Раздел 1

Общая эпизоотология

Личная профилактика ветеринарных специалистов при противоэпизоотических мероприятиях и работе с заразным материалом

Цель занятия: пройти первичный инструктаж о мерах личной профилактики при работе с больными животными и заразным материалом, правилах техники безопасности на кафедре эпизоотологии во время занятий; ознакомиться с учеб­ными пособиями по курсу эпизоотологии и дополнительной литературой.

Материалы и оборудование: спецодежда и обувь (халаты, бахилы, нарукавники, костюмы, перчатки), средства индивидуальной защиты (очки, респираторы).

Место проведения занятия: аудитория кафедры эпизоотологии.

МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ

Наибольшую опасность для животноводства представляют ин­фекционные болезни, которые в отличие от неинфекционных па­тологий характеризуются следующими особенностями:

вызываются определенными видами возбудителей;

имеют тенденцию к широкому распространению;

зараженный организм сам становится источником инфекции;

В инфицированном организме происходит иммунная перестройка. Существует целый ряд инфекционных болезней, общих для животных и человека и получивших название зооантропонозов.

Инфекционные болезни протекают циклично, при этом можно выделить несколько ста­дий, или периодов:

а) инкубационный;

б) продромальный;

в) про­явления основных клинических признаков болезни;

г) угасания;

д) восстановления нарушенных функций организма;

Наиболее опасные зооантропонозы

Бактериальные	Сибирская язва Туберкулез Бруцеллез Лептоспироз Сап Сальмонеллезы Туляремия Ку-лихорадка Рожа (эризипелоид) Ерсиниоз Листериоз Ботулизм
Вирусные	Бешенство Болезнь Ауески Псевдочума птиц
Грибные	Трихофития Микроспория
Паразитарные	Трихинеллез Цистицеркоз Эхинококкоз Альвеококкоз Фасциолез

Человек может заразиться зооантропонозами:

• при клиническом осмотре животных и оказании им лечебной помощи;

• во время диагностических исследований и обработок (напри­мер, прививок);

• при вскрытии трупов и взятии патологического материала для лабораторного анализа;

• работе с патологическим материалом в лабораториях;

• соприкосновении с необезвреженным сырьем животного про­исхождения, переработке мясных и молочных продуктов;

• употреблении в пищу инфицированных продуктов животного происхождения.

Пути заражения могут быть различными: существует конъюнктивальный путь — через слизистые оболочки глаз, алиментарный — через пищеварительный тракт, аэрогенный — через органы дыхания, трансмиссивный, когда инфекцию переносят разнооб­разные насекомые, например клещи, в организме которых возбу­дитель может долго сохраняться (сибирская язва, туляремия, кле­щевой энцефалит и др.), через поврежденную кожу и др.

Правила личной профилактики ветеринарных специалистов. Что­бы избежать заражения инфекционными болезнями, ветеринар­ные специалисты используют при работе средства личной профи­лактики: халаты, колпаки, косынки, нарукавники, фартуки, рези­новые перчатки, маски, защитные очки, противогазы, резиновые сапоги и др. По окончании работы сотрудники снимают спецодеж­ду и обувь, подвергают их санитарной обработке и хранят в специ­альных индивидуальных шкафах. Выход из производственного помещения в спецодежде и обуви (на обед или после окончания работы) категорически запрещен.

Зооантропонозами чаще всего заболевают люди, постоянно контактирующие с животными или участвующие в переработке сырья животного происхождения. Ветеринарный специалист за­ражается, как правило, в тех случаях, когда пренебрегает правила­ми работы с инфекционно-больными животными или патологи­ческим материалом.

Следует помнить, что ветеринарный врач так­же несет ответственность за охрану здоровья всех лиц, обслужива­ющих инфекционно-больных животных.

Обслуживающий персонал может сам служить разносчиком возбудителей инфекций, поэтому при обследовании животных, взятии крови, прививках и др. необходимо использовать только стерильные инструменты, обязательно дезинфицировать руки после процедур с каждым животным и, приступая к обработкам здоровых животных, менять спецодежду и обувь.

Кроме того, при контакте с больными или подозреваемыми в заражении животными категорически воспрещается курить и при­нимать пищу.

Каждый ветеринарный специалист обязан всегда помнить и строго выполнять правила личной профилактики и требовать того же от всего подчиненного ему персонала.

Правила обращения с инфекционно-больными животными. При обследовании больных или подозрительных по заболеванию жи­вотных необходима чрезвычайная осторожность. Прежде чем при­ступить к подробному исследованию, собирают по возможности полный анамнез, необходимы также предварительное наблюдение и беглый клинический осмотр.

Следует соблюдать осторожность и при оказании лечебной по­мощи больным животным (например, бруцеллезом можно зара­зиться при отделении последа или родовспоможениях). Место ра­боты с больными животными обязательно дезинфицируют.

Больных и подозрительных по заболеванию животных надежно изолируют от остального поголовья в специальном здании — изо­ляторе, который должен находиться на расстоянии не менее 200 м от жилых и животноводческих помещений. Обслуживание боль­ного поголовья поручают персоналу, не соприкасающемуся с дру­гими животными. Выделенных сотрудников обеспечивают спец­одеждой и обувью, тщательно инструктируют; их спецодежду пе­риодически обеззараживают и хранят в изоляторе в специальных шкафах.

Уборку навоза, доставку корма, подстилки и воды организуют таким образом, чтобы не допустить распространения инфекцион­ной болезни. Для дезинфекции обуви у дверей изолятора оборуду­ют дезбарьеры. Больных животных содержат в индивидуальных денниках. При поражении животных одной болезнью допустима групповая изоляция.

Исключительно важно обеззараживать сточные воды и навоз, накапливающиеся в изоляторах. Для обеззараживания сточных вод используют хлорную известь, навоза — средства, предусмот­ренные соответствующей инструкцией.

ЗАДАНИЯ ДЛЯ САМОСТОЯТЕЛЬНОЙ РАБОТЫ

1. Перечислить наиболее опасные зооантропонозы, пути зара­жения ими человека.

2. Изучить устройство и принцип работы автоклава.

Занятие 2.

Методы диагностики инфекционных болезней животных

Цель занятия: освоить комплексный метод диагностики инфекционных болез­ней, изучить правила клинического исследования животных с целью выявления больных инфекционными болезнями и ведение клинической документации.

Материалы и оборудование: таблица комплексного метода диагностики инфек­ционных болезней, 5...10 животных разных видов, инструменты и оборудование для клинического исследования животных, бланки специальных исследований.

Место проведения занятия: клиника ветеринарного учебного заведения или хо­зяйство, неблагополучное по инфекционным болезням скота.

МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ

При подозрении на инфекционную болезнь в хозяйстве основ­ная задача врача-эпизоотолога — своевременно установить диаг­ноз, используя комплексный метод диагностики.

Комплексный метод диагностики инфекционных болезней

Эпизоотологический Клинический Патоморфологический: патологоанатомический гистологический Бактериологический: микроскопия (световая, люминесцентная) выделение возбудителя биопроба Вирусологический: микроскопия (люминесцентная, световая, электронная) выделение вируса биопроба Гематологический Иммунологический: аллергическая проба (внутрикожная, глазная, подкожная) серологический (РА,РГА, РНГА, РТГА, РТНГА, ККРА, ККРНГА, РСК, РДСК, РИФ, РЗГАд, РНГАд, РП,РДП,РН, ' РИД,РБП, РИА, . ИФА, РФ, РИЭОФ,КР с молоком, РБП)

Примечание. Для каждой болезни существует перечень показателей, по которым диагноз считают установленным.

Благодаря правильному и своевременному диагнозу удается обеспечить эффективность оздоровительных мероприятий, т.е. быстро купировать возникший эпизоотический очаг и предупре­дить дальнейшее распространение болезни.

Эпизоотологический метод. Представляет собой систему изуче­ния проявлений эпизоотического процесса. Для характеристики последнего необходимо собрать точную информацию о восприим­чивых видах, источнике и резервуаре возбудителя болезни, меха­низме его передачи, воротах инфекции, интенсивности проявле­ния эпизоотического процесса, сезонности, предрасполагающих факторах, заболеваемости, смертности, летальности. Кроме того, особое внимание обращают на факторы, определяющие пути дальнейшего распространения заболевания — выполнение противоэпизоотических мероприятий и условия внешней среды.

Чтобы охарактеризовать эпизоотическое состояние хозяйства, сопоставляют и оценивают обобщенные эпизоотологические по­казатели, получаемые путем статистической обработки данных первичного учета заболеваний и профилактических мероприятий.

Клинический метод. При клиническом исследовании животных, подозреваемых в заболевании инфекционной болезнью, необхо­димо всегда строго соблюдать правила работы, предусмотренные соответствующей инструкцией.

Клиническое исследование рекомендуют начинать с измерения температуры тела животного. Далее осматривают животное в нефиксированном состоянии: обращают внимание на положение тела реакцию на различные раздражители, прием корма и воды, ха­рактер фекалий, особенности дефекации и мочеиспускания. Затем приступают к исследованию отдельных систем и органов по схеме, общепринятой в клинической диагностике болезней. Клинические признаки инфекционной болезни зависят от многих факторов: вида и локализации возбудителя, течения, фор­мы проявления и стадии болезни, резистентности организма и других причин. Во всех случаях клинические признаки одной и той же инфекционной болезни у животных даже одного вида сильно варьируют.

Патоморфологический метод. Включает в себя патологоанато­мический и гистологический методы исследований. Патологоана­томический метод считают важным, но не всегда окончательным методом диагностики. Например, если при вскрытии трупа жи­вотного (птицы) отмечают характерные изменения — туберкулы, то сразу же диагностируют туберкулез, при обнаружении в селе­зенке свиньи краевых геморрагических инфарктов — чуму, крово­излияний на границе мышечного и железистого желудка у кур — болезнь Ньюкасла и т. д.

Порядок патологоанатомического исследования: оценивают состояние трупа, кожи и слизистых оболочек, затем исследуют лимфатическую систему, серозные покровы, мышцы и суставы, органы дыхания, сердце и кровеносные сосуды, печень, селезен­ку, почки, глотку, пищевод, желудок, тонкий кишечник, толстый кишечник, мочевой пузырь, органы воспроизводства, головной и спинной мозг.

Однако во многих случаях наряду с патологоанатомическим применяют и метод лабораторных исследований (гистологичес­ких, бактериологических и др.). С помощью гистологического ме­тода устанавливают точный диагноз при таких болезнях, как- бе­шенство (тельца Бабеша—Негри), ринопневмония (внутриядер­ные включения типа Коудри), оспа (тельца-включения).

Бактериологический метод. Это ценный метод диагностики ин­фекционных болезней. Для бактериологического исследования от больных или павших животных необходимо правильно взять па­тологический материал и грамотно оформить сопроводительный документ. Поступивший биоматериал обрабатывают в зависимос­ти от предполагаемой болезни, делают мазки-отпечатки, красят их соответствующими методами, выделяют чистую культуру посевом на питательные (элективные) среды, заражают чувствительных ла­бораторных животных биоматериалом или выделенной чистой культурой.

Бактериологический метод диагностики некоторых инфекционных болезней

На основании обнаружения патогенных микроорганизмов в поступившем материале устанавливают этиологический диагноз.

Вирусологический метод. Для вирусологического исследования в лабораторию направляют патологический материал от больных животных, взятый в период проявления у них клинических при­знаков (температурная реакция, угнетение, воспалительные про­цессы в верхних дыхательных путях, сопровождающиеся серозны­ми или слизистыми истечениями из носовой полости, диарея, об­разование везикул, афт, иногда аборты), или вынужденно убитых (павших) животных, взятый не позднее чем через 2 ч после их ги­бели. Вирусологический метод диагностики включает в себя: об­наружение возбудителя в патологическом материале различными методами (электронная, люминесцентная или световая микроско­пия, заражение культуры клеток, лабораторных животных и т. д.), выделение и идентификацию вируса в различных серологических реакциях, биопробу.

Гематологический метод. В лабораторию для гематологического исследования отправляют кровь, которую берут с соблюдением правил асептики из яремной вены в пробирки с антикоагулянтом— 10 %-м раствором трилона Б, гепарина, цитрата натрия из расчета 0,02 мл раствора на 1 мл крови.

Гематологический метод используют как вспомогательный, а при некоторых инфекционных болезнях (лейкоз крупного рогато­го скота, инфекционная анемия лошадей) — в качестве основного метода диагностики.

Иммунологический метод. Включает в себя серологическую диаг­ностику — в лаборатории исследуют сыворотки крови для обнару­жения антител и аллергическую пробу, с помощью которой в хозяй­ствах выявляют животных, больных туберкулезом, паратуберкулезом, бруцеллезом, сапом, реже — сибирской язвой, листериозом, туляремией.

ЗАДАНИЯ ДЛЯ САМОСТОЯТЕЛЬНОЙ РАБОТЫ

1. Составить план сбора эпизоотологического анамнеза на молочно-товарной ферме.

2. Заполнить бланки клинических исследований животных.

Занятие 3. Серологические реакции и организация массовых серологических исследований

Цель занятия: приобрести навыки взятия крови у животных, организации массовых серологических исследований и оформления документации для отправки проб в лабораторию.

Материалы и оборудование: инструменты для взятия крови.

Место проведения занятия: мясокомбинат или хозяйство.

МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ

Серологические реакции и их диагностическое значение. Сероло­гические исследования используют для диагностики инфекцион­ных болезней, а также эпизоотологического надзора.

Суть серологической реакции заключается во взаимодействии антигена и антитела в среде электролита, например растворе хлорида натрия. С помощью известного антигена обнаруживают спе­цифические антитела в организме больного животного, а с помо­щью известной сыворотки — антиген.

Посредством серологических реакций выявляют бактерионосительство, устанавливают бессимптомный инфекционный процесс, определяют родовую, видовую и типовую принадлежность возбу­дителя, эффективность вакцинации и т.д.

Серологические реакции характеризуются высокой специфич­ностью и чувствительностью: например, наличие белка в крови можно определить с помощью химических реакций (биуретановой пробы) в разведении 1:1000, тогда как с помощью РП — в раз­ведении 1:100000.

