Добавил:
Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:

Полимеразная цепная реакция

.pdf
Скачиваний:
48
Добавлен:
02.03.2021
Размер:
990.54 Кб
Скачать

амплифицируемый фрагмент ДНК

контрольный праймер

элонгация,

Ф

«шпилька»

Г

достройка комплементарной цепи

контрольный праймер

денатурация

Ф

праймер

«шпилька»

«шпилька»

Г

присоединение праймерного участка пробы

контрольный

Ф

праймер

Г

денатурация, разрыв «шпильки»

Ф

контрольный

праймер

Г

отжиг, связывание контрольного праймера

Рис. 17. Схема ПЦР «в реальном времени» с пробами-«скорпионами». Для упрощения из схемы исключены образующиеся при денатурации одноцепочечные молекулы ДНК, не связывающиеся с пробой. Ф – флуорофор, Г – гаситель флуоресценции.

Мультиплексная ПЦР

Мультиплексная ПЦР является разновидностью ПЦР «в реальном времени» с меченными флуорофорами пробами, которая позволяет одновременно проводить в одной пробирке несколько реакций ПЦР и выявлять НК сразу нескольких возбудителей. Например, существуют тест-системы для выявления различных типов вирусов гриппа (А, В и С), для выявления основных возбудителей ОРВИ и т.д. При проведении мультиплексной ПЦР используются сразу несколько флуорофоров, причем проба для выявления НК каждого из возбудителей помечена определенным красителем. Флуорофоры дают излучение разной длины волны, что позволяет детектирующей камере их дифференцировать. Как правило, в составе детектирующей камеры есть набор автоматически сменяемых светофильтров, пропускающих излучение с разной длиной волны, что позволяет одновременно отслеживать несколько реакций в одной пробирке. Флуорофоры для разных проб должны давать излучение с существенно различающейся длиной волны, чтобы детектирующая камера могла их дифференцировать. По этой причине количество флуорофоров, и соответственно, количество видов микроорганизмов, которых можно одновременно выявить в реакции, ограничено 7-8.

Количественная ПЦР

В ряде случаев выявления НК возбудителя в исследуемом материале оказывается недостаточно и требуется определить также ее количество. Например, при оценке характера течения ВИЧ-инфекции, а также при оценке эффективности антиретровирусной терапии часто используется показатель вирусной нагрузки. Этот показатель обычно оценивается по количеству вирусных РНК в единице объема сыворотке крови больного. В таких случаях используется количественная ПЦР.

Оценка количества молекул НК микроорганизма возможна при использовании ПЦР с ЭФ детекцией, однако такой способ технически сложен и трудоемок, поэтому гораздо чаще используют количественную ПЦР «в реальном времени».

Для количественной ПЦР «в реальном времени» используют стандартный образец (стандарт) – раствор, содержащий готовые ампликоны в известной концентрации. Сначала готовят серию десятикратных разведений стандарта, после чего ставят реакции ПЦР «в реальном времени» как с полученными разведениями, так и с исследуемым образцом (рис. 18).

интенсивность флуоресценции

стандарты

исследуемый

образец

107

101

порог флуоресценции

цикл реакции

Рис. 18. Количественная ПЦР «в реальном времени». На графике представлены кривые, образуемые стандартными образцами с концентрацией от 107 (крайняя левая кривая) до 10 молекул НК (крайняя правая кривая), а также кривая, образованная исследуемым образцом. Пороговый цикл реакции (Ct) для каждой кривой соответствует точке пересечения ей порога флуоресценции.

По завершении ПЦР «в реальном времени» с разведениями стандартного образца формируется график с кривыми флуоресценции разведений стандартного образца и исследуемого образца. Далее устанавливается определенный порог

флуоресценции и определяется пороговый цикл реакции (Ct) для всех полученных кривых. Пороговый цикл реакции – цикл амплификации, на котором интенсивность флуоресценции достигает заданного порогового уровня, т.е. точка, где кривая флуоресценции пересекает порог флуоресценции.

По полученным значениям Ct строится калибровочный график, где по оси Х откладываются концентрации ампликонов в разведениях стандартного образца (в логарифмическом масштабе), а по оси Y – соответствующие им значения Ct. С помощью калибровочного графика определяется концентрация НК микроорганизма в исследуемом образце по значению его Ct (рис. 19).

величина порогового цикла реакции (Ct)

Ct исследуемого образца

кол-во НК в образце

количество НК (десятичный логарифм, lg)

Рис. 19. Калибровочный график для количественной ПЦР. Маленькие крестики соответствуют разведениям стандартного образца, по ним строится калибровочная линия. Большой крестик соответствует положению на калибровочной линии исследуемого образца, по которому определяют количество содержащейся в нем НК.

