3. Алгоритм № 5.

4. Дезинфекцию посуды осуществляют погружением в 3% раствор хлорамина, осветленной хлорной извести в течение 30 минут или 1% раствора хлорамина и хлорной извести в течение 60 минут. Лабораторную посуду кипятят в р-ре моющих средств в течение 15 минут, промывают, ополаскивают, высушивают

5. Алгоритм № 5. Исследование кала на скрытую кровь.

7. Бензидиновая проба (метод Грегерсена):

8. Оснащение: дезраствор, одноразовые перчатки, бланк анализа кала, пробирки, стеклянные палочки, исследуемый материал

9. Реактивы: бензидин основной, 50% уксусная кислота, 3% перекись водорода.

10. Приготовление рабочего раствора: в 5 мл СН₃СООН всыпают небольшое количество (на кончике скальпеля) бензидина и растворяют (реактив Грегерсена).

11. Алгоритм действий:

12. 1 На предметное стекло наносят большую каплю каловой эмульсии.

13. 2. Добавляют 2-3 капли реактива Грегерсена.

14. 3. Несколько капель 3% перекиси водорода.

15. 4. Смешивают.

16. 5. Положительная проба: появляется зеленого или сине-зеленого окрашивание сразу или в течение 2-х минут

17. 6. Отрицательная проба: окрашивание не появилось или появилось позже двух минут

------------------------------------------------------------------------------------------------------------------

№ 25.

Ситуационная задача.

При добавлении к желудочному соку диметиламидоазобензола получили желто-розовое (цвет «семги») окрашивание.

Задания:

1. Оценить результат с позиции «норма» - «патология» и аргументировать свою оценку.

2. Назвать методы титрования желудочного сока, используемые индикаторы.

3. Провести исследование мочи на анализаторе Uriscan pro.

4. Перечислить правила санэпидрежима при работе с мокротой.

№ 25.

5. Такой цвет появляется при отсутствии НС1 или дефиците соляной кислоты. В состав желудочного сока входит соляная кислота. Виды кислотности: Свободная соляная кислота 36 ммоль/л, связанная соляная кислота 13 ммоль/л, кислотный остаток 4 ммоль/л, также входит пепсин, слизь, муцин, биологические вещества, щелочный компонент.

6. Метод Михаэлиса, метод Тепфера

К 5 мл профильтрованного желудочного сока добавляют 1 каплю диметиламидоазобензола (в присутствии соляной кислоты цвет желтый) и титруют до получения цвета «семги» 0,1 N НС1.

1 % р-р спиртовой фенолфталеина, для определения общей кислотности. 0,5 % спиртовой р-р деметиламидоабензола, для определения концентрации свободной соляной кислоты.

1 % водный р-р ализоринсульфонового кислого натрия, для определения концентрации связанной соляной кислоты.

7. Алгоритм № 3.

8. Работать необходимо в средствах индивидуальной защиты в вытяжном шкафу. Весь металлический инструментарий дезинфицируется обжиганием. Все инструменты и мокрота обеззараживаются хлорсодержащими препаратами в течении часа.

Алгоритм № 3. Проведение исследования мочи на анализаторе Uriscan pro.

16. ВКЛЮЧЕНИЕ прибора.

При включении прибора на дисплее появится фраза "Welcome", автоматически будет выполнена инициализация системы, и будет выведено последующее сообщение.

17. ИЗМЕРЕНИЕ - Нажмите «1» в главном меню

• Перемешайте образец мочи

• Смочите диагностическую полоску в образце мочи

• После удаления избытка мочи впитывающей поверхностью поместите полоску на столик под фотодатчиком.

• Сенсор зарегистрирует полоску, и начнется измерение.

• Результаты измерений распечатает принтер.

18. ОЦЕНИТЬ результат.

19. ПРОТЕРЕТЬ столик под фотодатчиком сухой салфеткой.

20. ОТКЛЮЧИТЬ прибор.

---------------------------------------------------------------------------------------------------------------

№ 26.

Ситуационная задача.

При титровании желудочного сока по Михаэлису получены следующие результаты базальной секреции:

Общая кислотность – 80 ммоль/л

Свободная кислотность – 60 ммоль/л

Связная кислотность – 15 ммоль/л

Кислотный остаток – 5 ммоль/л

Задания:

1. Оценить результат с позиции «норма» - «патология» и аргументировать свою оценку.