В ветеринарии серологические реакции различных модифика­ций широко используют при диагностике бруцеллеза, лейкоза, сапа, лептоспироза, паратуберкулеза, микоплазмоза и многих дру­гих болезней. В необходимых случаях серологические методы ис­следования сочетают с аллергическими (сап, бруцеллез и др.).

Чтобы получить более достоверные результаты при вирусных инфекциях, рекомендуют исследовать парные сыворотки крови, что дает представление о росте титра антител (последний может свидетельствовать, например, о переболевании животного).

Серологические реакции, особенно их современные модифи­кации (в частности, микрометодики), снижают трудоемкость ди­агностических исследований, сокращают расходы дефицитных. препаратов и реагентов, исключают опасность заражения персо­нала лаборатории возбудителями инфекционных заболеваний.

Техника взятия крови у животных разных видов. Животных фик­сируют, подготавливают место прокола: выстригают шерсть (у птиц выщипывают перья, у свиней кончик хвоста обмывают теп­лой водой с мылом и высушивают чистым полотенцем), дезинфи­цируют 70%-м этиловым спиртом, спиртовым раствором йода или 3%-м раствором фенола.

Иглы (рис. 1) перед началом работы тщательно чистят мандреном промывают водой из спринцовок и стерилизуют кипячением в течение 30 мин. Для каждого животного используют отдельную стерильную иглу.

Для серологических исследовании у животных берут 8...10 мл коови у птиц—2...Змл (для исследования на лейкоз—З...4 мл, пои этом заранее вносят в пробирки 16 ЕД гепарина в 0,2 мл фи­зиологического раствора).

Кровь берут из яремной вены, желательно утром до кормления животных. Большим пальцем или с помощью жгута пережимают яремную вену. При хорошем наполнении вены прокалывают иг­лой кожу и стенку вены под углом 45...50° по направлению к голо­ве. К свободному концу иглы подставляют пробирку или надевают резиновую трубку, конец которой заранее опускают в пробирку. Кровь должна стекать струёй по стенке пробирки. Взятая по кап­лям и вспененная кровь скорее гемолизируется и часто бывает не­пригодной для исследования.

Если после прокола кожи кровь не течет, значит, игла еще не попала в вену или прошла вену насквозь. Необходимо уточнить место нахождения конца иглы и спокойно исправить ошибку. Если кровь вытекает каплями, нужно дополнительно сдавить вену пальцем или сильнее затянуть жгут.

Овец прогоняют через раскол, рядом с которым выкапывают траншею глубиной около 1 м. Ветеринарный специалист находит­ся в этой траншее, и к нему по очереди подводят овец. Иногда вместо траншеи делают специальный длинный стол высотой 60...90 см. Овец через раскол и трапы загоняют на стол и фиксиру­ют, ветеринарный врач стоит рядом и берет кровь (яремную вену у овец легко пережать пальцем).

Свиней предварительно фиксируют за верхнюю челюсть с по­мощью веревочной петли и пробы крови берут из уха или хвоста путем прокола или надреза сосудов. На практике чаще всего отре­зают скальпелем кончик хвоста. Применяют и такой способ: у за­фиксированного животного хвост поворачивают левой рукой так, чтобы вентральная его поверхность была обращена направо и кверху. На границе средней и нижней трети хвоста строго посере­дине остроконечным скальпелем прокалывают все мягкие ткани до позвоночника. При этом рассекают кожу, подкожную клетчат­ку, мышцы и вентральную артерию поперек. После прокола тка­ней хвосту придают естественное положение и приподнимают нижнюю его треть, для того чтобы операционная рана была от­крыта. Кровь выделяется равномерной струёй. Взяв нужное коли­чество крови, место прокола смазывают 5%-м спиртовым раство­ром йода и хвост отпускают. В результате сокращения мышц хвое--та ^просвет прокола закрывается и кровотечение в течение 3...5 мин полностью прекращается.

Каждую пробирку с кровью закрывают пробкой. На этикетке указывают порядковый номер пробы, кличку или индивидуальный номер животного, фамилию владельца. Пробирки ставят в штатив или связывают по 10 шт. и помещают в ящик.

Оформление документов для отправки проб крови в лабораторию. Пробы крови направляют в ветеринарную лабораторию вместе с сопроводительным документом (форма 1) и ведомостью в двух эк­земплярах (форма 2 ).

Форма 1.

Отметка лаборатории ____________________________________

Дата поступления материала______________________________

Доставлено проб ____________________________________

Забраковано _________________________________________

В_______________ ветеринарную лабораторию ________________

Адрес: _____________________________________________

При этом направляется ______проб крови (сыворотки) от ____________

———————— , принадлежащего_____________________________

(вид животного) (наименование хозяйства,

населенного пункта, района)

дли __________ исследования на _______________________

(вид исследования) (название заболевания)

хозяйство, бригада, отара, гурт, табун _________________________

(благополучное, неблагополучное,

указать вакцину, дату вакцинации)

Исследование первичное, повторное (подчеркнуть)__________________

Дата и результат предыдущего исследования______________________

Дата взятия крови____________________________________

Форма 2

Ветврач (фельдшер), направляющий пробы

Ветврач, проводивший исследования

(подпись) (подпись)

Занятие 4. Аллергические диагностические пробы и организация массовых аллергических исследований

Цель занятия - освоить технику аллергического диагностического исследования животных разных видов, приобрести навыки оценки аллергических реакций и

заполнения документов.

Материалы и оборудование: инструменты для постановки аллергических проб,

набор аллергенов.

Место проведения занятия: хозяйство или виварии вуза.

МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ

Техника аллергических диагностических исследований. В ветери­нарии аллергический метод диагностики применяют при туберку­лезе бруцеллезе, сапе, реже— при сибирской язве, листериозе, ту­ляремии и др. Способы введения аллергена: внутрикожный (основ­ной) по 0,1...0,5 мл, накожный, подкожный, конъюнктивальный. При внутрикожной туберкулинизации аллерген вводят:

крупному рогатому скоту, буйволам, оленям, зебу—в область средней трети шеи; быкам-производителям — в одну из подхвостовых складок;

мелкому рогатому скоту — в подхвостовую складку, веко;

свиньям — в область наружной поверхности уха на расстоянии 2 см от его основания (в одно ухо — ППД для млекопитающих, в другое — ППД для птиц);

козам, овцам, собакам, обезь­янам и пушным зверям (кроме норок) — в область внутренней поверхности бедра или локтевой складки, норкам — в верхнее веко (интрапальпебрально);

курам — в бородку; индей­кам — в подчелюстную складку;

кошкам наносят на внутрен­нюю поверхность уха.

Используют тонкие иглы для внутрикожных инъекций (см. рис. 1) и шприцы на 1...2 мл с бе­гунком или безыгольные инъек-торы (рис. 2).

Рис. 2. Безыгольный инъектор:1 —рабочее сопло; 2— флакон с аллерге­ном; 3—регулировочный винт; 4—спуско­вой рычаг; 5— рукоятка

Инструментами, предназначенными для туберкулинизации, не разрешается вво­дить животным другие препараты. Шприцы и иглы до и после ис­пользования стерилизуют в течение 10 мин в дистиллированной или кипяченой воде без добавления дезинфицирующих веществ.

Шерсть на месте инъекции предварительно выстригают и выб­ривают, кожу обрабатывают 70%-м этиловым спиртом. О правиль­ности выполнения пробы судят по образованию бугорка размером с горошину на месте введения препарата. Реакцию учитывают у крупного рогатого скота, буйволов, зебу, верблюдов и оленей че­рез 72 ч; у коз, овец, свиней, собак, обезьян и пушных зверей — через 48 ч; у птиц — через 30...36 ч.

При учете внутрикожной реакции пальпируют место инъекции (при пальпебральном способе сравнивают веки левого и правого глаза). При обнаружении изменений кожи в месте введения ал­лергена у крупного рогатого скота, буйволов, зебу, верблюдов, оленей определяют размер утолщения с помощью кутиметра (рис. 3).

Рис. 3. Определение с помощью кутиметра размера утолщения кожной складки при положительном результате внутрикожной пробы на туберкулез: вверху — кожная складка до введения туберкулина; внизу-через 72 ч после введения туберкулина

Животных считают положительно реагирующими на туберку­лин в следующих случаях: крупный рогатый скот, буйволов, зебу, верблюдов и оленей — при утолщении складки кожи на 3 мм и бо­лее (независимо от характера реакции); коз, овец, собак, обезьян, пушных зверей, кур и других птиц — при образовании припухлос­ти в месте введения туберкулина; норок — при опухании века.

Офталъмопробу применяют при исследовании лошадей на ту­беркулез и can, крупного рогатого скота — на туберкулез и только одновременно с внутрикожной инъекцией аллергена. Методом офтальмопробы животных исследуют двукратно с интервалом 5...6 дней. 3...5 капель аллергена наносят стерильной глазной пипеткой на конъюнктиву слегка оттянутого нижнего века или под третье веко.

Результаты первой офтальмопробы с маллеином учитывают че­рез 3, 6, 9, 12 и 24ч, второй—через 3, 6, 9 и 12ч; первой офталь­мопробы с туберкулином у лошадей и крупного рогатого скота — через 3, 6, 9, 12 и 24 ч, второй — через 3, 6, 9 и 12ч. При учете реакции осматривают конъюнктиву, открывая во всех случаях глаз животного.

По степени проявления реакцию на маллеин у лошадей подразделяют на поло­жительную, сомнительную и отрицатель­ную. Положительная реакция характеризуются гиперемией и отеком конъюнктивы, выделением из внутреннего угла глаза слизисто-гнойного или гнойного секрета, накапливающегося в конъюнктивальном мешке, а затем вытекающего в

виде шнура.

Отрицательная реакция характеризуется слабым покраснением

конъюнктивы, незначительным слезотечением или отсутствием каких-либо отклонений от нормы.

В качестве сомнительной реакции трактуют небольшое слезо­течение или скопление гноя в углу глаза.

Положительная реакция на туберкулин у крупного рогатого скота и лошадей характеризуется выделением из внутреннего угла глаза слизисто-гнойного секрета, накапливающегося вначале в конъюнктивальном мешке, а затем вытекающего в виде шнура.

Для аллергической диагностики бруцеллеза у свиней применяют бруцеллин ВИЭВ. Аллерген вводят внутрикожно с наружной сто­роны ушной раковины, ближе к основанию уха, в дозе 0,2 мл. На месте введения препарата образуется бугорок размером с гороши­ну. При инъекции обязательно соблюдают правила асептики. Уча­сток кожи перед уколом протирают ватой, смоченной 70%-м этиловым спиртом или 3%-м раствором борной кислоты. Реакцию на бруцеллин учитывают дважды — через 24 и 48 ч путем осмотра, а при неясно выраженной реакции — пальпацией места инъекции. При обнаружении припухлости на месте введения препарата реак­цию оценивают как положительную.

Организация массовых аллергических исследований. Прежде чем приступать к массовым аллергическим исследованиям, необходи­мо продумать способы фиксации животных, обеспечивающие, с одной стороны, безопасность людей и животных в процессе рабо­ты, а с другой — точное соблюдение места инъекции и дозы аллер­гена, что очень важно для правильного учета аллергических реак­ций. Для этой цели подготавливают различные приспособления и инструменты, а также приглашают вспомогательный персонал, который предварительно инструктируют.

Чтобы массовое аллергическое исследование не стало факто­ром распространения болезни, тщательно готовят инструмента­рий: стерильные шприцы и иглы для туберкулинизации, глазные пипетки в необходимом количестве, дезраствор для обработки поля инъекции и использованных игл, ножницы для выстрига-ния шерсти, кутиметры, безыгольные инъекторы (предваритель­но проверенные на годность к работе и обработанные дезраствором).

Накануне аллергического исследования осматривают поголо­вье, обращая внимание на состояние кожи (конъюнктивы): на ме­сте инъекции кожа должна быть без ран, язв, ссадин, узлов, утол­щений, отеков и пр. Обязательно оценивают качество аллергичес­кого препарата (наличие наставления, этикетки, внешний вид, срок годности).

Очень важно правильно обрабатывать поле (при туберкулинизации используют только спирт-ректификат) и вводить препарат, а также точно соблюдать сроки и методы учета реакций.

После окончания аллергического исследования и учета реак­ций составляют акт с описью исследованных животных аналогич­но акту на проведение вакцинации.

ЗАДАНИЯ ДЛЯ САМОСТОЯТЕЛЬНОЙ РАБОТЫ

Академическую группу делят на подгруппы по 4...5 человек. Каждый студент подгруппы последовательно выполняет функции подсобного рабочего (при фик­сации животного), санитара, фельдшера и врача.

1. Отработать аллергическое исследование животных разных

видов:

туберкулинизацию крупного рогатого скота внутрикожным и

глазным методами;

туберкулинизацию свиней внутрикожным методом одновре­менно двумя туберкулинами;

туберкулинизацию кур, индеек, уток внутрикожным методом;

маллеинизацию лошадей подкожным и глазным методами;

исследование свиней на бруцеллез внутрикожным методом.

2. Составить акт аллергического исследования на туберкулез животных разных видов.

3. Составить акт аллергического исследования свиней на бру­целлез.

Занятие 5. Правила взятия и пересылки патологического материала для лабораторных исследований

Цель занятия: изучить основные правила отбора и пересылки патологического

материала для лабораторного исследования, а также оформление сопроводитель­ных документов.

Материалы и оборудование: секционный набор, спецодежда, металлические шпатели, консерванты [30%-й раствор химически чистого глицерина на стериль­ном физиологическом растворе: фосфатно-солевой буферный раствор (рН 7,6), 10%-й раствор формалина или 96%-й этиловый спирт], дезинфектанты (3...5%-й раствор карболовой кислоты, хлорная известь или 10%-й раствор гидроксияа натрия), термос со льдом, стерильные пробирки и флаконы с пробками, предмет­ные стекла, спиртовка, стеклограф или водоустойчивый фломастер, пленка, пер­гаментная бумага, шпагат, пеналы, деревянный ящик, стеклянные банки, сургуч, парафин, пастеровские пипетки.

Место проведения занятия: хозяйство, ветеринарно-санитарный утильзавод (ВСУЗ).

МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ

Отбор материала для прижизненной диагностики. В зависимости от вида инфекции у клинически больных животных берут соответ­ствующий, специфический для данной болезни материал, соблю­дая меры личной безопасности.

