Добавил:
Upload Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:

Volume1

.pdf
Скачиваний:
193
Добавлен:
12.02.2015
Размер:
43.11 Mб
Скачать

668 Часть 2. Основные генетические механизмы

Он представляет собой просто короткий участок регуляторной ДНК заданной нуклеотидной последовательности, которая распознается белком-репрессором, в данном случае триптофановым репрессором (tryptophan repressor) — членом семейства белков, содержащих мотив спираль-поворот-спираль (см. рис. 7.11). Промотор и оператор расположены таким образом, что когда триптофановый репрессор занимает оператор, то он блокирует РНК-полимеразе доступ к промотору и тем самым препятствует экспрессии ферментов, синтезирующих триптофан (рис. 7.35).

Рис.7.35.Включениеивыключениетриптофановыхгенов.Есливнутриклеточнаяконцентрациятрипто-

фананизкая,тоРНК-полимеразасвязываетсяспромоторомитранскрибируетпятьгеновтриптофанового оперона(Trp-оперона).Однакоесликонцентрациятриптофанавысокая,тоактивируетсятриптофановый репрессор,которыйсвязываетсясоператоромитемсамымблокируетприсоединениеРНК-полимеразы кпромотору.Когдаконцентрациявнутриклеточноготриптофанаснижается,репрессоросвобождается оттриптофанаистановитсянеактивным,чтопозволяетполимеразеначатьтранскрибироватьэтигены. ПромоторсодержитдваключевыхблокаинформацииопоследовательностиДНК:областипоследова- тельностей-35и-10,выделенныежелтым(см.рис.6.12).

Регуляция блокировки экспрессии генов осуществляется оригинальным способом: чтобы белок-репрессор мог присоединиться к ДНК, с ним должны быть связаны две молекулы триптофана. Как показано на рис. 7.36, связывание с триптофаном изменяет наклон мотива спираль-поворот-спираль в репрессоре, вследствие чего он надлежащим образом входит в большую бороздку ДНК; без триптофана мотив разворачивается внутрь и белок не может связаться с оператором. Таким образом, триптофановый репрессор и оператор представляют собой простой механизм, включающий и выключающий производство ферментов биосинтеза триптофана в зависимости от наличия свободного триптофана.

Поскольку активная, связывающаяся с ДНК форма белка служит для выключения генов, этот способ регуляции генов называется негативной регуляцией (negative control), и регуляторные белки, которые в нем участвуют, называются

репрессорами транскрипции (transcriptional repressors) или белками-репрессорами

(gene repressor proteins).

Глава 7. Контроль генной экспрессии 669

Рис.7.36.Соединениетриптофанасбелком-репрессоромтриптофановогооперонаизменяетконфор-

мациюрепрессора.Конформационноеизменениедаетвозможностьэтомурегуляторномубелкутесно связыватьсясоспецифическойпоследовательностьюДНК(оператором)и,такимобразом,блокировать транскрипциюгенов,которыекодируютбелки,необходимыедлясинтезатриптофана(Trp-оперон).Трех- мернаяструктураэтогобактериальногобелка,содержащегомотивспираль-поворот-спираль,определена с помощью метода дифракции рентгеновских лучей и показана как в случае связывания триптофана, так и без него. Связывание триптофана приводит к увеличению расстояния между двумя узнающими спиралями в гомодимере, что позволяет репрессору плотно садиться на оператор. (Адаптировано изR. Zhangetal.,Nature327:591–597,1987.СразрешенияMacmillanPublishersLtd.)

