДЫ РАНЕВОЙ ИНФЕКЦИИ
- •11.1. КЛОСТРИДИАЛЬНАЯ РАНЕВАЯ ИНФЕКЦИЯ
- •11.2. АНАЭРОБНАЯ НЕКЛОСТРИДИАЛЬНАЯ ИНФЕКЦИЯ
- •11.4. СТОЛБНЯК
- •11.5. РОЖА
- •11.6. АКТИНОМИКОЗ
- •11.7. СИБИРСКАЯ ЯЗВА
- •11.8. ДИФТЕРИЯ РАН
- •11.9. СИФИЛИС РАН
- •11.10. ТУБЕРКУЛЕЗ РАН
- •ГЛАВА 12
- •12.2.1. ВОЗБУДИТЕЛИ
- •12.3. МОРФОЛОГИЯ
- •12.5. ОСЛОЖНЕНИЯ СЕПСИСА
- •12.6. ЛЕЧЕНИЕ
- •12.6.1. АКТИВНОЕ ХИРУРГИЧЕСКОЕ ЛЕЧЕНИЕ ГНОЙНЫХ ОЧАГОВ
- •12.7. ИНТЕНСИВНАЯ ТЕРАПИЯ БОЛЬНЫХ С ТЯЖЕЛОЙ ГНОЙНОЙ ИНФЕКЦИЕЙ
- •12.7.1. ОБЩИЕ ПРИНЦИПЫ
- •12.7.2. ПРЕДОПЕРАЦИОННАЯ ПОДГОТОВКА И ХИРУРГИЧЕСКОЕ ЛЕЧЕНИЕ
- •12.7.3.3. Детоксикация при тяжелой гнойной инфекции
- •12.7.3.5. Коррекция нарушений системы гемокоагуляции
- •12.7.3.6. Коррекция функций жизненно важных органов
- •12.7.5. ЛЕТАЛЬНОСТЬ ПРИ СЕПСИСЕ
- •ГЛАВА 13
- •ИЗМЕНЕНИЯ НЕРВНОЙ СИСТЕМЫ ПРИ ТЯЖЕЛОЙ РАНЕВОЙ ИНФЕКЦИИ
- •14.1. ОСОБЕННОСТИ ТЕЧЕНИЯ ГНОЙНОЙ ХИРУРГИЧЕСКОЙ ИНФЕКЦИИ
- •14.2. НАРУШЕНИЯ ОБМЕНА
- •14.3. АКТИВНОЕ ХИРУРГИЧЕСКОЕ ЛЕЧЕНИЕ
- •14.4. КОМПЛЕКСНАЯ ТЕРАПИЯ
- •ГЛАВА 15
- •ОБЩИЕ ПРИНЦИПЫ АКТИВНОГО ХИРУРГИЧЕСКОГО ЛЕЧЕНИЯ ГНОЙНЫХ РАН И ГНОЙНЫХ ХИРУРГИЧЕСКИХ ЗАБОЛЕВАНИЙ
палочка. Почти в 50% наблюдений раневая микрофлора была представлена в виде ассоциаций, среди которых преобладали ассоциации стафилококков с различной грамотрицательной микрофлорой. Среди монокультур превалировали стафилококки, хотя грамотрицательные микробы выделялись более чем в 20% случаев.
5.3. ХАРАКТЕРИСТИКА ОСНОВНЫХ ВОЗБУДИТЕЛЕЙ РАНЕВОЙ ИНФЕКЦИИ
Поскольку в настоящее время стафилококки и грамотрицательные бактерии являются основными возбудителями раневой инфекции, представлялось необходимым охарактеризовать их по основным биологическим критериям патогенности in vitro, изучить их типовую принадлежность и чувствительность к антибактериальным препаратам различного спектра действия.
Выделенные из гнойных ран больных 410 культур стафилококков были оценены по способности коагулировать цитратную плазму кролика (реакция плазмокоагуляции), синтезировать ДНК-азу и образовывать токсины. Помимо этого, изучали пигментообразование, способность ферментировать углеводы (маннит в анаэробных условиях), а также гемолитическую и лецитиназную (в отношении яичного желтка) активность. Выделенные культуры стафилококков типировали международным набором стафилококковых бактериофагов; выпускаемых Научно-исследовательским институтом эпидемиологии и микробиологии им. Н. Ф. Гамалея АМН СССР.
Анализ полученных материалов показал, что по таким основным тестам, как плазмокоагулирующая, ферментативная и ДНК-азная активность, от 75,6 до 87,5% изученных стафилококков следует рассматривать как потенциально патогенные, относящиеся к виду Staph. aureus. Эти данные позволяют считать большинство выделенных из гнойных ран стафилококков
возможными возбудителями как местных, так и генерализованных инфекционных осложнений у больных с различными по генезу гнойными ранами.