Секрет молочных желез служит объектом исследования при тех

яболеваниях, при которых возбудитель активно выделяется с молоком (туберкулез, бруцеллез, сальмонеллез, мастит). У коров вымя обмывают теплой водой с мылом, соски обрабатывают 70%-м спир­том Первые струйки молока удаляют, в стерильные сосуды набирают 15...20 мл секрета из первой и последней порций, получен­ных при выдаивании.

У овец и коз пробы получают путем пункции цистерны выме­ни Поле операции готовят у основания соска, стерильной иглой, соединенной со шприцем, делают пункцию, набирают в шприц секрет и переносят его в стерильные пробирки с резиновыми

пробками.

Моча чаще всего служит объектом исследования при подозре­нии на лептоспироз. У коров и свиноматок мочу можно брать не­посредственно из мочевого пузыря с помощью катетера или соби­рать при естественном мочеиспускании в чистые пробирки, бан­ки. Легче всего мочу получать после утреннего подъема животных, а у свиней — в любое время дня после 1 ...2-часового лежания.

Кал берут из прямой кишки в стерильную посуду, которую закрывают плотной крышкой. При обнаружении на стенке пря­мой кишки слизи, утолщений или других патологических изме­нений дополнительно делают соскобы; их помещают в отдель­ную посуду.

Выделения из верхних дыхательных путей и ротовой полости со­бирают в посуду при естественном истечении или поступают так:

крылья носа и переднюю часть носовых ходов обмывают водой, после чего выделения собирают стерильными тампонами из глу­боких частей носа. Тампоны помещают в стерильные пробирки, содержащие по 0,5 мл стерильного физиологического раствора.

Содержимое синовиальных бурс и абсцессов берут следующим об' разом. Шерсть выстригают, кожный покров обрабатывают 70%-м спиртом и смазывают настойкой йода. Затем стерильным шпри­цем с иглой большого диаметра делают пункцию и переносят пунктат в стерильную пробирку с резиновой пробкой.

Материал из язв и ран получают методом соскоба на границе пораженной и здоровой тканей.

Волосы и участки кожи исследуют при кожных заболеваниях. При этом волосы выщипывают, а соскобы с кожи делают скальпе­лем на границе пораженной и здоровой тканей.

Кровь для серологических исследований берут в разгар заболе­вания, а в некоторых случаях повторно через 10...20 дней по 10 мл от двух-трех больных животных в разные пробирки.

Отбор материала для посмертной диагностики. Патологический материал необходимо взять как можно раньше: не позднее 12ч после гибели животного зимой и 6 ч — в теплое время года, закон­сервировать или отправить в свежем виде. Аутолизированный пат-материал для выделения возбудителя непригоден. Для бактериологического исследования в лабораторию отправля­ют кусочки кожи, слизистых оболочек, паренхиматозных органов, трубчатую кость, спинной и головной мозг, лимфатические узлы' пробы жидкости из грудной и брюшной полостей, отрезок кишечника, изолированный лигатурами, плод, плодные оболочки и т.д. Пробы из каждого органа помещают в отдельную посуду и марки­руют. В каждом случае необходимо брать тот материал, в котором можно обнаружить характерные для данной болезни изменения.

Для вирусологического исследования материалом могут служить:

кровь или ее сыворотка, смывы из носоглотки и другие жидкости организма, стенки и содержимое афт, папулы (узелки), везикулы (серозные пузырьки), пустулы (гнойные пузырьки), кусочки го­ловного мозга, печени, легких, селезенки или кусочки других ор­ганов и тканей, в которых вирус предполагаемого заболевания со­держится в наибольшем количестве.

Для гистологического исследования патматериал берут только от свежих трупов. В лабораторию отправляют кусочки площа­дью 3...4 см2, толщиной не более 1 см, при этом следят, чтобы в них вошли пораженные и граничащие с ними неизмененные участки ткани.

Поверхность органа или ткани трупа на участке, из которого предполагают брать пробу, очищают от загрязнений, обеззара­живают спиртом, 3%-м раствором фенола или прижигают нагре­той металлической пластинкой (шпателем). Материал берут сте­рильными инструментами и помещают в стерильную посуду (пенициллиновые флаконы, пробирки и другие стеклянные сосуды с резиновыми пробками). Жидкий патматериал (кровь, слизь мочу, желчь и т. д.) можно набирать в одноразовые шприцы или пастеровские пипетки, которые затем с обоих концов запаивают. Кроме того, различные выделения можно посылать в виде маз­ков или мазков-отпечатков, которые фиксируют на воздухе, за­ворачивают каждый в отдельности в пергаментную бумагу и мар­кируют.

Трупы мелких животных, части трупов крупных животных и отдельные органы в свежем виде направляют для исследования в лабораторию только нарочным. Посылаемый материал тщатель­но упаковывают в плотный деревянный или металлический ящик, чтобы предупредить рассеивание возбудителя по пути сле­дования.

Консервирование патологического материала. Полученные про­бы отправляют в лабораторию в свежем виде; если невозможно отправить в течение ближайших 24...30 ч, то их фиксируют в кон­серванте.

Патматериал для гистологического исследования консервируют 10%-м водным раствором формалина или 96%-м этиловым спир­том. Объем консерванта должен в 10 раз превышать объем взятого материала.

Материал, предназначенный для бактериологического исследования фиксируют 30%-м химически чистым глицерином (лучше физиологическом растворе) или вазелиновым маслом. Соотношение патматериала и консерванта 1:4 или 1:5. Трубчатую кость и кишечник обычно консервируют поваренной солью.

Для вирусологического исследования материал консервируют 50% -м глицерином на стерильном физиологическом растворе Наилучший и простой метод сохранения биологических свойств вирусов в патматериале — охлаждение. Надежно закрытые (флаконы заворачивают в вату или упаковочную бумагу и плотно укладывают в термос, заполненный на 1/3 снегом или льдом. При этом в термосе в течение 12...24 ч удерживается температура 2 6 "С, при которой вирусы сохраняются практически без изме­нений.

Оформление документов на отправляемый материал. На взятый патологический материал ветеринарный врач составляет сопрово­дительный документ (форма 3). В документе необходимо указать также эпизоотическую ситуацию хозяйства, лечили животное или нет' если лечили, то какими препаратами, как законсервирован материал; число отправленных упаковок с пробами.

Форма 3

В ______________________________ ветеринарную лабораторию

Адрес_____________________.________________________

При этом направляется для ______________________________

патологический материал (перечислить какой) _____________________

'т____________ , принадлежащего____________________

(вид и возраст животного) (название хозяйства, фермы)

Дата заболевания животного _______________________________

Дата падежа ________'_________________________________

Клиническая картина ____________________________________

Данные патологоанатомического вскрытия _______________________

Предположительный диагноз _______________________________

Дата отправления материала ______________________________

Должность ____________________ Подпись ______________

ЗАДАНИЯ ДЛЯ САМОСТОЯТЕЛЬНОЙ РАБОТЫ

1. Указать порядок взятия материала для различных исследова­ний от больных животных и трупов.

2. Оформить сопроводительный документ к патологическому материалу.Занятие 6. Эпизоотологическое обследование хозяйства

Цель занятия: научиться проводить Эпизоотологическое обследование, состав­лять на него акт.

Материалы и оборудование: макеты хозяйств или компьютерные программы с типовыми данными по хозяйствам.

Место проведения занятия: аудитория кафедры эпизоотологии или хозяйство.

МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ

Эпизоотологическое обследование — один из приемов эпизоотологического метода диагностики, представляет собой комплекс мероприятий, цель которых:

всесторонне изучить причины возникновения эпизоотических очагов;

выяснить условия, благоприятствующие или препятствующие распространению определенных инфекционных болезней в конк­ретном хозяйстве;

уточнить диагноз;

выявить источники и пути заноса возбудителя инфекции, меха­низм его передачи;

определить границы эпизоотического очага, неблагополучного пункта, угрожаемой зоны;

организовать мероприятия для быстрейшей локализации и ликвидации возникшего заболевания;

устранить недостатки в системе противоэпизоотических ме­роприятий.

Эпизоотическое обследование проводят систематически, в установленные сроки, а при подозрении на болезнь — немед­ленно.

План эпизоотического обследования включает в себя: изучение ветеринарно-санитарного состояния хозяйства, определение его эпизоотической ситуации в прошлом и настоящем, анализ при­чин заболеваемости и гибели животных, системы противоэпизоо­тических мероприятий.

Ветеринарно-санитарное обследование начинают с общей ха­рактеристики хозяйства (пункта): специализация хозяйства и экономические показатели, наличие животных на день обследова­ния по видам и возрастным группам, условия комплектования хо­зяйства животными, динамика поголовья за последний год, чис­ленность обслуживающего персонала и зооветеринарных специа­листов, прочность кормовой базы (обеспеченность кормами, их вид, качество, источник поступления), рацион и режим кормле­ния, наличие и состояние пастбищ, водопоев, летних лагерей, на­личие животных по видам в частном секторе, связи данного пунк­та с другими хозяйствами.

Характеризуя ветеринарно-санитарное состояние пункта, обращая

внимание на зоогигиенические условия содержания животных:

обеспеченность помещениями, санитарное состояние последних, а также территории фермы (в том числе ее отгороженность и озелененность), наличие санпропускников, бытовых комнат, ветеринарных объектов, изоляторов, карантинных помещений и профи­лакториев, убойных площадок, обеспеченность работников спе­цодеждой и обувью, дезинфицирующими средствами.

Чтобы определить эпизоотическую ситуацию пункта, изучают план противоэпизоотических мероприятий, систему и порядок ве­теринарных осмотров и обработок животных, начиная с рождения и до отправки на убой, общую и специфическую профилактику, схемы дезинфекции, дератизации, дезинсекции, причины, обус­ловливающие выбор прививок, состояние диагностической рабо­ты (практическое применение эпизоотологического, клиническо­го патологоанатомического и лабораторного методов диагности­ки), достоверность диагноза (уточняют, кто и каким методом уста­навливал диагноз). Анализируют информацию о выбывших животных с указанием их численности и причин, по которым жи­вотные выбыли. Знакомятся с лабораторными экспертизами, ак­тами обработок, ветеринарными журналами, отражающими всю профилактическую деятельность. Обращают внимание на болез­ни с неустановленным диагнозом, зарегистрированные в хозяй­стве.

Эпизоотический очаг — любой объект, где обнаружены источ­ники возбудителя конкретной инфекционной болезни.

Неблагополучный пункт — населенный пункт, на территории которого выявлен эпизоотический очаг.

Угрожаемая зона — населенные пункты, расположенные вокруг эпизоотического очага, в пределах которых возможно распростра­нение болезни. Угрожаемую зону определяют местные ветеринар­ные органы с учетом хозяйственных связей, географических, кли­матических и природных условий при некоторых особо опасных инфекционных болезнях животных (ящур, классическая и афри­канская чума свиней, болезнь Ньюкасла и др.).

Поскольку элементарной ячейкой проявления эпизоотическо­го процесса является эпизоотический очаг, то обследовать необхо­димо именно его. Так как эпизоотический очаг в большинстве случаев находится в населенном пункте или на приписанных к нему сельскохозяйственных угодьях, то Эпизоотологическое об­следование целесообразно проводить в целом по неблагополучно­му пункту. При таком подходе можно максимально учесть влия­ние хозяйственной и транспортной деятельности на распростра­нение инфекционных болезней. Результаты эпизоотологического обследования как эпизоотического очага, так и неблагополучного пункта оформляют в виде соответствующего акта по следующей схеме.

1. Дата составления акта; название хозяйства и его адрес; кто, в какой период и с какой целью обследовал хозяйство; географичес­кое положение и топографические особенности хозяйства, его об­щая характеристика.

2. Мероприятия, направленные на повышение общей резистентности организма.

3. Технология выращивания и эксплуатации животных; нали­чие в хозяйстве изоляторов, карантинных помещений; порядок утилизации трупов.

4. Система профилактических мероприятий (соблюдение пра­вил профилактического карантина вновь поступающих в хозяй­ство животных, дата и вид профилактических прививок, схема иммунизации и применяемые вакцины, акты, подтверждающие проведение прививок, дезинфекционные, дератизационные и де­зинсекционные мероприятия).

5. Благополучие по инфекционным болезням окружающих хо­зяйств, наличие экономических и хозяйственных связей с ними.

6. Подробная эпизоотологическая, клиническая, патологоанатомическая характеристика появившейся болезни, ее дифферен­циальная диагностика. Динамика заболеваемости; кто и каким ме­тодом установил диагноз; зарегистрированы ли ранее случаи того же заболевания в этой местности; нет ли данных, указывающих на периодичность эпизоотии; противоэпизоотические мероприятия, назначенные с момента появления заболевания.

7. Предполагаемый источник возбудителя инфекции (дать свое заключение о причинах вспышки, путях заноса и распростране­ния инфекции, условиях, благоприятствующих ее распростране­нию).

8. Тяжесть течения эпизоотии: заболеваемость, смертность и летальность.

9. Динамика эпизоотии (приложить план хозяйства с указани­ем движения эпизоотии по отдельным помещениям, фермам и т.д.); эффективность противоэпизоотических мероприятий.

Заключение должно содержать окончательный диагноз с указа­нием источника возбудителя инфекции и путей его распростране­ния; оценку эффективности назначенных оздоровительных и про­филактических мероприятий.

Предложения вносят в дополнение к уже назначенным ме­роприятиям или составляют новый план оздоровительных мероп­риятий применительно к данной эпизоотии.

ЗАДАНИЕ ДЛЯ САМОСТОЯТЕЛЬНОЙ РАБОТЫ

Подготовить акт эпизоотологического обследования хозяйства.

Занятие 7. Биологические препараты, их классификация, правила транспортировки, хранения и оценка пригодности для использования.

Цель занятия: изучить биологические препараты, применяемые для профилактики диагностики и лечения инфекционных болезней сельскохозяйственных животных.

Материалы и оборудование: таблица классификации вакцин, вакцины, сыворотки аллергены, антигены, бактериофаги.

Место проведения занятия: аудитория кафедры эпизоотологии.

МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ

Биологические препараты — средства биологического проис­хождения, применяемые в профилактических, диагностических и лечебных целях. Промышленность выпускает также и стимулиру­ющие биопрепараты: иммуностимуляторы, кормовые антибиоти­ки, гормоны, витамины.

Средства иммунопрофилактики. К ним относят вакцины, глобулины сыворотки. Основные показатели хорошего качества всех профилактических препаратов — стерильность или чистота (от­сутствие контаминантов), безвредность, допустимая степень реактогенности, антигенная активность и иммуногенность, эпизооти­ческая эффективность.

Штаммы микроорганизмов, применяемые для изготовления вакцин, должны быть классифицированы, клонированы и пред­ставлять собой однородную популяцию микроорганизмов с харак­терными морфологическими, биохимическими и антигенными признаками.

Живые вакцины содержат культуру микроорганизмов аттенуированного штамма, сохранивших высокую иммуногенность с ге­нетически закрепленной пониженной вирулентностью. Получают методом направленного изменения свойств возбудителя под воз­действием внешней среды (вакцины против сибирской язвы, ту­беркулеза, бруцеллеза) или путем пассажей через организм невос­приимчивых животных (вакцины против бешенства, рожи сви­ней). Живые вакцины наиболее перспективны для ветеринарной практики, так как иммунитет после их применения образуется, как правило, раньше и характеризуется большей напряженностью и длительностью.

Инактивированные вакцины содержат культуру микроорганиз­мов определенного вида, обезвреженных действием физико-хими­ческих факторов (высокая температура, ультрафиолет, фенол, формалин) и утративших способность к репродуцированию (без убого разрушения клетки микроорганизма, с сохранением иммуногенных свойств возбудителя). Инактивированные вакцины по иммуногенности уступают живым, поэтому их вводят в боль­ших дозах и многократно. Чтобы повысить иммунологическую эффективность инактивированных вакцин, используют депониру­ющие вещества (адъюванты), которые по механизму действия на антиген делят на сорбирующие и эмульгирующие.

Анатоксины— вид вакцин, применяемых для активной профи­лактики токсикоинфекций животных. Получают методом обез­вреживания бактерийных экзотоксинов 0,3...0,4%-м формалином с выдерживанием при 38...40 "С в течение трех-четырех недель. Анатоксины стимулируют синтез антитоксинов, которые, нейтра­лизуя экзотоксины возбудителя, не оказывают губительного дей­ствия на него самого. Широко используют поливалентный ана­токсин против клостридиозов овец — инфекционной энтеротоксемии, брадзота, некротического гепатита, злокачественного оте­ка овец и дизентерии ягнят.

Вакцины нового поколения — субъединичные, генно-инженерные — созданы с помощью методов биотехнологии.

По технологии изготовления вирусные вакцины делят на ткане­вые культуральные (лапинизированные) и эмбриональные — из­готовленные из различных тканей животных, организм которых был использован в качестве среды размножения возбудителя.

В зависимости от примененного инактиватора все вакцины подразделяют на феноловые, формоловые, спиртовые, гретые; от добавленного адъюванта — на квасцовые (адсорбированные на алюмокалиевых квасцах), гидроокисьалюминиевые и масляные.

В зависимости от количества антигенов вакцины подразделяют на моновалентные — содержащие один антиген одного штамма (серотипа, биотипа) возбудителя данной болезни; поливалент­ные — содержащие антигены различных серотипов (биотипов, штаммов) возбудителя данной болезни; ассоциированные — со­держащие антигены возбудителей нескольких заболеваний;

аутогенные — приготовленные из штамма микроорганизма, вы­деленного от больного животного, и для него же предназначен­ные.

Кроме того, выпускают вакцины жидкие и сухие — изготовлен­ные в основном из живых слабоустойчивых штаммов, высушен­ные в условиях глубокого вакуума после предварительного замо­раживания (лиофилизация) или другим методом.

Прививки бывают профилактические (плановые) и вынужден­ные (при угрозе заноса возбудителя инфекции в хозяйство или появлении в хозяйстве инфекционной болезни).

Противопоказаниями против прививок служат: наличие в хо­зяйстве остроинфекционных болезней, а также переболевших жи­вотных (реконвалесцентов), истощенных или животных с повы­шенной температурой тела; неблагоприятные погодные условия;

стресс-факторы; последняя стадия беременности, первые 2 нед после родов; прививки другой вакциной.

Неспецифический нормальный глобулин содержит комплекс у- и Р-глобулинов. Стимулирующе действует на организм животных, повышая его общую устойчивость к неблагоприятным факторам

внешней среды.

Лечебные и диагностические препараты. К средствам специфической терапии относят гипериммунные сыворотки (по механизм действия делят на антитоксические, антибактериальные и про­тивовирусные), сыворотки реконвалесцентов, иммуноглобулины, бактериофаги, антибиотики, пробиотики. Для диагностических целей в ветеринарии используют сыворотки, иммуноглобулины, аллергены, бактериофаги, антигены, моноклональные антитела.

Антибактериальные сыворотки воздействуют непосредственно на возбудителя заболевания, подавляя его жизнедеятельность. Биопромышленность нашей страны выпускает сыворотки против сибирской язвы, рожи свиней, пастереллеза и др.

Антитоксические сыворотки содержат антитела (иммуноглобу­лины), способные специфически связывать и нейтрализовывать токсины бактериального, растительного и животного происхожде­ния. В ветеринарии применяют антитоксические сыворотки про­тив анаэробной дизентерии и инфекционной энтеротоксемии овец, столбняка, ботулизма, злокачественного отека и др.

Противовирусные сыворотки высокоэффективны, особенно в начале заболевания. Биопромышленность выпускает сыворотки против болезней крупного рогатого скота (ринотрахеит, вирусная диарея и др.), собак (чума, гепатит, энтерит).

Лечебные, профилактические и диагностические гипериммун­ные сыворотки обычно получают от лошадей, иногда — от волов, свиней. После окончания гипериммунизации, когда в сыворотке крови животного установлено максимальное содержание специ­фических антител, у животного берут кровь (чаще на 7...10-й день после последнего введения антигена). Кровь сепарируют, чтобы получить нативную плазму (сыворотку), которую отстаивают и стабилизируют (консервируют), затем концентрируют, стандарти­зируют, стерилизуют фильтрацией и при необходимости прогре­вают.

После производственного контроля каждую серию сыворотки проверяют на стерильность, безвредность, специфическую актив­ность.

На бактериальную стерильность контролируют высевами из препарата на специальные питательные среды (МПА, МПБ с глю­козой, МППБ под маслом и агар Сабуро или среду Чапека, чтобы исключить контаминацию грибковой микрофлорой).

Безвредность проверяют на лабораторных животных в соответ­ствии с нормативной документацией по изготовлению сыворотки. Животные должны оставаться здоровыми, без заметной местной и общей реакции в течение 10 дней.

Специфическую активность определяют в реакциях биологичес­кой и серологической нейтрализации. Реакцию биологической нейтрализации ставят на восприимчивых лабораторных животных, эмбрионах птиц или культурах клеток. Для серологического тести­рования применяют РН, РДП в агаровом геле, РТГА, РСК, РНГА и др. с использованием в качестве контроля заведомо известных по­зитивных и негативных сывороток (референс-препаратов).

Кроме того, проверяют превентивные свойства лечебных и профилактических сывороток на восприимчивых животных. Что­бы определить активность сыворотки, ее вводят животным внутрибрюшинно, подкожно или внутримышечно. Затем через 20...24 ч инъецируют подтитрованную дозу вирулентного конт­рольного штамма соответствующего микроорганизма. Подопыт­ные животные должны оставаться здоровыми не менее 14 дней, контрольные— погибнуть или заболеть.

Сыворотки реконвалесцентов (противовирусные и антибактери­альные) получают от животных, переболевших инфекционной бо­лезнью без осложнений. Сыворотку рекомендуют получать и ис­пользовать в условиях одного хозяйства. Кровь от животных-до­норов можно брать непосредственно в хозяйстве или на мясоком­бинате во время их убоя. Сыворотки реконвалесцентов применяют при парагриппе, вирусной диарее крупного рогатого скота, сальмонеллезе, пастереллезе и т.д.

Лечебные глобулины (против болезни Ауески сельскохозяй­ственных животных и пушных зверей, сибирской язвы) представ­ляют собой водный раствор у- и р-глобулинов сыворотки крови животных. Иммуноглобулины получают различными методами (риваноловым, спиртовым и путем осаждения сульфатом аммо­ния) из гипериммунных сывороток.

Бактериофаги—вирусы, которые проникают в бактериальную клетку, размножаются в ней и лизируют ее с выходом фаговых частиц в окружающую среду. Бактериофаги способны лизировать только определенные микроорганизмы. Введенный в организм бактериофаг сохраняется в нем 5...7 дней (прием бактериофага не может заменить вакцинацию). В нашей стране выпускают бакте­риофаги против сальмонеллеза или колибактериоза телят, пуллороза — тифа птиц.

Для идентификации возбудителей болезней в бактериальных культурах и свежем патологическом материале биопромышлен­ность выпускает: сибиреязвенный бактериофаг К—ВИЭВ. «Гам­ма—МВА», ВНИИВВиМ, лиофилизированные бактериофаги для идентификации возбудителей листериоза, стафилококковые — для типирования штаммов; бруцеллезный бактериофаг.

Диагностические сыворотки используют не только для иденти­фикации возбудителя инфекции, но и для определения его типа и варианта. Производство диагностических сывороток строго регла­ментировано, что обусловливает их высокое качество и стандарт­ность. В большинстве случаев продуцентами названных сыворо­ток служат лабораторные животные (кролики, морские свинки), петухи и редко—лошади.

Глобулин диагностический (для диагностики бешенства в пряпом методе иммунолюминесцентной микроскопии) —это чистая у-глобулина, выделенного из высокоактивной моноспецифической антирабической сыворотки лошадей и химически вязанного с изотиоцианатом флуоресцина. А/глергены представляют собой фильтрат убитых бактериальных

леток или извлеченных из них активных фракций: туберкулин "ой очищенный (ППД) для млекопитающих, ППД для птиц, комплексный аллерген из атипичных микобактерий (КАМ); бруцетин ВИЭВ; маллеин.

Аллергическая диагностика основана на повышенной специ­фической чувствительности зараженного организма к определен­ным аллергенам — веществам бактериального происхождения, введение которых одним из методов (внутрикожно, подкожно или на слизистую оболочку глаза) больному животному, особенно в латентный период, вызывает местную реакцию.

Антигены— это вещества, способные при введении в организм вызывать в нем иммунологические реакции: синтез антител, фор­мирование клеточной гиперчувствительности и др. Антиген реа­гирует с образовавшимися антителами как в живом организме, так и в пробирке.

Для серологических реакций выпускают: единый бруцеллез­ный антиген для РА, РСК и РДСК; бруцеллезный Розбенгал ан­тиген; паратуберкулезный, листериозный, сапной, кампилобакте-риозный, лептоспирозный антигены и т. д.

Правила транспортировки биопрепаратов. Поскольку качество биопрепаратов снижается и даже полностью теряется при промер­зании, под воздействием высокой температуры, повышенной влажности, прямого солнечного света, биопрепараты нужно как транспортировать, так и хранить в соответствующих условиях (очень важно это соблюдать по отношению к живым, особенно жидким, вакцинам).

Ветеринарные биопрепараты хранят в сухом темном помеще­нии при температуре 2...10 °С; перевозят всеми видами транспорта в соответствии с правилами перевозки скоропортящихся грузов и багажа. При длительной транспортировке используют закрытые рефрижераторные вагоны (кузова, контейнеры), оснащенные хо­лодильными установками или холодильными камерами при тем­пературе от 2...5 до 8...10 °С. Для каждого препарата оборудуют от­дельное место. При этом нарушение целостности упаковки и по­падание влаги, а также даже однократное замораживание жидких биопрепаратов недопустимы.

Требования, предъявляемые к биологическим препаратам. Био­препараты выпускают в ампулах и флаконах различного объема. На каждой ампуле или флаконе должны быть наклеены этикетки, содержащие следующую информацию:

наименование и местонахождение предприятия-изготовителя;

название препарата;

количество препарата с указанием активности в единицах;

состав препарата, если он поливалентный;

номер серии;

номер государственного контроля;

срок годности препарата и дата его изготовления.

В каждую упаковку вкладывают наставление по применению препарата, утвержденное Департаментом ветеринарии МСХ РФ. Все биопрепараты должны быть изготовлены в соответствии с оп­ределенными ГОСТом, ТУ и пройти обязательный государствен­ный контроль.

Во время транспортировки и хранения препарат может испор­титься, поэтому перед применением его обязательно тщательно осматривают.

Препарат непригоден для использования в следующих случаях:

отсутствует этикетка (надпись на флаконе) или не указан но­мер серии и (или) контроля;

отсутствует наставление по применению;

нарушена укупорка флакона, целостность флакона (ампулы, пробирки и пр.);

промерзла жидкость во флаконе (для жидких препаратов);

изменен обычный внешний вид (цвет, консистенция, запах и т.д.);

в содержимом флакона присутствуют пленки, хлопья, плесень, комочки, сгустки или осадок, не разбивающийся при встряхива­нии;

истек срок годности препарата.

Правила использования биопрепаратов. Перед использованием упаковки проверяют этикетку и обращают внимание на номера серии и контроля, а также внешний вид препарата. Уточняют пра­вила его использования (по наставлению) и дозировку.

Жидкие препараты, содержащие депонирующие вещества (квасцы, ГОА, масляный адъювант и т. п.), тщательно встряхива­ют до получения равномерной взвеси.

При растворении сухих препаратов применяют только указан­ный в наставлении растворитель (разбавитель). Чаще всего это стерильная дистиллированная вода.

Живые вакцины не содержат консервантов, поэтому при их' вскрытии необходимо соблюдать правила антисептики и избегать попадания в препарат дезинфицирующих средств.

Вскрытые флаконы должны быть использованы в этот же день. Неиспользованные препараты утилизируют кипячением.

По истечении срока годности препараты бракуют или отправля­ют (если осталось много) на повторный контроль во ВГНИИКСС (в этом случае срок годности может быть продлен).

Биопрепараты выбраковывают комиссионно, составляют акт. Выбракованные препараты утилизируют автоклавированием или кипячением.