ПЦР С ФЛУОРЕСЦЕНТНОЙ ДЕТЕКЦИЕЙ ПО КОНЕЧНОЙ ТОЧКЕ

Данный тип ПЦР по своему механизму ничем не отличается от ПЦР «в реальном времени» и также предполагает использование интеркалирующих флуоресцирующих красителей или флуоресцирующих красителей в составе контрольных праймеров-проб и учет результата реакции по уровню флуоресценции. Различие заключается лишь в способе детекции результата реакции: ПЦР с флуоресцентной детекцией по конечной точке проводится в обычных амплификаторах (без детектирующей камеры). По завершении реакции производится учет уровня флуоресценции реакционной смеси с помощью флуоресцентного ПЦР-детектора (рис. 20). Результат реакции считается положительным в том случае, если уровень флуоресценции реакционной смеси по

завершении ПЦР существенно увеличился и превысил определенный пороговый уровень.

Рис. 20. Флуоресцентный ПЦР-детектор.

ПЦР «в реальном времени»

ПЦР с детекцией по конечной

 

точке

Рис. 21. Сравнение ПЦР «в реальном времени» и ПЦР с флуоресцентной детекцией по конечной точке. ПЦР с детекцией по конечной точки позволяет учесть лишь начальный и конечный момент реакции, тогда как ПЦР «в реальном времени» дает возможность отслеживать весь ход реакции.

Таким образом, ПЦР с флуоресцентной детекцией по конечной точке можно рассматривать, как упрощенный вариант ПЦР «в реальном времени», который не дает возможности отслеживать ход реакции в режиме «онлайн», а лишь позволяет учитывать ее конечный результат (рис. 21). Недостатком ПЦР с флуоресцентной

детекцией является невозможность контроля эффективности реакции, а также невозможность оценки количества НК возбудителя в исследуемом материале.

В настоящее время различные модификации ПЦР широко внедрены в лабораторную диагностику инфекционных заболеваний. По распространенности данный метод успешно конкурирует за первое место с иммуноферментным анализом, вытесняя «классические» бактериологический и вирусологический методы. Доступны специальные коммерческие наборы для выделения ДНК многих видов возбудителей, содержащие все основные компоненты для проведения реакции. Преимуществами метода являются относительная простота и высокая чувствительность и специфичность, а также невысокая себестоимость. Кроме того, метод вполне универсален, и общая схема постановки реакции для разных видов возбудителей практически не различается.

Список литературы

1)Альбертс Б., Джонсон А., Льюис Д. и др. Молекулярная биология клетки:

в3 томах.– Издательство: ИКИ (2013).– 2821 с.

2) Ребриков Д.В., Саматов Г.А., Трофимов Д.Ю. «ПЦР в "реальном времени" - 2-е изд.,испр. и доп.– Издательство: Бином. Лаборатория знаний, Бином пресс (2009).– 223 с.

Тренировочные тесты

1.Укажите фермент, обеспечивающий разделение нитей ДНК при ее репликации in vivo:

A. праймаза B. ДНК-гираза

C. ДНК-полимераза I D. хеликаза

E. ДНК-полимераза III

2.Укажите, какие группы заболеваний НЕ могут быть диагностированы методом ПЦР:

A. бактериальные инфекции B. вирусные инфекции

C. микоплазменные инфекции D. прионные инфекции

E. паразитарные инвазии.

3.Укажите, какой из перечисленных красителей, наряду с бромидом этидия, может использоваться для окрашивания ДНК после гель-электрофореза:

A. FAM B. HEX C. JOE

D.ROX

E.SYBR Green.

4.Укажите, какие из перечисленных праймеров используются для проведения обратной транскрипции:

A. Рэндом-праймер B. Праймер-проба C. Поли-А-праймер D. Поли-Т-праймер E. Поли-С-праймер

5.Укажите, от чего зависит специфичность ПЦР:

A.От температуры денатурации

B.От времени элонгации

C.От концентрации праймеров в реакционной смеси

D.От нуклеотидной последовательности праймера

E.От количества циклов ПЦР.

6.Укажите, какие ферменты могут использоваться в ПЦР: A. РНК-зависимая ДНК-полимераза

B. ДНК-зависимая ДНК-полимераза C. РНК-зависимая РНК-полимераза D. ревертаза

E. хеликаза

7.Укажите, что представляет собой параметр Ct, используемый при количественной ПЦР:

A. точка перегиба кривой флуоресценции

B. точка пересечения кривой флуоресценции пороговой линии

C. угол наклона кривой флуоресценции в области экспоненциального роста D. величина флуоресценции по завершении ПЦР

E. точка выхода кривой флуоресценции на верхнее плато.

Вопросы для самоконтроля усвоения материала

1)Объясните, почему при проведении ПЦР используют ДНК-полимеразу термофильных бактерий.

2)Изобразите схему амплификации ДНК в ПЦР.

3)В каких случаях необходимо проведение ПЦР с обратной транскрипцией?

4)Чем обусловлен выбор типа затравочного праймера (поли-Т-праймер или рэндом-праймер) при проведении ОТ-ПЦР?

5)Укажите преимущества и недостатки различных типов ПЦР: ПЦР с ЭФ детекцией, ПЦР с флуоресцентной детекцией по конечной точке, ПЦР «в реальном времени».

6)Для оценки количества копий ДНК в образце обычно используют ПЦР «в реальном времени». Предложите, как можно решить данную задачу с использованием ПЦР с ЭФ детекцией.

Ключ к тестовым заданиям:

1.D; 2.D; 3.E; 4.A,D; 5.C; 6.A,B,D; 7.B