При сравнительном изучении типируемых культур стафилококков установлено преобладание культур, относящихся к III (31,6%) и смешанным (37,7%) фагогруппам. Среди последних преобладали культуры, лизировавшиеся фагами I + III и II ——( III фагогрупп. Фагами I группы лизировалось 24,2%, а фагами II группы — только 6,5% культур. Стафилококки, относившиеся к III группе, наиболее часто лизировались фагами 47 и 85 в сочетании с другими фагами этой группы. Среди стафилококков I группы преобладали культуры, лизировавшиеся фагом 80, часто в сочетании с другими фагами этой группы. Таким образом, результаты фаготипирования свидетельствуют о преобладании стафилококков III, I и смешанных (III ——( I и III+II) фагогрупп в ранах больных, леченных в отделении института закрытым повязочным методом. Следовательно, с эпидемиологических позиций штаммы этих фагогрупп следует рассматривать как эндемичные, характерные для данного стационара.
Определение чувствительности к различным по механизму и спектру действия антибактериальным препаратам методом дисков проведено более чем на 1000 культурах стафилококков (табл. 5.3). Следует отметить, что нами учитывались и культуры стафилококков с так называемой слабой чувствительностью. Эти культуры вошли в группу чувствительных к тем антибактериальным препаратам, лечебные дозы которых могут быть повышены во время лечения (например, группа пенициллинов, в том числе полусинтетические производные, группа цефалоспоринов).
При анализе обращает на себя внимание прежде всего тот факт, что даже при такой системе учета к антибиотикам первого поколения в настоящее время чувствительность резко снижена. К таким препаратам, как бензил-
Чувствительность культур стафилококков в зависимости от характера |
|
Таблица 5.3 |
||||||||
гнойного процесса |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
процент чувствительных |
культур |
|
Процент чувствительных культур |
||||||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
происхождение ран |
|
|
происхождение ран |
|||||
|
всего |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
Антибактериаль- |
|
раны |
|
Антибактериаль- |
всего |
|
раны |
|
||
{раны |
пост- |
после |
раны у |
(раны |
пост- |
после |
раны у |
|||
ный препарат |
ный препарат |
|||||||||
различ- |
трав |
острых |
боль- |
различ- |
трав |
острых |
боль- |
|||
|
|
|||||||||
|
ного |
мати- |
гной- |
ных |
|
ного |
мати- |
гной- |
ных |
|
|
генеза) |
ческие |
ных за- |
сепси- |
|
генеза) |
ческие |
ных за- |
сепси- |
|
|
|
раны |
болева- |
сом |
|
|
раны |
болева- |
сом |
|
|
|
|
ний |
|
|
|
|
ний |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
Бензилпеницил- |
22,5 |
29,4 |
24,8 |
9,9 |
Тетрациклин |
36,4 |
37,7 |
40,4 |
20,2 |
|
лин |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
Оксациллин |
81,6 |
84,0 |
82,6 |
70,5 |
Стрептомицин |
39,3 |
36,4 |
45,4 |
21,3 |
|
Ампициллин |
46,8 |
38,1 |
52,0 |
24,0 |
Канамицин |
62,7 |
54,1 |
67,8 |
66,4 |
|
Карбенициллин |
67,5 |
63,3 |
77,4 |
54,5 |
Гентамицин |
90,1 |
88,1 |
90,4 |
89,6 |
|
Ценорин (цефа- |
85,8 |
89,6 |
84,2 |
76,2 |
Келфизин (суль- |
43,3 |
43,2 |
37,8 |
31,8 |
|
лоридин) |
|
|
|
|
фален) |
|
|
|
|
|
Эритромицин |
59,4 |
57,5 |
65,6 |
49,4 |
Ортосульфин |
44,5 |
53,2 |
46,2 |
29,5 |
|
Олеандомицин |
51,1 |
52,1 |
36,0 |
42,7 |
Фурагин |
75,7 |
55,5 |
81,3 |
74,9 |
|
Ристомицин |
69,8 |
71,9 |
70,1 |
67,4 |
Диоксидин |
75,6 |
82,8 |
76,1 |
66,6 |
|
Левомицетин |
37,3 |
37,3 |
42,0 |
20,7 |
|
|
|
|
|
пенициллин, стрептомицин, тетрациклин проявляло чувствительность всего 20—40% изученных культур. К полусинтетическим пенициллинам широкого спектра действия (ампициллин, карбенициллин) оказались чувствительными 45—65% культур, в то время как к полусинтетическому противостафилококковому пенициллину (оксациллину) проявляло чувствительность примерно столько же культур, сколько и к цепорину (соответственно 81,6 и 85,8%). К препаратам группы противостафилококковых антибиотиков, или антибиотиков резерва (эритромицин, олеандомицин, ристомицин) чувствительность проявляло 50—70% изученных культур. Из антибиотиков группы аминогликозидов наибольшее число культур (90,1%) обладало чувствительностью к гентамицину, а к другим препаратам этой группы чувствительность была на уровне 60—80%.