ЗАДАНИЯ ДЛЯ САМОСТОЯТЕЛЬНОЙ РАБОТЫ

1 Охарактеризовать вакцины, аллергены; указать цель и способ их применения.

2. Определить пригодность биопрепаратов для использования.

Занятие 8. Общие и специальные профилактические мероприятия в хозяйствах, благополучных по инфекционным болезням животных. Индивидуальные и групповые способы иммунизации животных

Цель занятия: изучить основные принципы организации общих и специаль­ных профилактических мероприятий.

Материалы и оборудование: эпизоотологический макет, таблицы, набор диагностикумов, вакцин и сывороток.

Место проведения занятия: аудитория кафедры эпизоотологии или хозяйство.

МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ

Профилактика представляет собой совокупность организаци­онно-хозяйственных и специальных мероприятий, направленных на предупреждение возникновения и распространения инфекци­онных болезней. Профилактические мероприятия, составляющие основу противоэпизоотической системы, подразделяют на общие и специальные.

Общая профилактика. Это комплекс организационно-хозяй­ственных и ветеринарно-санитарных мероприятий, которые носят постоянный характер. В нее входят:

правильная общая ветеринарно-санитарная и зоогигиеническая организация животноводческих хозяйств (уход, кормление, эксп­луатация животных, выращивание молодняка и т. п.);

профилактический карантин всех вновь поступающих в хозяй­ство животных. Карантинное помещение предварительно очища­ют механическим способом и дезинфицируют с обязательной ла­бораторной проверкой эффективности дезинфекции. В период профилактического карантина животных обрабатывают по опре­деленной схеме.

Рекомендуемая схема обработки крупного рогатого скота в период профилактического карантина

14 День Вид обработки

1-й Прием, регистрация животных в журнале, клинический осмотр и

термометрия

2...3-й Санитарная обработка: туалет кожного покрова, расчистка копыт, об­резка рогов

5-й Взятие проб кала для гельминтологического исследования 15-й Туберкулинизация

18-й Учет и оценка результатов туберкулинизации. Взятие крови для серо­логического (на бруцеллез, лейкоз, лептоспироз и другие болезни) и биохимического исследований

19-й Дегельминтизация (в случае необходимости) 24-й Вакцинация против сибирской язвы 29...30-й Клинический осмотр и термометрия, санитарная обработка. Перевод животных в общее стадо

В период карантина перегруппировки животных запрещены;

диспансеризация животных — система плановых диагностичес­ких, лечебно-профилактических и хозяйственно-организацион­ных мероприятий, направленных на выявление субклинических форм заболеваний, их профилактику и лечение.

Диспансеризацию проводят 2 раза в год: осенью — при перево­де животных на стойловое содержание и весной — в конце стойло­вого периода.

Диспансеризация включает в себя: клиническое обследование животных, лабораторный анализ крови, молока, мочи, кормов, оценку условий кормления и содержания. Полученные при дис­пансеризации данные сравнивают с нормальными показателями, чтобы определить состояние здоровья поголовья. По окончании диспансеризации оформляют акт.

Специальная профилактика. Наряду с общепрофилактическими мероприятиями большое значение имеют специальные, которые направлены на предупреждение появления определенной инфек­ционной болезни путем создания специфического иммунитета к ней. Характер специальных профилактических мероприятий обусловлен особенностями инфекционной болезни, эпизоотичес­кой обстановкой хозяйства и окружающей территории. К специ­альным мероприятиям относят:

специальные диагностические исследования (например, аллерги­ческую пробу на туберкулез, серологическую диагностику бруцел­леза, лейкоза и т. д.);

иммунопрофилактику—сознание иммунитета с помощью био­логических препаратов (вакцин, сывороток, глобулинов). Самый распространенный вид специфической профилактики — активная иммунизация, которая достигается путем введения животным вак­цин и анатоксинов. Поголовье иммунизируют в благополучных хозяйствах согласно плану противоэпизоотических мероприятий, чтобы защитить от конкретной инфекционной болезни, а также вынужденно в неблагополучных хозяйствах.

С профилактической целью животных прививают ранней вес­ной до выгона на пастбище или поздней осенью; вынужденно — в любое время года.

Подготовка плановой вакцинации начинается с клинического осмотра всего поголовья (осматривают за 1 сут до обработки). Жи­вотных истощенных, находящихся в последнем периоде беремен­ности, а также с признаками других болезней метят, в списке ука­зывают причины, по которым они не допущены к вакцинации, и определяют характер их дальнейшей эксплуатации.

Готовят инструменты, необходимые для вакцинации, спец­одежду (резиновые сапоги, халаты, фартуки, нарукавники), мыло, полотенце и т. п. Перед началом работы все инструменты стери­лизуют кипячением в течение 20 мин с момента закипания воды, а после работы — 30 мин. Иглы после работы промывают, стерили­зуют и высушивают.

Место и способ введения вакцины выбирают в соответствии с наставлением по ее применению. Поле инъекции обязательно депилируют и дезинфицируют.

Очень важно позаботиться о рабочем месте: создать условия для фиксации животных (станок, раскол, загон) и правильно под­готовить препараты и инструменты.

Метод групповой вакцинации включает в себя энтеральную иммунизацию и аэрозольную. Последнюю особенно широко при­меняют на птицефабриках, а также в отдельных случаях в свино­водческих и звероводческих хозяйствах.

Энтеральная, или пероральная, иммунизация—введение вакцин с кормом или питьевой водой — существенно сокращает затраты труда. При этом методе входными воротами служат полость рта, пищевод, тонкий и толстый отделы кишечника: антиген проника­ет через слизистую оболочку этих участков пищеварительного тракта в иммунокомпетентные клетки организма.

В производственных условиях пероральную вакцинацию применяют против болезни Ньюкасла кур, трансмиссивного га­строэнтерита свиней и при иммунизации лисиц против бешен­ства.

Аэрозольная, или респираторная, иммунизация — введение вакци­ны в дыхательные пути в форме аэрозоля. Достоинства этого ме­тода: удается быстро создать более напряженный, чем при других видах вакцинации, иммунитет; формируется не только общая, но и местная невосприимчивость организма к инфекции.

Аэрозольные камеры должны быть герметичными, с тем чтобы в них могла установиться нужная температура (12...15 °С) и влаж­ность (50...90 %).

Для иммунизации живыми вакцинами используют специаль­ные распылители —ДАГ, САГ, ТАН, ПАГ и др.

Всеми работами, связанными с аэрозольной вакцинацией, ру­ководит ветеринарный врач. Лица, участвующие в аэрозольных обработках, надевают хлопчатобумажные комбинезоны, резино­вые сапоги, колпаки; имеют при себе защитные очки, респирато­ры или ватно-марлевые повязки. После начала распыления вакци­ны и до окончания проветривания помещения входить разреша­ется только на короткое время, чтобы проверить правильность ра­боты распылителя. При этом обязательно следует надевать защитные очки и респираторы.

Оформление документов на вакцинацию и наблюдение за приви­тыми животными. Закончив вакцинацию, оформляют документы:

акт о вакцинации (форма 4) и ведомость. Акт подписывают вете­ринарные специалисты, участвующие в вакцинации, и работники фермы —зоотехник, заведующий. Акт является юридическим до­кументом. К нему прилагают опись невакцинированных живот­ных с указанием причины отмены иммунизации.

За привитыми животными наблюдает ветеринарный специа­лист и отмечает все реакции организма (местные и общие). Если после вакцинации у животных возникли осложнения, например сильная местная реакция — отек, болезненность, повышенная температура или появились случаи падежа, прежде всего прини­мают меры против развития осложнений, а затем о факте сообща­ют на предприятие-изготовитель и во Всероссийский научно-ис­следовательский институт контроля, стандартизации, сертифика­ции ветеринарных препаратов (ВГНИИКСС).

Форма 4

Акт

Хозяйство _____________

_______________ района

__________ области, края

«__» __________ 200_ г.

Составлен главным ветеринарным врачом _____________________

(наименование хозяйства)

при участии ______________________________________

в том, что на ферме, отделении _____________ с «___» ________

(название, №)

по «__» _________ 200__ г. нами проведена вакцинация ________

против _____________ в количестве _______ (голов животных)

Использована вакцина __________________________________

производства _________________ биофабрики, серии__________

изготовленная «___» __________ 200__ г., № госконтроля ______,

срок годности __________ 200 __ г.

Вакцину вводили ___________ в дозе __________. Место инъекции

обрабатывали __________________.

Всего израсходовано вакцины ______ л, спирта _____ л, ваты ____ г.

Главный ветврач хозяйства ________________

Ветврач отделения (фермы) ________________

Ветфельдшер _______________

Зоотехник _____________

Зав. фермой ______________

ЗАДАНИЯ ДЛЯ САМОСТОЯТЕЛЬНОЙ РАБОТЫ

1 Оформить акт о вакцинации.

2. Рассчитать количество вакцины, необходимое для иммуниза­ции поголовья.

Занятие 9. Карантинные и ограничительные мероприятия в хозяйствах, неблагополучных по инфекционным болезням животных

Цель занятия: научиться правильно оценивать эпизоотическую ситуацию и в соответствии с этим определять стратегию и тактику противоэпизоотических ме­роприятий.

Материалы и оборудование: эпизоотологический макет, таблицы и ветеринар­ные документы.

Место проведения занятия: аудитория кафедры эпизоотологии.

МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ

Ликвидировать инфекционную болезнь удается с помощью комплекса противоэпизоотических мероприятий, основанных на достоверном диагнозе и всестороннем эпизоотологическом обсле­довании. По результатам последнего составляют план ликвидации возникшей эпизоотии, включающий в себя следующие основные разделы: карантинные или ограничительные мероприятия, обез­зараживание источника возбудителя инфекции, повышение об­щей и специфической устойчивости животных, находящихся под угрозой заражения.

Конкретный перечень оздоровительных мероприятий, назна­чаемых в неблагополучном хозяйстве, определен правилами (ин­струкциями), разработанными для каждой инфекционной болез­ни, и сложившейся эпизоотической обстановкой.

Мероприятия в неблагополучном пункте. Хозяйство (ферму, на­селенный пункт), где отмечены вспышки инфекционной болезни, объявляют неблагополучным и принимают меры по ликвидации эпизоотического очага.

При любой инфекционной болезни и развитии эпизоотическо­го процесса необходимо изолировать источник возбудителя ин­фекции. С этой целью накладывают карантин или ограничения.

Карантин — это система временных мероприятий, состоящих в строгой изоляции эпизоотического очага и неблагополучного пункта. Цель карантина — предупредить распространение инфек­ционной болезни за пределы первичного очага.

В хозяйствах, где введен карантин, запрещено перегруппиро­вывать животных без согласования с ветеринарными специалиста­ми; ввозить и вывозить животных, восприимчивых к данной болезни; заготовлять и вывозить продукты и сырье животного про­исхождения, концентрированные и грубые корма; проезжать че­рез эпизоотический очаг (неблагополучный пункт), устраивать яр­марки, базары.

Чтобы установить границы карантинной территории, учитыва­ют характер возбудителя, способы его выделения из организма и механизмы передачи, восприимчивость животных, природные ус­ловия. В первую очередь необходимо правильно определить гра­ницы эпизоотического очага. Чем больше территория очага, чис­ленность сконцентрированных на ней животных и других объек­тов, тем сложнее выполнить весь комплекс необходимых мероп­риятий. Определяя границы карантинной территории, следует стремиться к их сужению. Однако если в границы эпизоотическо­го очага не будут включены объекты, где находится источник воз­будителя инфекции и действуют механизмы его передачи, то со­хранится угроза дальнейшего развития эпизоотии и ветеринарно-санитарные мероприятия окажутся неэффективными.

Перечень болезней, при которых накладывают карантин, опре­делен ветеринарным законодательством. При некоторых особо опасных инфекциях вокруг объекта карантина устанавливают уг­рожаемую зону, которая определяется территориальной близостью к эпизоотическому очагу и наличием с ним хозяйственно-эконо­мических связей, с учетом степени и широты распространения бо­лезни.

Глава администрации района по представлению соответствую­щих документов главным ветеринарным врачом района принима­ет решение об установлении и снятии карантина специальным постановлением (с последующим уведомлением вышестоящих ве­теринарных органов) (формы 5, 6).

Одновременно ветеринарная служба разрабатывает, а руковод­ство предприятий утверждает план оздоровительных мероприятий (формы 7, 8), основанных на положениях инструкции с учетом эпизоотической ситуации хозяйства. В графе «Ответственный» указывают только административно-ответственных лиц — руково­дителя и главных специалистов хозяйства. Назначение исполните­лей и лиц, ответственных за исполнение, обеспечивает эффектив­ность всей работы.

Постановление главы администрации и утвержденный план мероприятий по ликвидации возникшей инфекционной болезни высылают в адрес руководителя хозяйства, начальника управле­ния сельского хозяйства и главного ветеринарного врача района.

Ответственность за соблюдение карантинных правил несут ру­ководители хозяйств и органы местной власти, ответственность за своевременное выполнение специальных мероприятий — ветери­нарные специалисты, обслуживающие хозяйства, и главные вете­ринарные врачи районов.

Карантин снимают после полной ликвидации инфекционной болезни с учетом длительности инкубационного периода заболе­вания, после заключительных ветеринарно-санитарных мероприятий.

При некоторых особо опасных инфекционных болезнях (ящур, африканская чума свиней и др.) после снятия карантина в хозяй­стве на определенный срок вводят ограничения, в частности, в от­ношении использования продуктов животноводства, помещений, навоза, пастбищ и т.д.

Ограничения накладывают в эпизоотическом очаге и неблагопо­лучном пункте при инфекционных болезнях, не имеющих тенден­ции к широкому распространению. Порядок введения и снятия ограничений такой же, как и при карантине, оздоровительные ме­роприятия назначают согласно действующим инструкциям.

Чтобы установить характер течения болезни, предупредить ее дальнейшее развитие и выявить скрыто больных животных, в эпи­зоотическом очаге и неблагополучном пункте прибегают к тща­тельному клиническому обследованию всех животных, восприим­чивых к данной болезни. Одновременно при необходимости опре­деленное число животных исследуют и другими методами (напри­мер, серологическим). По результатам исследований животных разделяют на три группы:

явно больные;

подозрительные по заболеванию с неясными симптомами бо­лезни или повышенной температурой тела;

подозреваемые в заражении, клинически здоровые, но воспри­имчивые к данной инфекции и содержавшиеся вместе с больными животными.