7.3.2.  Активаторы транскрипции включают гены

В главе 6 описано, что очищенная РНК-полимераза E. coli (включая ее σ-субъединицу) может связываться с промотором и инициировать транскрипцию ДНК. Однако многие бактериальные промоторы только в незначительной степени функциональны сами по себе, поскольку либо они плохо распознаются РНК-полимеразой, либо полимеразе сложно развернуть спираль ДНК и начать транскрипцию. В любом случае этим плохо функционирующим промоторам могут помочь регуляторные белки, которые связываются с соседним участком ДНК и контактируют с РНК-полимеразой таким образом, что значительно увеличивают вероятность инициации транскрипции. Поскольку активная, связывающаяся с ДНК форма таких белков включает гены, этот метод регуляции генов называется пози- тивной регуляцией (positive control), и регуляторные белки, которые действуют подобным образом, известны как активаторы транскрипции (transcriptional activators), или белки-активаторы генов (gene activator proteins). В некоторых случаях бактериальные белки-активаторы помогают РНК-полимеразе связаться с промотором путем предоставления дополнительной поверхности для контакта. В других случаях они контактируют с РНК-полимеразой и способствуют ее переходу из первоначальной ДНК-связывающей конформации в активную транскрибирующую форму посредством стабилизации переходного состояния фермента. Как и репрессоры, белки-активаторы генов должны быть связаны с ДНК, чтобы реализовывать присущую им активность. Таким образом, каждый регуляторный белок действует избирательно, контролируя только те гены, которые содержат распознаваемую им последовательность ДНК.

Связанные с ДНК белки-активаторы могут увеличивать интенсивность инициации транскрипции в 1 000 раз — величина, отвечающая относительно слабым и неспецифическими взаимодействиям между активатором и РНК-полимеразой. Например, изменение

670 Часть 2. Основные генетические механизмы

сродства РНК-полимеразы к ее промотору в 1 000 раз соответствует изменению G на 4 ккал/моль, что отвечает появлению только нескольких слабых, нековалентных связей. Таким образом, белки-активаторы генов могут просто обеспечивать несколько благоприятных взаимодействий, которые помогают привлечь РНК-полимеразу к промотору.

Как и при негативном контроле, осуществляемом репрессорами, активаторы транскрипции могут действовать и как часть простого генетического переключателя. Например, бактериальный белок CAP (catabolite activator protein; белокактиватор катаболизма) активирует гены, которые дают возможность E. coli использовать альтернативные источники углерода, когда предпочитаемый ею источник углерода — глюкоза, не доступен. Падение уровня глюкозы вызывает возрастание концентрации циклического АМP — внутриклеточной сигнальной молекулы, которая связывается с CAP, что позволяет ему присоединиться к специфической последовательности ДНК вблизи целевых промоторов и, следовательно, включить соответствующие гены. Таким образом, включение и выключение экспрессии целевого гена зависит от концентрации в клетке циклического АМP: включается при высокой, выключается при низкой. На рис. 7.37 обобщены различные способы использования позитивной и негативной регуляции экспрессии генов.

Активаторы и репрессоры транскрипции имеют сходную структуру. Например, триптофановый репрессор и активатор транскрипции CAP содержат мотив спираль- поворот-спираль (см. рис. 7.11) и для их связывания с ДНК необходим низкомолеку-

Рис.7.37.Обобщеннаясхемаразличныхмеханизмов,спомощьюкоторыхспецифическиерегуляторные белки контролируют транскрипцию генов прокариотов. а) Негативная регуляция; б) позитивная регуляция. Обратите внимание, что «индуцирующий» лиганд может включить ген, либо обеспечивая удалениебелка-репрессора(слевавверху),либоспособствуясвязываниюбелка-активаторасДНК(справа внизу).Аналогичнымобразом«ингибирующий»лигандможетвыключитьгенкакпутемудалениябелка- активатора(справавверху),такипутемсвязываниябелка-репрессорасДНК(слеваснизу).

Глава 7. Контроль генной экспрессии 671

Рис. 7.38. Некоторые регуляторные белки бактерий могут выступать в роли как активаторов, так и репрессоров транскрипции в зависимости от точного расположения их участков связываниясДНК.Вкачествепримера рассмотрим репрессор бактериофага лямбда. Для некоторых генов белок действуеткакактиватортранскрипции, обеспечивая благоприятный контакт для РНК-полимеразы (вверху). У другихгенов(внизу)операторрасположен на одну пару оснований ближе к промотору,и,вместотогочтобыпомогать полимеразе, этот же белок — репрессор в данном случае — конкурирует с ней за связывание с ДНК. Репрессор фагалямбдараспознаетсвойоператор с помощью мотива спираль-поворот- спираль,какпоказанонарис.7.11.