Эти материалы получили дальнейшее подтверждение и подверглись детализации при изучении чувствительности стафилококков с помощью метода серийных разведений в жидкой питательной среде. Выявлено большое количество культур стафилококков, устойчивых к «старым» антибиотикам, широ-
ко применяемым в клинике: к бензилпенициллину — 80 %, тетрациклину — 77%, левомицетину — 64%, эритромицину — 62% и стрептомицину — 54%.
Отмечались высокие уровни резистентности к этим препаратам. Так, для тетрациклина, левомицетина, стрептомицина и эритромицина минимальная подавляющая концентрация (МПК) для большинства культур составляла 50—800 мкг/мл, а для бензилпенициллина — 25—800 мкг/мл. Штаммы, устойчивые к полусинтетическому пенициллину — ампициллину, составляли 59%, а к пенициллиназоустойчивому полусинтетическому пенициллину — метициллину — 29%. Все изученные культуры стафилококков были чувствительны к фузидину и рифампицину; МПК этих антибиотиков составляла 0,005—1,6 мкг/мл.
Установлена разная степень чувствительности культур стафилококков к двум аминогликозидам — канамицину и гентамицину. В то время как к канамицину оказались устойчивыми 42% культур стафилококков, культур, устойчивых к гентамицину, не обнаружено, а МПК гентамицина для изученных культур стафилококков составляла 0,005—1,6 мкг/мл.
С учетом высокой частоты выделения синегнойной палочки из гнойных ран свыше 400 выделенных ее культур было изучено in vitro с использованием биологических критериев патогенности. Оказалось, что от 50 до 80% из них обладали биохимической активностью (по различным тестам), что позволяет рассматривать их как потенциальных возбудителей раневой инфекции.
Иммунотипирование выделенных культур синегнойной палочки с помощью сывороток по Фишеру к 7 иммунотипам показало, что в отделении ран и раневой инфекции Института хирургии им. А. В. Вишневского преобладают иммунотипы 6,7 и 2, на долю которых приходится почти 80% типируемых культур. Эти штаммы являются эндемичными для данного стационара.
Проведенное методом дисков определение чувствительности более чем 400 клинических штаммов синегнойной палочки (табл. 5.4) показало, что
эти культуры проявляют высокую устойчивость к «старым» антибиотикам, в том числе к «старым» аминогликозидам (к канамицину было чувствительно всего 44,4%, к стрептомицину— 29,2% изученных культур). По нашим данным, культуры синегнойной палочки были высокочувствительны лишь к современным аминогликозидам: к гентамицину — 82,6%, к сизомицину и тобрамицину — около 90% культур. Хорошая чувствительность культур синегнойной палочки выявлена в отношении карбенициллина (около 70% культур), полимиксина (75%) и диоксидина (около 60%).
Учитывая, что современная антибактериальная терапия должна в первую очередь основываться на принципе этиотропности и достоверном знании чувствительности возбудителя к антибактериальным препаратам, а также то, что удельный вес грамотрицательной инфекции возрастает,
Чувствительность культур |
Ps. aeruginosa, выделенных из гнойных ран, к |
Таблица ЬЛ |
|
антибактериальным препаратам |
|
|
|
Антибактериальный пре- |
Процент чувствитель- |
Антибактериальный пре- |
Процент чувствитель- |
парат |
ных культур |
парат |
ных культур |
Бензилпенициллин |
0 |
Стрептомицин |
29,"4 |
Ампициллин |
6,2 |
Капам и ни II |
44,4 |
Карбенициллин |
69,2 |
Гентамицин |
82,6 |
Эритромицин |
11,1 |
Тобрамицин |
85,6 |
Олеандомицин |
5,5 |
Сизомицин |
88,6 |
Рифампицин |
15,6 |
Полимиксин |
75,0 |
Левомицетин |
ПД |
Диоксидин |
57,8 |
Тетрациклин |
24,4 |
|
|
целесообразно охарактеризовать чувствительность к антибактериальным препаратам и других грамотрицательных бактерий — возбудителей раневой инфекции.
При определении чувствительности к антибиотикам культур бактерий рода Proteus обнаружено, что наибольшей антибактериальной активностью обладают современные аминогликозиды — гентамицин, сизомицин, тобрамицин; количество устойчивых культур составило соответственно 4,2%, 2% и 6,1%. К аминогликозидам
первого поколения — стрептомицину и канамицину — было устойчиво соответственно 72% и 61% культур рода Proteus. По отношению к полу син-
тетическим |
|
пенициллинам |
частота |
устойчивых |
к |
ампициллину |
штаммов |
достигала |
54%, а к карбеницил- |
||
лину — 26%. |
Аналогичная |
картина |
наблюдалась и в отношении культур кишечной палочки, выделенных из гнойных ран. Отмечался высокий процент устойчивых культур к «старым» антибиотикам — стрептомицину (62%) и канамицину (56%) и высокая чувст-