Группу явно больных животных немедленно изолируют от об­щего стада, лечат или отправляют на вынужденный убой (уничто­жают).

Животных, подозрительных по заболеванию, так же как и явно больных, немедленно изолируют, ежедневно исследуют клиничес­ки, уточняют диагноз и лечат, если лечение эффективно или не запрещено.

Чтобы предупредить распространение болезни, животных, по­дозреваемых в заражении инфекцией, против которой разработана специфическая профилактика, иммунизируют вначале пассивно, а впоследствии активно. В случае заболеваний, против которых средства иммунизации не разработаны, за животными устанавли­вают постоянное ветеринарное наблюдение с диагностическими исследованиями.

Мероприятия в угрожаемой зоне. Местные органы власти, руко­водители хозяйств, ветеринарные специалисты принимают меры против возникновения заболевания среди животных. Эти меры включают в себя: охрану хозяйств от заноса возбудителя болезни, прекращение хозяйственных связей с неблагополучным пунктом, учет и иммунизацию всех животных, восприимчивых к данной болезни, ветеринарно-санитарный надзор за вывозом животных, продуктов и сырья животного происхождения, более строгое вы­полнение общих профилактических и санитарных мероприятий.

Форма 5

Проект решения об установлении карантина (ограничений)

Администрация района____________________

Решение № _____________________ 200_ г.

Об установлении карантина (ограничений) и cf мерах по ликвидации ——————

(название болезни) Заслушав информацию главного ветеринарного врача района———————————

и рассмотрев материалы о появлении « ——» ———————— 200—г.

.______________________ на (в)————————————————————

(название болезни)

администрация в соответствии с Законом РФ «О ветеринарии» и инструкцией «О

мерах профилактики и ликвидации ——————————————————————————

(название болезни)

_________________________ от ____ № ____ постановила:

1.

2.

3.

4.

И т. д.

Глава администрации района _________________

Секретарь ___________________________——

Форма 6

Проект решения о снятии карантина (ограничений)

с населенного пункта ______________________

Администрация района ____________________

Решение № ______________________ 200__ г.

Заслушав информацию главного ветеринарного врача района ___________

и рассмотрев материалы проведенных противоэпизоотических мероприятий по

ликвидации ______________________________——————————

——————————————————————————————————————————————————~~———————————————————-—— э

в соответствии с действующей инструкцией постановил:

1.

2.

3.

Глава администрации района _________________

Секретарь ____________________________

Форма 7

Согласован Утвержден

Главный врач Санэпиднадзора Руководитель предприятия

Подпись_______Дата_______ Подпись________Дата________

Календарный план мероприятий по ликвидации

Подписи членов комиссии:

Форма 8

Согласован с гл. ветврачом района Утвержден администрацией района

План ветеринарно-профилактических и противоэпизоотических мероприятий по ____________________ на 200 _г.

________________(наименование хозяйства)_________________

План обсужден и утвержден на совете (правлении, дирекции и т. д.) хозяйства Дата.__________________ Подписи_____________

ЗАДАНИЯ ДЛЯ САМОСТОЯТЕЛЬНОЙ РАБОТЫ

1. На эпизоотологическом макете определить место нахожде­ния эпизоотического очага, неблагополучного пункта, угрожае­мой зоны.

2. Составить план оздоровительных и профилактических ме­роприятий.

3. Написать проект постановления о наложении карантина при возникновении ящура.

Занятие 10. Комплексный метод лечения инфекционно-больных животных с использованием специфических биопрепаратов

Цель занятия: изучить различные схемы лечения животных при массовых алиментарных и респираторных инфекционных болезнях.

Материалы и оборудование: аппараты для получения аэрозолей лекарственных средств (САГ, ДАГ), антибиотики, специфические сыворотки, шприцы, стерили­заторы.

Место проведения занятия: хозяйство, неблагополучное по алиментарным и респираторным болезням молодняка.

МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ

Индивидуальные и групповые методы лечебно-профилактических обработок животных, больных пневмоэнтеритами. Респираторные и желудочно-кишечные заболевания молодняка сельскохозяйствен­ных животных, так называемые пневмоэнтериты, особенно часто встречаются при промышленной технологии содержания и эксп­луатации животных и наносят значительный экономический ущерб хозяйствам.

Заболевание возникает на фоне снижения резистентности организма, что обусловлено нарушением зоогигиенических норм содержания и недостатками в кормлении взрослого поголовья и имеет полиэтиологическую природу. Основные этиологические факторы пневмоэнтеритов—циркуляция среди поголовья живот­ных вируса парагриппа, аденовируса, хламидий, микоплазм и па­тогенных бактерий некоторых видов.

Больных животных лечат в условиях, не только исключающих воздействие этиологического фактора, но и обеспечивающих ак­тивное участие организма в ликвидации развившейся патологии, что достигается прежде всего диетическим кормлением и создани­ем оптимальных зоогигиенических условий в изоляторах.

Чтобы обеспечить нужный эффект, лечение должно быть комплексным и системным, т. е. включать в себя этиотропную, патогенетическую, симптоматическую терапию: применяют анти­бактериальные средства, а также препараты, повышающие иммунобиологическую резистентность организма, регулирующие нерв­ную трофику, устраняющие кислородную недостаточность, сни-маюшиб интоксикацию, корректирующие расстройства кислот­но-щелочного и водно-солевого обмена, улучшающие деятель­ность сердечно-сосудистой системы и желудочно-кишечного тракта.

Чтобы нормализовать функцию пищеварения, назначают вод­но-голодную диету: из рациона при первых признаках заболева­ния исключают молозиво, заменяя его водно-солевыми раствора­ми чаем, настоями лечебных трав (зверобоя, березовых листьев, тысячелистника).

Чтобы подавить жизнедеятельность возбудителя болезни, ново­рожденным телятам в качестве этиотропных средств прописывают антибактериальные препараты широкого спектра действия. При­менение иммуномодуляторов (нуклеинат натрия, метилурацил, пентоксил и др.) значительно повышает эффективность комплекс­ной терапии. При индивидуальном лечении больных с желудочно-кишечными инфекциями эффективны также бактериофаги.

Большое значение, особенно при респираторных болезнях, имеют также групповые методы лечения и профилактики, прежде всего аэрозольные обработки.

Животных обрабатывают аэрозолями в камерах, специально оборудованных боксах, помещениях или непосредственно на фер­мах. Необходимые требования ко всем помещениям, предназна­ченным для аэрозольных обработок, — герметичность и наличие приточно-вытяжной вентиляции. Объем воздуха для телят должен составлять l...l,5 м3, овец и свиней — 0,3...0,8 м3 на голову. В про­изводственных помещениях лучше распылять растворы препара­тов с помощью струйного аэрозольного генератора (САГ). Гене­раторы подвешивают на высоте 1,2...1,3 м от пола, на расстоянии 10 м друг от друга. Число генераторов для конкретного помещения определяют из ориентировочного расчета: один САГ на-120м2 площади пола.

Метод групповой аэрозольной химиотерапии применяют после установления диагноза.

В животноводческих комплексах, неблагополучных по пневмо-энтеритам, при лечении большого количества больного молодня­ка (телят, ягнят, поросят) хорошие результаты дает применение аэрозолей специфических средств (гипериммунных сывороток и сывороток реконвалесцентов) совместно с антибиотиками и анти­септиками широкого спектра действия. Далее приведены некото­рые схемы лечения респираторных болезней телят. -

Схема 1. Бициллин-3 внутримышечно по 20 тыс. ЕД/кг мас­сы тела трехкратно с интервалом 3 дня.

Ингаляция аэрозолей сыворотки крови реконвалесцентов (2 мл/м3) в сочетании с норсульфазолом натрия (0,3 г/м3) трех­кратно с интервалом 24 ч (утром).

Ингаляция аэрозолей йодида алюминия 1 раз в сутки в течение 5 дней (вечером).

Схема 2. Бициллин-3 внутримышечно по 20 тыс. ЕД/кг мас­сы трехкратно с интервалом 3 дня.

Ингаляция аэрозолей норсульфазола натрия (0,2 г/м3) и окситет-рациклина (500 тыс. ЕД/м3) 1 раз в сутки в течение 4 дней (утром).

Ингаляция аэрозолей хлорида йода (0,5 мл/м3) 1 раз в сутки в течение 6 дней (вечером).

Схема 3. Ингаляция аэрозолей сыворотки реконвалесцентов (2 мл/м3) в сочетании с норсульфазолом натрия (0,3 г/м3) трех­кратно с интервалом 48 ч (утром).

Ингаляция аэрозолей молочной кислоты 1 раз в сутки (0,5 мл/м3) в течение 6 дней (вечером).

Обеспечение безопасности сотрудников и охрана окружающей среды при групповых обработках животных. Чтобы предотвратить нежелательное влияние ингаляционных аэрозолей на организм людей и окружающую среду, соблюдают следующие меры предос­торожности:

к работе по аэрозольной обработке животных допускают толь­ко лиц, снабженных спецодеждой и прошедших специальный ин­структаж;

ветеринарные специалисты строго контролируют все работы по подготовке и проведению аэрозольных обработок животных;

во время распыления антибактериальных препаратов строго запрещено присутствие в помещении обслуживающего персонала;

в конце работы помещение обрабатывают 4%-м раствором пер-манганата калия аэрозольным методом (30...50 мл/м3, экспозиция 10...15 мин), затем тщательно очищают и дезинфицируют.

ЗАДАНИЕ ДЛЯ САМОСТОЯТЕЛЬНОЙ РАБОТЫ

Решить эпизоотологическую задачу.

На ферме 450 коров, родильное отделение, профилакторий с изолированными секциями. В одной из секций у телят возник ко-либактериоз. Диагноз подтвержден бактериологическими иссле­дованиями. Разработать мероприятия по лечению телят и ликви­дации заболевания на ферме.

Занятие 11. Устройство и функционирование ветеринарно-санитарных объектов в животноводческих хозяйствах

Цель занятия: изучить устройство и работу ветеринарно-санитарных пропуск­ников, дезбарьеров в животноводческих хозяйствах.

Материалы и оборудование: санпропускник, дезбарьеры въездной и входной, изолятор, карантинные помещения.

Место проведения занятия: хозяйство.

МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ

Ветеринарно-санитарный пропускник—это группа сблокиро­ванных помещений, в которую входят:

санитарный блок с общей проходной, гардеробом для верхней одежды, туалетом, раздельными помещениями для женщин и мужчин (в которых предусмотрены шкафчики для личной одеж­ды), душевой (из расчета 1 кабина на 5 человек). При входе в са­нитарный блок со стороны «чистой» и «грязной» зон оборудованы санитарные кюветы с ковриками, обильно заправленными дезин­фицирующим раствором;

блок для обработки белья, оборудованный огневыми паровоздушными пароформалиновыми камерами (ОППК), ваннами с дезраствором для замачивания спецодежды или стационарными пароформалиновыми камерами;

блок служебных помещений, который состоит из комнат для заведующего комплексом, бригадиров ферм, ветеринарного пер­сонала, столовой и комнаты отдыха;

дезинфекционный блок для обработки транспорта, разме­щенный в отапливаемом помещении, соединенном с санблоком. В дезблоке оборудуют углубленную ванну, которую запол­няют дезраствором. Длина ванны «по зеркалу» не менее 9 м, ширина З...4м в зависимости от габаритных размеров автома­шин, используемых в данном хозяйстве. Глубина слоя дезраствора не менее 25 см. По днищу ванны продольно уложены трубы отопления, чтобы поддерживать в холодное время года температуру дезраствора в необходимых пределах. Для дезобработки кузовов автомашин (в необходимых случаях) в дезблоке предусмотрены специальная емкость с рабочим раствором дезсредства и гидропульты.

На фермах с внешним грузооборотом менее 20т/сут вместо дезблока для обработки транспорта можно оборудовать въездной дезбарьер (под навесом с воротами) с подогревом.

Санпропускник, либо сблокированный с производственным зданием, либо построенный отдельно, может выполнять функцию социально-гигиенического объекта.

По обе стороны каждого животноводческого помещения уста­навливают дезванны длиной 1,5 м, шириной, на 20 см превышаю­щей ширину двери, глубиной не менее 20 см (для дезинфекции и обмывания обуви).

Дезбарьеры (рис. 4), ванны, дезковрики заправляют растворами и периодически дезинфицируют дороги с помощью автодезуста-новок.

Рис. 4. Схемы дезбарьеров:

А — входного; Б— въездного

О сновные животноводческие объекты ветеринарного и ветеринарно-санитарного назначения представлены в таблице 2.

Продолжение

Продолжение

ЗАДАНИЕ ДЛЯ САМОСТОЯТЕЛЬНОЙ РАБОТЫ

Разработать проект ветеринарно-санитарного пропускника для молочного комплекса на 800 дойных коров.

Занятие12. Ветеринарно-санитарная обработка транспортных средств

Цель занятия: изучить технологию обеззараживания железнодорожных вагонов и других транспортных средств после перевозки в них животных и сырья жи­вотного происхождения.

Материалы и оборудование: установка ЛСД, ДУК, ручные опрыскиватели, средства личной профилактики.

Место проведения занятия: промывочные пункты (ПП), дезопромывочные пункты (ДПП) или дезопромывочные станции (ДПС).

МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ

Обеззараживание железнодорожных вагонов. Вагоны после пе­ревозки в них животных, продуктов и сырья животного происхож­дения подлежат обязательной санитарной обработке: их очищают, промывают горячей водой и в некоторых случаях дезинфицируют.

Для санитарной обработки вагонов на сети железных дорог МПС организованы промывочные пункты, дезинфекционно-про-мывочные пункты и дезинфекционно-промывочные станции (рис. 5), на которых оборудованы ветеринарно-санитарные про­пускники, помещение для приготовления рабочих растворов, площадки для обработки вагонов, биотермического обеззараживания или печи для сжигания навоза, дезкамеры для обеззараживания спецодежды, соответствующая сеть канализации и сооруже­ния для очистки и обеззараживания сточных вод.