лярный кофактор. Фактически некоторые бактериальные белки, включая CAP и репрессор бактериофага лямбда, могут действовать и как активаторы, и как репрессоры в зависимости от конкретного местоположения распознаваемой ими последовательности ДНК относительно промотора: если участок связывания белка перекрывает промотор, то полимераза не может связаться, и белок действует как репрессор (рис. 7.38).

7.3.3.  Лактозный оперон контролируется активаторами и репрессорами транскрипции

Более сложные типы генетических переключателей сочетают позитивный

инегативный виды контроля. Например, лактозный оперон (Lac-оперон; Lac operon) E. coli, в отличие от Trp-оперона, находится под обоими: отрицательным

иположительным, механизмами регуляции транскрипции, которые реализуются соответственно белком-репрессором Lac-оперона и CAP. В Lac-опероне закодированы белки, необходимые для транспорта дисахарида лактозы внутрь клетки и его расщепления. Как мы уже знаем, CAP позволяет бактериям при отсутствии глюкозы использовать альтернативные источники углерода, как например, лактозу. Однако было бы нерационально для CAP индуцировать экспрессию Lac-оперона, если лактозы нет в наличии, — и Lac-репрессор гарантирует, что при отсутствии лактозы Lac-оперон выключен. Подобный механизм дает возможность регуляторной области Lac-оперона объединять и реагировать на два разных сигнала, так что эффективная экспрессия оперона происходит только при выполнении двух условий: наличие лактозы и отсутствие глюкозы. При любых других из трех возможных сигнальных комбинаций кластер генов остается в выключенном состоянии (рис. 7.39).

Простой принцип действия этого генетического переключателя впервые привлек внимание биологов 50 лет назад. Как объяснялось выше, молекулярная основа механизма действия переключателя была выяснена при помощи комбинации методов генетики и биохимии, что дало первые представления о том, как регулируется экспрессия генов.

672 Часть 2. Основные генетические механизмы

Рис. 7.39. Двойной контроль лактозного оперона. Концентрации глюкозы и лактозы контролируют инициацию транскрипции Lac-оперона, воздействуя соответственно на CAP и Lac-репрессор. Первый ген Lac-оперона, LacZ, кодирует фермент β-галактозидазу, которая расщепляет лактозу на галактозу иглюкозу.Придобавлениилактозыпроисходитувеличениеконцентрацииаллолактозы,изомералак- тозы,котораясвязываетсясLac-репрессоромивызываетегоотсоединениеотДНК.Добавлениеглюкозы приводиткуменьшениюконцентрациицикло-АМР(cAMP),и,посколькуcAMPбольшенесвязансCAP, этотбелок-активаторотделяетсяотДНК,выключаяоперон.

НарисункеобобщеныосновныечертыLac-оперона,новдействительностиситуациянамногосложнее. Существует несколько участков связывания Lac-репрессора, расположенных в различных местах ДНК. Приведенный участок связывания оказывает наибольшее воздействие, но для полного подавления экспрессии необходимы и другие сайты (см. рис. 7.40). Кроме того, экспрессия Lac-оперона никогда полностью не выключается. Требуется очень небольшое количество фермента β-галактозидазы для превращения лактозы в аллолактозу, что позволяет тем самым инактивировать Lac-репрессор при добавлениилактозывпитательнуюсреду.

7.3.4.  При регуляции экспрессии бактериальных генов происходит петлеобразование ДНК

Контроль Lac-оперона, показанный на рис. 7.39, кажется простым и экономичным, но продолжающееся изучение этого и других примеров генной регуляции у бактерий выявило новую особенность регуляции генов, известную как петлео-

Глава 7. Контроль генной экспрессии 673

бразование ДНК (DNA looping). Первоначально считалось, что Lac-оперон содержит только один оператор, но в последующих работах был обнаружен дополнительный, второй оператор, расположенный вблизи. Одна тетрамерная молекула Lac-репрессора может связывать одновременно сразу два оператора, при этом ДНК между ними образует петлю. Способность одновременно связывать два оператора усиливает общее взаимодействие репрессора с ДНК и, таким образом, приводит к возрастанию уровня репрессии в клетке (рис. 7.40).