Рис. 5. Примерный план-схема дезопромывочной станции (ДПС):

7—административное здание; 2—депо; 3— контрольный резервуар; 4— биофильтр; 5— при­емный резервуар; 6— отстойник; 7—дезинфекторская; 8— ограждения; 5 — платформа вто­рой категории; 10— железнодорожные пути; 11—котельная; 12— автомобильные дороги; 13—площадка первой категории; 14— платформа первой категории; 15— площадка второй категории

По первой категории обрабатывают вагоны после перевозки клинически здоровых животных, в том числе птиц, из благополуч­ных пунктов; мяса, сырья боенского происхождения или сырья небоенского происхождения, но исследованного на сибирскую язву.

Вагоны тщательно очищают от навоза, мусора, остатков груза и промывают горячей водой (70...80 °С) под давлением 0,б.-.1,0 МПа до тех пор, пока стекающая жидкость не станет прозрачной.

По второй категории обрабатывают вагоны после перевозки в них животных, среди которых в пути следования или при выгруз­ке были обнаружены инфекционно-больные или трупы (за ис­ключением случаев, указанных для вагонов третьей категории), а также сырья животного происхождения, загрязненного возбудите­лями инфекционных болезней, кроме спорообразующих микро­организмов.

Вагоны очищают, промывают и тщательно дезинфицируют та­ким образом, чтобы каждая точка поверхности орошалась дезраствором не менее 4...5 раз.

По третьей категории обрабатывают вагоны после перевозки животных, среди которых в пути следования обнаружены больные сибирской язвой, эмкаром, сапом, столбняком, эпизоотическим лимфангитом, брадзотом, орнитозом птиц, подозреваемые в пере­численных заболеваниях или павшие от этих болезней, сырья не­боенского происхождения и др.

В этом случае вагоны обрабатывают только на ДПС, оборудо­ванных специальной системой очистных сооружений с термичес­ким обеззараживанием сточных вод и печью для сжигания навоза и мусора.

В дезинфекционной практике все большее признание получает аэрозольный метод обработки.

Подготовка вагонов к дезинфекции аэрозолями такая же, как и при дезинфекции растворами. Дезинфицирующим раствором обрабатывают вагон однократно в дозе не более 100 мл на 1 м3 вагона с помощью генератора ТАН.

Обеззараживание вагонов-рефрижераторов. При обработке по первой категории из рефрижераторов удаляют остатки льда, соли, опилок и мусора, промывают вагоны горячей водой под давлени­ем и затем дезинфицируют, так как обработка горячей водой, тем­пература которой у стены вагона снижается до 40...50 °С, не очи­щает поверхности от плесневых грибов.

При обработке по второй категории рефрижераторы дезинфи­цируют однократно одним из следующих дезсредств:

гипохлором или раствором гипохлорита кальция, содержащи­ми 3 % активного хлора;

2%-м раствором формальдегида при расходе не менее 0,5 л/м2 и экспозиции 1 ч;

5%-м (по ДВ) раствором глутарового альдегида при расходе О 75 л/м2 и экспозиции 1 ч;

препаратом Глак в 0,2%-й концентрации при расходе 0,5 л/м2 и экспозиции 3 ч.

По окончании обеззараживания рефрижераторы промывают горячей водой и просушивают.

Изотермические вагоны, в которых обнаружили мясо или дру­гие грузы, пораженные плесенью, а также испорченные остатки мясных продуктов, после очистки и промывки дезинфицируют гипохлором или раствором гипохлорита кальция, содержащими 5 % активного хлора, или 4%-м глутаровым альдегидом из расчета 1л/м2. Через 1 ч после дезинфекции вагоны вторично промывают горячей водой и просушивают.

Рефрижераторы, в которых после обработки остался рыбный или другой посторонний запах, дезодорируют, промывая горячей водой с кальцинированной содой или другими моющими сред­ствами, и орошают гипохлором или раствором гипохлорита каль­ция, содержащими 5 % активного хлора, из расчета 1 л/м2 площа­ди. Раствор наносят двукратно с интервалом 30 мин. После вто­рого нанесения двери плотно закрывают на 1 ч, затем все "обрабо­танные поверхности промывают горячей водой и вагон просушивают.

Обеззараживание автомобильного транспорта. Автомашины пос­ле выгрузки животных, а также шкур, костей и другого сырья, пе­ревозимого без упаковки, очищают и дезинфицируют 2%-м ра­створом формальдегида, 2%-м горячим раствором гидроксида на­трия, гипохлором, растворами хлорной извести, гипохлорита на­трия, содержащими 2 % активного хлора. В случае перевозки объектов, инфицированных высококонтагиозными, особенно ви­русными, возбудителями, автомобили дезинфицируют в помеще­ниях: сарае, пустом складе, гараже или под полиэтиленовой плен­кой. Используют генераторы ДАГ, САГ или насадки ПВАН, ТАН. Во время дезинфекции двери машины должны быть открытыми, температура воздуха не ниже 10 °С, относительная влажность 60...80 %. Лучше всего применять формалин из расчета 20 мл/м3 воздуха.

Обеззараживание самолетов. Самолеты дезинфицируют после перевозки в них инфекционно-больных животных или сырья животного происхождения, доставленного из мест, неблагополучных по инфекционным болезням, а также после перевозки животных, зараженных паразитами, или инвазированного сырья животного происхождения. В обоих случаях наиболее пригодны растворы метилбромида (бромметана) и формальдегида в аэрозольном состоя­нии.

ЗАДАНИЕ ДЛЯ САМОСТОЯТЕЛЬНОЙ РАБОТЫ

Описать дезинфекцию железнодорожных вагонов по первой, второй и третьей категориям; дезинфекцию автомобильного транспорта.

Занятие 13. Дезинфекция животноводческих объектов

Цель занятия: ознакомиться с требованиями, предъявляемыми к дезинфици­рующим средствам, изучить устройство аэрозольных генераторов и машин, при­меняемых для дезинфекции.

Материалы и оборудование: стенд с химическими дезинфектантами; САГ-1, ДАГ-2, ПАГ, ЦАГ.

Место проведения занятия: аудитория кафедры эпизоотологии (первая часть занятия — по изучению дезсредств); городская ветеринарно-санитарная станция или дезопромывочный пункт (вторая часть занятия—по изучению дезинфекци­онной техники).

МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ

Химические дезинфицирующие средства (фенолсодержащие пре­параты и альдегиды). Выбор средств и метода обеззараживания (влажный или аэрозольный) зависит как от вида предстоящей де­зинфекции (профилактическая, текущая, заключительная), так и от материалов, из которых построено помещение. Некоторые ма­териалы сами вступают в химическое взаимодействие с дезинфи­цирующими средствами, уменьшая тем самым обеззараживающую способность последних, поэтому норма расходования дезинфици­рующих средств колеблется: например, для полного орошения бревенчатых, дощатых, бутовых или кирпичных поверхностей расход дезинфектанта составит 1 л/м2; приспособленных, саман­ных, земляных, глинобитных—2 л/м2, а поверхностей, покрытых масляными красками, — только 0,5 л/м2.

Химическое дезинфицирующее средство должно удовлетворять следующим требованиям:

обладать достаточной бактерицидностью — надежно обеззара­живать разнообразные объекты без их порчи;

не иметь стойкого неприятного запаха;

хорошо растворяться в воде или давать с ней стойкие эмульсии;

проявлять дезинфицирующее действие в любой среде;

быть дешевым и транспортабельным.

Из группы фенолов для дезинфекции применяют серно-карболовую смесь, креолин, нафтализол, ксилонафт-5, феносмолин, фенолят натрия, оксидифенолят натрия.

Серно-карболовую смесь готовят из неочищенной карболовой и серной кислот. Используют 3...10%-е водные растворы.

Креолин — маслянистая жидкость темно-коричневого цвета;

применяют в виде горячей (60...70°С) 5%-й водной эмульсии при

неспоровых инфекциях для обеззараживания скотных дворов, птичников и предметов ухода за животными.

Нафтализол — раствор трикреозола в нафтеновом мыле. Для дезинфекции применяют 3...10%-е горячие водные растворы, для дезинсекции — 5...10%-е.

Ксилонафт-5 представляет собой маслообразную жидкость темно-коричневого цвета. Для профилактической дезинфекции используют горячую 2...3%-ю эмульсию ксилонафта, для текущей и заключительной — 5%-ю.

феносмолин — смесь фенольной смолы и 20%-го водного ра­створа гидроксида натрия в соотношении 1:1. При смешивании получают пастообразную массу, которая с водой дает светло-ко­ричневую стойкую эмульсию, содержащую до 60 % ДВ. Применя­емая для дезинфекции 8%-я эмульсия не пачкает животноводчес­ких конструкций и не вызывает коррозии металла, за исключени­ем алюминия.

фенолят натрия — один из отходов фенольного производства, представляет собой жидкость темно-коричневого цвета, дающую с водой стойкую эмульсию молочного цвета. В состав входит фено­лят натрия — не менее 46 %, свободная щелочь — до 20 %. Приме­няют для профилактической, текущей и заключительной дезин­фекции животноводческих объектов в виде 4...5%-й водной эмульсии при экспозиции 3 ч.

Оксидифенолят натрия (препарат Ф-5) — белый порошок, хо­рошо растворимый в воде. Раствор Ф-5 не придает специфическо­го запаха мясопродуктам и может быть использован при высоких и низких температурах окружающего воздуха. Применяют при по­белке загрязненных плесенью холодильников, сушилок и складов, предназначенных для хранения мясопродуктов. Для приготовле­ния побелочной смеси к 2...3 %-му раствору оксидифенолята натрия добавляют мел или известь до получения массы без комков.

Формальдегид — бесцветный газ с резким запахом, сильно раз­дражающим слизистые оболочки глаз и дыхательных путей, хоро­шо растворим в воде. 40%-й водный раствор формальдегида назы­вается формалином. Формальдегид для дезинфекции применяют в водных растворах и в газообразном состоянии. Для орошения жи­вотноводческих помещений используют следующие растворы:

при вирусном заражении 1...2%-й, вегетативных формах бакте­рий 2...3%-й, споровых формах 5%-й (во всех случаях экспозиция 3 ч). Газообразный формальдегид чаще используют для обеззара­живания спецодежды и обуви в параформалиновых камерах и на птицефабриках для дезинфекции инкубационных яиц, возвратной тары.

Смеси формальдегида применяют, когда раствор одного фор­мальдегида не действует губительно на микроорганизмы, напри­мер, находящиеся под слоем навоза. Установлено, что раствор, со­держащий 2 % формальдегида и 1 % гидроксида натрия, оказывает бактерицидное действие на возбудителя трихофитии; раствор, со­держащий 3 % формальдегида и 3 % гидроксида натрия, — на воз­будителя туберкулеза.

Глутаровый альдегид (группа диальдегидов) — жидкость корич­невого цвета со слабым запахом, содержит около 20 % ДВ. Для де­зинфекции применяют: при вегетативных формах бактерий и ту­беркулезе 1%-й раствор, для уничтожения споровых форм 2%-й.

Окись этилена (ОЭ), или этиленоксид, — бесцветная летучая жидкость с резким запахом. Газ ОЭ в смеси с воздухом легко вос­пламеняется, характеризуется хорошей бактерицидной и инсекти-цидной активностью. В связи с высокой огне- и взрывоопасностью ОЭ применяют в смеси с бромметаном.

Бромметан (БМ) — бесцветная жидкость со слабым эфирным запахом. БМ стабилен при хранении (выпускают в стальных бал­лонах), не изменяется под воздействием света, влаги и тепла. БМ — один из основных инсектицидов, используемых для фуми­гации грузов на карантинных пунктах и уничтожения вредителей продовольственных товаров.

Смесь ОКЭБМ представляет собой стойкую однородную жид­кость. Газ ОКЭБМ при смешивании с воздухом в любых соотно­шениях неогнеопасен, не портит кожаные и меховые изделия, ткани, сырье растительного и животного происхождения, полиро­ванные и окрашенные поверхности; характеризуется высокой проникающей способностью. Ввиду большого удельного веса ОКЭБМ рекомендуют для обеззараживания глубоких слоев почвы сибиреязвенных скотомогильников: газ нагнетают под пленку по­крытой почвы. ОКЭБМ—сильнодействующий яд, поэтому при работе с ним необходимо надевать противогазы.

Озон, получаемый на озонотронах различных систем, широко применяют для дезинфекции инкубационных яиц. Лучшие ре­зультаты дает влажная дезинфекция: инкубационные яйца ороша­ют в потоке жидкости, подогретой до 40...45 °С, насыщенной озо­ном до концентрации З...5мг/л. Озон служит также хорошим средством обеззараживания сточных вод животноводческих поме­щений.

В ветеринарии большое внимание уделяют применению раз­личных химических и биологических препаратов в состоянии аэрозолей. Условия успешной аэрозольной дезинфекции: герме­тичность помещений, температура среды не ниже 10°С, относи­тельная влажность в пределах 60...80 %.

Аэрозоли сильнодействующих ядовитых препаратов можно применять для одновременной дезинфекции воздуха и поверхнос­тей в помещениях; аэрозоли слабоядовитых препаратов, но с хо­рошей бактерицидной активностью — для дезинфекции воздуха помещений в присутствии животных.

Механизмы и аппараты, применяемые для дезинфекции. Ветеринарно-санитарную технику по характеру выполняемых работ де­лят на 4 группы: специализированные дезинфекционные маши­ны; аппараты для орошения кожного покрова животных; генера­торы и комплекты аэрозольные; дезинфекционные камеры.

Специализированные дезинфекционные машины — это ветеринарно-дезинфекционная машина ВДМ-2, автомобильно-дезин­фекционный агрегат АД-Ф-20-1, автомобильно-дезинфекцион­ная установка АДУ, автодезустановка ДУК, дезинфекционная установка ЛСД, установка дезинфекционная передвижная УДП-М, установка дезинфекционная самоходная ДУС, дезинфекцион­ная передвижная очистительно-моющая машина ОМ-22614 и ОМ-22613.

Аппараты для обработки кожного покрова животных включают в себя: штангу разборную распылительную ШРР, опрыскиватель сборный автоматический ОСА-2, устройство для опрыскивания животных УОЖ-2, станок для обработки хряков и свиноматок СОХ-Ф-1.