Рис. 7.40. Петлеобразование ДНК может стабилизировать взаимодействия белок–ДНК. Репрессор

Lac оперона представляет собой тетрамер, который может одновременно связываться с двумя операторами. Лактозный оперон имеет в общей сложности три оператора, но для простоты здесь показаны толькодва:основнойоператор(Оm)идополнительныйоператор(Оa).Нарисункеизображенывсевозможные состояния Lac-репрессора, связанного с этими двумя операторами. При заданных концентрацияхрепрессоравклеткеиприотсутствиилактозысамымстабильнымбудетсостояние,изображенное снизу справа; и чтобы полностью отсоединиться от ДНК, Lac-репрессор должен сначала пройти через переходноесостояние,гдеонсвязантолькосоднимоператором.Вэтихсостоянияхлокальнаяконцентрация Lac-репрессора очень высока по отношению к свободному оператору, и реакция смещается в сторону образования двусвязной формы белка, а не его диссоциации. Таким образом, даже участки снизкимсродством(Оa)могутувеличиватьзаполняемостьвысокоаффинныхучастков(Оm)иусиливать репрессию генов в клетке. (Адаптировано из J. M. G. Vilar and S. Leibler, J. Mol. Biol. 331: 981–989, 2003. СразрешенияAcademicPress.)

Петлеобразование ДНК позволяет также быстро установить контакт между двумя разными белками, связавшимися вдоль двойной спирали ДНК. ДНК можно представить в виде «привязи», помогающей одному связавшемуся с ДНК белку взаимодействовать с другим, несмотря на тысячи нуклеотидных пар, которые могут разделять участки их связывания (рис. 7.41). Далее будет видно, что петлеобразование ДНК особенно важно при регуляции генов эукариот, хотя и играет ключевую роль во многих других случаях регуляции бактериальных генов — не только в Lac-опероне. Например, петлеобразование ДНК позволяет белку-активатору NtrC без труда напрямую контактировать с РНК-полимеразой, несмотря на то что два этих белка связываются с ДНК на расстоянии в несколько сотен пар нуклеотидов друг от друга (рис. 7.42).

674 Часть 2. Основные генетические механизмы

Рис. 7.41. Присоединение двух белков к отделенным участкам двойной спирали ДНК может в значительной мере повысить вероятность их взаимодействия. а) Разделение двух белков петлей ДНК размером500нуклеотидныхпарповышаетчастотустолкновенийэтихбелков.Интенсивностьголубого окрашиваниявкаждойизточекпространстваотражаетвероятностьтого,чтокрасныйбелокбудетрасполагатьсянаданномрасстоянииотбелогобелка.б)ГибкостьДНКтакова,чтотипичнаяпоследовательность может образовать плавный изгиб под углом 90° (изогнутый виток) на участке длиной примерно 200нуклеотидныхпар.Следовательно,еслидвабелкаразделенывсеголишь100нуклеотиднымипарами, вероятность образования контакта между ними невелика. В таких случаях взаимодействие белков облегчается,еслиихучасткисвязываниянаходятсядруготдруганарасстоянии,кратном10нуклеотидным парам, — тогда оба белка располагаются на одной и той же стороне спирали ДНК (содержащей около 10 нуклеотидов на виток) и, таким образом, внутри петли ДНК, где они могут лучше всего достать друг до друга. в) Теоретическая эффективная концентрация красного белка на участке связывания белого белкакакфункцияразделяющегоихрасстояния.Согласноопытам,намалыхрасстоянияхреальнаяэф- фективнаяконцентрацияпревышаетвычисленнуюздесь.(в—слюбезногоразрешенияGregoryBellomy,

сизменениямиизM. C. MossingandM. T. Record,Science233:889–892,1986.СразрешенияAAAS.)

Глава 7. Контроль генной экспрессии 675

Рис.7.42.Активациягеновнарасстоянии.а)БелокNtrCявляетсябактериальнымрегуляторнымбелком, который активирует транскрипцию, напрямую контактируя с РНК-полимеразой и вызывая ее переход из исходной связанной с ДНК формы в форму, способную к проведению транскрипции (описано в главе6). Как здесьпоказано,для стимулируемого NtrC перехода необходима энергия гидролиза ATP, хотя это нетипично для инициации транскрипции у бактерий. б) Взаимодействие NtrC и РНК-полимеразы, а также петлю ДНК, выступающую между ними, можно рассмотреть в электронный микроскоп. (б

слюбезногоразрешенияHarrisonEcholsandSydneyKustu.)

7.3.5.  Бактерии используют взаимозаменяемые субъединицы РНК-полимеразы для облегчения регуляции транскрипции генов

Мы уже отмечали значимость регуляторных белков, связывающихся с ДНК и подающих сигналы РНК-полимеразе о том, начинать ли синтез цепи РНК или нет. Это один из главных способов, с помощью которого эукариоты и прокариоты контролируют инициацию транскрипции; однако некоторые бактерии и их вирусы применяют еще одну стратегию, основанную на использовании взаимозаменяемых субъединиц РНК-полимеразы. Как описано в главе 6, сигма-субъединица (σ-субъединица) необходима бактериальной РНК-полимеразе для распознавания промотора. Большинство бактерий синтезируют целый ряд сигма-субъединиц, каждая из которых может взаимодействовать с основной частью РНК-полимеразы (кор-ферментом) и направлять ее к различным группам промоторов (таблица 7.2). Эта схема позволяет выключать один большой набор генов и включать новый набор генов путем простой замены одной сигма-субъединицы на другую. Эта стратегия эффективна, поскольку исключает необходимость заниматься каждым геном поочередно. Действительно, некоторые бактерии кодируют до сотни различных сигма-субъединиц и, следовательно, во многом зависят от такой формы регуляции генов. Вирусы бактерий часто пользуются этим, чтобы завладеть полимеразой клетки-хозяина и быстро и последовательно активировать несколько наборов вирусных генов (рис. 7.43).

676

Часть 2. Основные генетические механизмы

 

 

 

Таблица7.2.Сигма-факторыE. coli

СИГМА-ФАКТОР РАСПОЗНАВАЕМЫЕ ПРОМОТОРЫ

s70

большинство генов

s32

гены, индуцируемые тепловым шоком

s28

гены для стационарной фазы и реакции на стресс

s28

гены, связанные с подвижностью клетки и хемотаксисом

s54

гены для азотистого обмена

s54

гены, которые имеют дело с неправильно свернутыми белками в периплазме

Обозначение сигма-факторов основано на их приблизительном молекулярном весе в килодальтонах.

Рис. 7.43. Взаимозаменяемые субъединицы РНК-полимеразы как стратегия контроля экспрессии генов у бактериофага. Бактериальный вирус SPO1, который заражает бактерию B. subtilis, использует полимеразу бактерий для транскрипции своих ранних генов сразу после того, как вирусная ДНК попадает в клетку. Один из ранних генов, именуемый 28, кодирует сигма-подобный фактор, который связывается с РНК-полимеразой и вытесняет бактериальный сигма-фактор. Новая форма полимеразы специфическиинициируеттранскрипцию«средних»геноввирусаSPO1.Одинизсреднихгеновкодирует второйсигма-подобныйфактор,34,которыйзамещаетпродуктгена28иориентируетРНК-полимеразу на транскрипцию «поздних» генов. На основе этого последнего набора генов синтезируются белки, которыеукладываютхромосомувирусаввируснуюоболочкуилизируютклетку.Приданнойстратегии наборы вирусных генов экспрессируются в порядке своей необходимости, что гарантирует быструю иэффективнуюрепликациювируса.