В ветеринарной практике используют такие аэрозольные генера­торы, как струйный аэрозольный генератор (САГ), дисковый аэрозольный генератор (ДАГ), пневматический аэрозольный ге­нератор (ПАГ), АГ-УД-2, а также специальные форсунки с распы­лителями трех типов и аэрозольные комплекты ПАК-1 и ПАК-2.

Дезинфекционные камеры применяют для обеззараживания сы­рья животного происхождения (шерсти, щетины, мехового сы­рья), спецодежды, обуви, постельных принадлежностей, различ­ных шерстяных, суконных, ватных, кожаных изделий, мягкого инвентаря и в некоторых других случаях.

Для камерной дезинфекции используют: огневые паровоздушные пароформалиновые камеры—стационарную ОППК-1 и пе­редвижную ОП ПК-2, смонтированную на автоприцепе ГАЗ-704, камеру дезинфекционную КС-3, камеру дезинфекционную паро-формалиновую ВФС-2/1,3, камеру дезинфекционную ВФС-3/1,8., электрокамеру дезинфекционную ВФЭ-2/0,9 и автопередвижные камеры автономного действия ДА-2 и ДА-3 с собственным котлом-парообразователем.

ЗАДАНИЕ ДЛЯ САМОСТОЯТЕЛЬНОЙ РАБОТЫ

Приготовить серно-карболовую смесь, побелочную смесь с оксидифенолятом натрия.

Занятие 14. Щелочи и кислоты, используемые для дезинфекции

Цель занятия: изучить физико-химические и бактерицидные свойства щело­чей и кислот, освоить приготовление дезинфицирующих растворов, научиться определять процентное содержание гидроксида натрия в дезрастворе.

Материалы и оборудование: градуированные пипетки на 10 мл, химические стаканы, колбы на 250...500 мл, цилиндры на 500...1000 мл, бюретки со стеклянным краником, глазные пипетки; реактивы: исследуемый раствор гидроксида на­трия; 0,5 н. раствор соляной кислоты; 0,1%-й раствор метилоранжа, фенолфтале­ин, исследуемый пикель, 0,1 н. раствор гидроксида натрия, формалин. Место проведения занятия: аудитория кафедры эпизоотологии.

МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ

Щелочи. Это группа хорошо растворимых в воде оснований, создающих в водном растворе большую концентрацию гидроксильных ионов. К дезинфицирующим веществам из щелочей от­носят гидроксид натрия, гидроксид калия, негашеную известь, соду, поташ, золу, мыло.

Щелочи омыляют жиры, денатурируют белки до образования альбуминатов, разрушают углеводы, тем самым нарушая нормаль­ную жизнедеятельность живой клетки и приводя к ее гибели.

Гидроксид натрия — бесцветное, очень гигроскопичное крис­таллическое вещество, хорошо растворимое в воде. В продажу гидроксид натрия поступает в виде натрового щелока, который содержит не менее 42 % NaOH, или в твердом виде с содержанием 92...95 % NaOH. Растворы готовят непосредственно перед приме­нением, используют для дезинфекции подогретыми до 70...80°С:

2...3%-е—при вирусных инфекциях, 4...6%-е—при бактериаль­ных инфекциях, 1%-й—для обеззараживания кожного покрова животных, больных (переболевших) ящуром или другими вирус­ными заболеваниями.

Гидроксид калия представляет собой бесцветное твердое непроз­рачное кристаллическое вещество. Для дезинфекции препарат ис­пользуют в тех же концентрациях, что и гидроксид натрия.

Гидроксид кальция, или гашеная известь, — рыхлый белый поро­шок, плохо растворимый в воде. Первоначально получаемая нега­шеная известь приобретает бактерицидность только после гаше­ния водой. Если для гашения расходуют 70...100% воды к массе извести, то получают гашеную известь в виде белого рыхлого по­рошка. При увеличении количества воды получают известковую взвесь. Взвеси гашеной извести применяют для побелки различ­ных объектов.

Каспос, или каустифицированная содопоташная смесь, — жид­кость желтоватого цвета без запаха, содержащая 40...42 % гидро­ксида натрия или калия. Для дезинфекции помещений применя­ют растворы, концентрация которых в 1,5 раза превышает кон­центрацию растворов гидроксида натрия.

Ниртан — порошок желтоватого цвета со слабым специфичес­ким запахом. Препарат не корродирует металлы, малотоксичен, что позволяет применять его на комплексах в присутствии животных. Ниртан с успехом используют для дезинфекции транспорт­ных средств, спецодежды, а также обработки кожного покрова животных и сосков коров после доения.

Кальцинированная сода — мелкий кристаллический порошок белого цвета, хорошо растворимый в воде. Этот дешевый пре­парат с успехом используют для отмывания жирных поверхнос­тей на мясокомбинатах, молочных, кожевенно-сырьевых заво­дах и шерстеперерабатывающих фабриках. В растворах кальци­нированной соды можно кипятить в течение 1,5...2 ч белье, ха­латы, металлические и другие предметы, обсемененные споровыми возбудителями.

Кислоты. Для дезинфекции применяют серную, соляную, ща­велевую, молочную, уксусную кислоты.

Серную кислоту используют для приготовления серно-карболовой смеси (1 : 3). Техническую серную кислоту добавляют к ра­створу хлорной извести до 5 %, чтобы усилить бактерицидное дей­ствие на споровые формы возбудителей. 5%-ми растворами сер­ной кислоты обеззараживают полы в помещениях для животных, кормушки, навоз.

Соляная кислота — водный раствор хлористого водорода; тех­ническая соляная кислота — прозрачная жидкость желтоватого цвета, которую смешивают с водой в любых соотношениях. При­меняют для дезинфекции сибиреязвенного кожсырья методом пикелевания (на 100л воды добавляют 2,5кг соляной кислоты и 10 кг поваренной соли).

Щавелевую кислоту — бесцветное кристаллическое вещество — применяют в виде аэрозолей и водных растворов, которые нано­сят на поверхность дезинфицируемых объектов (помещений, ки­шечного сырья) при ящуре и других вирусных болезнях.

Молочная кислота — сиропообразная жидкость коричневого цвета, состоящая из 75 % молочной кислоты и 15 % ангидрида этой же кислоты. Применяют для дезинфекции животноводчес­ких помещений, зараженных вегетативными формами микроорга­низмов. Помещения можно дезинфицировать аэрозольным мето­дом в присутствии животных, особенно при респираторных болез­нях: 5 мг молочной кислоты и 10 мг глицерина на 1 м3 каждые З...4ч.

ЗАДАНИЯ ДЛЯ САМОСТОЯТЕЛЬНОЙ РАБОТЫ

1. Определить процентное содержание гидроксида натрия в де­зинфицирующем растворе.

Градуированной пипеткой вносят в стаканчик 10мл исследуемого раствора гидроксида натрия, затем добавляют 2...3 капли 0,1%-го водного раствора метил­оранжа и из бюретки титруют 0,5 н. раствором соляной кислоты. Первоначальное желтое окрашивание раствора должно перейти в розовое.

Расчет. Процентное содержание щелочи рассчитывают следующим обра­зом:

а-0,02- 100/10,

где а—количество миллилитров соляной кислоты, пошедшее на титрование;

0,02 — поправка; 100 — пересчет в проценты; 10 — количество исследуемого ра­створа щелочи, мл.

2. Приготовить 3%-й щелочной раствор формальдегида.

В 60л воды растворяют 3 кг гидроксида натрия.

Количество формальдегида в формалине определяют заранее или берут пара-форм, содержащий не менее 95 % формальдегида. Если в формалине содержится 40 % формальдегида, то для приготовления раствора, содержащего 3 % формаль­дегида. необходимо

100-3/40 =7,6 л.

Доливают воду до 100л.

3. Определить процентное содержание соляной кислоты в пикеле.

В химический стакан наливают 10мл пикеля, добавляют 1...2 капли 1%-го ра­створа фенолфталеина. Содержимое стакана титруют 0,1 н. раствором гидроксида натрия до появления розового окрашивания, не исчезающего в течение 30с.

Расчет. Допустим, что для нейтрализации взятых 10 мл пикеля израсходова­но 69мл 0,1 н. раствора щелочи. Содержание щелочи в каждом миллилитре 0,1 н. раствора эквивалентно 0,00365 г соляной кислоты. Значит, в 10 мл пике­ля содержится 0,00365 • 69 = 0,25185 г соляной кислоты, а в 1 мл — в 10 раз меньше: 0,25185/10 = 0,025185 г. Умножая подсчитанное количество соляной кис­лоты в 1 мл на 100, получаем процентное содержание соляной кислоты в исследу­емом пикеле (0,025185 : 100 = 2,5 %).

Занятие 15. Хлорсодержащие препараты и окислители, используемые для дезинфекции

Цель занятия: изучить химические и физические свойства хлорсодержащих препаратов и окислителей; научиться определять процентное содержание актив­ного хлора в хлорной извести.

Материалы и оборудование: хлорная известь, весы с разновесами, колбы, бю­ретки, лабораторные пробирки, ступки с пестиками, мерный цилиндр на 0,5...! л, банка с притертой пробкой, пипетки на 5 и 10мл, колбы плоскодонные на 250мл (с бусинами и без), глазные пипетки, реактивы: 5%-й раствор йодида калия, хи­мически чистая соляная кислота и разведенная в соотношении 1 :5; 0,01 и 0,1 н. растворы тиосульфата натрия, 1%-й раствор крахмала; кристаллический йодид ка­лия; кристаллический тиосульфат натрия.

Место проведения занятия: аудитория кафедры эпизоотологии.

МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ

Хлорная известь — белый порошок с резким запахом хлора, плохо растворимый в воде. Хлорную известь часто используют для дезинфекции животноводческих помещений, их оборудования, прилегающих территорий, а также обеззараживания сточных и питьевых вод. Применяют в трех видах: сухом, в виде хлорно-известковой взвеси и осветленных растворов. Дезинфицирующая способность хлорной извести зависит от процентного содержания активного хлора. В технической хлорной извести активный хлор обычно составляет 30...38 %. Техническая известь на открытом воздухе разлагается, вступая во взаимодействие с влагой и угле­кислым газом. Стандартная хлорная известь должна содержать не менее 25 % активного хлора. Хлорная известь, в которой меньше 15 % активного хлора, для дезинфекции непригодна, ее использу­ют для побелки животноводческих помещений. Объекты, зараженные вегетативными формами бактерий, дезинфицируют растворами, содержащими 2 % активного хлора, с экспозицией 30...60 мин. При заражении споровой микрофлорой наилучшее дезинфицирующее действие оказывают смеси: в раствор, содержа­щий 5 % активного хлора, добавляют 2,5 или 5 % серной кислоты. В этих смесях споры сибирской язвы погибают в течение 5...10 мин. Добавление сульфата, нитрата или хлорида аммония в О 5 %-й концентрации по отношению к содержанию активного хлора значительно повышает спороцидность растворов хлорной извести.

Так как хлорная известь обесцвечивает ткани, вызывает корро­зию металлов, раздражает дыхательные пути, глаза, кожу, поверх­ность зубов, при работе с ней необходимо соблюдать меры предо­сторожности. Сотрудников обязательно обеспечивают резиновы­ми сапогами, перчатками и противогазами.

Гипохлорит кальция — кристаллический порошок желтоватого цвета, содержащий до 90 % активного хлора, хорошо растворимый в воде; характеризуется сильными окисляющими свойствами. Для дезинфекции помещений при споровой микрофлоре используют растворы, содержащие 8 % активного хлора и активатор — сульфат аммония, а при неспорообразующих микроорганизмах—раство­ры, содержащие 3...4 % активного хлора.

Хлорамин Б, широко применяемый в практике дезинфекции, представляет собой желтоватый мелкокристаллический порошок со слабым запахом хлора, содержит 25.-.29 % активного хлора, что обусловливает его высокую бактерицидность. При правильном хранении потери активного хлора не превышают 0,1 % в год. Вод­ные растворы хлорамина устойчивее аналогичных растворов хлор­ной извести.

Раствор хлорамина не обесцвечивает ткани и не портит пред­меты, при однократной обработке не вызывает коррозию метал­лических предметов. Для уничтожения вегетативных форм бакте­рий в помещениях используют 0.5...1 %-е растворы, споровых форм—5...10%-е.

Гчпохлор представляет собой бесцветную или слегка зеленова­тую жидкость со слабым запахом хлора, смешивающуюся с водой в любых соотношениях. Раствор не содержит осадка, по коррозивным свойствам в 10...15 раз слабее раствора хлорной извести. Для его приготовления через 7%-й раствор гидроксида натрия или ка­лия пропускают газообразный хлор.

Чтобы уничтожить спорообразующие бактерии, применяют ра­створ, содержащий 5 % активного хлора, для инактивации вегета­тивных форм — содержащий 2...2,5 % активного хлора.

Двутретиосновная соль гипохлорита кальция (ДТОСГК) — белый сухой кристаллический порошок. ДТОСГК первого сорта содержит 57 % активного хлора, второго сорта —52 %. Для инактивации вегетативных форм бактерий применяют осветленные растворы с содержанием 2...2,5% активного хлора, споровых форм—с 5% активного хлора.

Дихлоризоцианурат натрия и трихлоризоциануровая кислота представляют собой порошки желтоватого цвета, которые содер­жат соответственно около 70 и 90 % активного хлора. Эти препа­раты в основном применяют на мясомолочных предприятиях для повседневной профилактической дезинфекции в виде растворов с содержанием 0,5...! % активного хлора.

Хлорид йода—жидкость оранжево-желтого цвета со специфи­ческим резким запахом, растворяется в воде в любых соотношени­ях. Характеризуется сильно выраженными окислительными свой­ствами. Препарат пригоден для уничтожения плесени в холодиль­никах, на мясокомбинатах, а также лечения больных трихофитией, микроспорией.

Перманганат калия оказывает дезодорирующее и обеззаражи­вающее действие, сильный окислитель. 0,1...0,5%-е растворы применяют для дезинфекции рук, 2...4 %-е — столов, мясных при­лавков на рынках и мясоконтрольных станциях, тары из-под ки­шечного сырья.

ЗАДАНИЯ ДЛЯ САМОСТОЯТЕЛЬНОЙ РАБОТЫ