7.3.6.  Сложные генные переключатели эволюционировали, чтобы контролировать транскрипцию генов эукариот

Принципы регуляции генов бактерий и эукариот во многом одинаковы, включая ключевую роль регуляторных белков, прочно связывающихся с короткими участками ДНК, важность слабых белок-белковых взаимодействий в активации генов, а также гибкость, возможную благодаря петлеобразованию ДНК. Однако по сравнению с прокариотами в регуляции генов эукариот участвуют намного больше белков и более длинные отрезки ДНК, а сама регуляция часто кажется невообразимо сложной. Эта повышенная сложность служит важным преимуществом эукариотической клетки. Генетические переключатели у бактерий, как было отмечено, обычно реагируют на один или несколько сигналов. Но для эукариот вполне обычным является поступление десятка сигналов на один промотор и аппарат транскрипции, суммирующий все эти различные сигналы, чтобы образовать соответствующее ко-

Глава 7. Контроль генной экспрессии 677

личество мРНК. Начнем наше описание регуляции генов у эукариот с выделения основных особенностей, которые отличают ее от регуляции у бактерий.

В главе 6 шла речь о том, что для эукариотической РНК-полимеразы II, которая транскрибирует все кодирующие белок гены, необходимо пять общих факторов транскрипции (в целом 27 субъединиц, см. табл. 6.3, стр. 525), а для бактериальной РНК-полимеразы требуется только один фактор транскрипции — σ-субъединица. Как мы видели, пошаговая сборка общих факторов транскрипции на эукариотическом промоторе предоставляет, в принципе, множество этапов, на которых клетка может увеличить или уменьшить частоту инициации транскрипции в ответ на действие регуляторных белков.

У эукариотических клеток нет оперонов — наборов связанных генов, транскрибируемых как одно целое, следовательно, каждый ген регулируется отдельно.

Каждый бактериальный ген обычно контролируется одним или несколькими регуляторными белками, но для эукариот является типичным контроль гена множеством (иногда сотнями) различных регуляторных белков. Такая сложность организации становится возможной, поскольку, как мы увидим далее, многие эукариотические регуляторные белки могут действовать через очень большие расстояния (десятки тысяч нуклеотидных пар), что позволяет практически бесконечному числу белков влиять на единственный ген.

Основным компонентом системы регуляции генов у эукариот является ме- диатор (mediator) — комплекс из 24 субъединиц, служащий посредником между регуляторными белками и РНК-полимеразой (см. рис. 6.19). Медиатор обеспечивает более широкую площадь контакта для регуляторных белков по сравнению с той, которую предоставляет в одиночку одна лишь РНК-полимераза у бактерий.

Упаковка эукариотической ДНК в хроматин дает множество возможностей для регуляции транскрипции, что не доступно для бактерий.

Общие факторы транскрипции РНК-полимеразы II были рассмотрены в главе 6 (см. разд. 6.1.7–6.1.8), а здесь мы сконцентрируем свое внимание на последних четырех описанных особенностях и на том, как они используются для контроля экспрессии генов у эукариот.

7.3.7.  Контролирующая область гена эукариот состоит из промотора и регуляторных последовательностей ДНК

Поскольку типичный эукариотический регуляторный белок контролирует транскрипцию, связываясь с ДНК вдали от промотора, последовательности ДНК, которые контролируют экспрессию гена, часто распределены вдоль длинных отрезков ДНК.

Мы используем термин контролирующая область гена (gene control region) для опи-

сания всего отрезка ДНК, участвующего в регулировании и инициации транскрипции гена, включая промотор (promoter), где происходит сборка общих факторов транс-

крипции и полимеразы, а также все регуляторные последовательности (regulatory sequences), с которыми связываются регуляторные белки для контроля скорости процессов сборки на промоторе (рис. 7.44). Вполне обычным является обнаружение у животных и растений регуляторных последовательностей гена, рассеянных на таких больших расстояниях, как 50 000 нуклеотидных пар. Большинство подобной ДНК служит в качестве «спейсерных» последовательностей, которые регуляторные белки напрямую не распознают, но она придает гибкость, необходимую для эффективного петлеобразования ДНК. В данном случае важно помнить о том, что, как и другие области эукариотических хромосом, большая часть ДНК в контролирующих об-

Соседние файлы в предмете [НЕСОРТИРОВАННОЕ]