2. Назвать раздражители желудочной секреции и индикаторы, используемые для определения общей и свободной кислотности.

3. Подготовить препараты кала для микроскопического исследования.

4. Перечислить правила обработки кала.

№ 26.

1. В норме общая кислотность – 40-60 ммоль/л, свободная кислотность -20-40 ммоль/л, связанная кислотность - 10-15 ммоль/л. Не соответствует норме общая кислотность и свободная кислотность желудочного сока, что наблюдается при гиперацидном гастрите, язве 12-ти перстной кишки и язве желудка.

2. Существуют энтеральные и парентеральные раздражители желудочной секреции.

Энтеральные - капустный отвар, мясной бульон, кофеиновый и алкогольный завтраки. Эти раздражители вводятся через зонд. Парентеральные - гистамин, пентагастрин. Эти в-ва вводятся подкожно и являются более сильными раздражителями желудочной секреции. Базальная секреция - это секреция желудка натощак. Для этого вводится зонд, извлекают все содержимое желудка, затем в течение часа каждые 15 минут извлекают все содержимое желудка в отдельные банки (всего 4 порции).

Для определения общей кислотности пользуется фенолфталеин. В кислой и нейтральной среде он бесцветен, в щелочной приобретает малиновый цвет. Фенолфталеин меняет цвет в конце титрования, когда происходит нейтрализация всех кислых валентностей желудочного сока, это IV уровень титрования.

Для определения свободной кислотности используется индикатор диметиламидоазобензол. В присутствии свободной НС1 индикатор приобретает красный цвет, при ее нейтрализации - цвет «семги», это II уровень титрования.

3. Алгоритм № 6.

4. Кал собирают в закрытую маркированную емкость с делениями, до отметки - 1 литр, доливают воду и засыпают сухой хлорной известью, известью белильной термостойкой, нейтральным гипохлоритом Са из расчета 1:5 на 1 час.

Кал, в котором обнаружены яйца гельминтов, обеззараживают 20% хлорной известью в течение 2-х часов. Лабораторную посуду (склянки, колбы, предметные стекла, стеклянные палочки, т.д.) обеззараживают 10% р-ром хлорной извести в течение 2-х часов, 20% р-ром хлорной извести 60 мин. или кипят в 2% р-ре моющих средств в течение 15 минут с момента закипания.

Алгоритм № 6. Приготовление препаратов кала для микроскопического исследования.

А) Нативный препарат

В этом препарате дифференцируют остатки не переваренной белковой пищи - соединительную ткань, мышечные волокна с исчерченностью и без исчерченности, остатки не переваренной углеводной пищи (переваренную клетчатку), остатки нерасщепленного и расщепленного жира - капли, иглы, глыбки, слизь и заключенные в ней лейкоциты, эритроциты, цилиндрический эпителий, яйца гельминтов, цисты простейших и вегетативные особи.

Оснащение: дезраствор, одноразовые перчатки, бланк анализа кала, пробирки, предметные стекла, покровные стекла, стеклянные палочки, исследуемый материал

Реактивы: физиологический раствор

Алгоритм действий:

1. Приготовить густую каловую эмульсию (смешать в пробирке 2 капли физ.раствора и небольшой комочек кала)

2. Нанести стеклянной палочкой на предметное стекло 1 каплю каловой эмульсии

3. Накрыть покровным стеклом

4. Микроскопировать

Б) Препарат с Люголем

Этот препарат предназначен для выявления крахмальных зёрен и йодофильной флоры.

Оснащение: дезраствор, одноразовые перчатки, бланк анализа кала, пробирки, предметные стекла, покровные стекла, стеклянные палочки, исследуемый материал

Реактивы: раствор Люголя

Алгоритм действий:

1. Нанести стеклянной палочкой на предметное стекло 1 каплю каловой эмульсии

2. Добавить 1 каплю раствора Люголя и перемешать с каловой эмульсией

3. Накрыть покровным стеклом

4. Микроскопировать: не переваренный крахмал окрашивается в черный или темно-синий цвет, переваренный крахмал окрашивается в фиолетовый, синий или голубой цвет, йодофильная флора окрашивается в черный или коричневый цвет.

В) Препарат с метиленовым синим

Этот препарат предназначен для дифференцировки капель нейтрального жира от капель жирных кислот.

Оснащение: дезраствор, одноразовые перчатки, бланк анализа кала, пробирки, предметные стекла, покровные стекла, стеклянные палочки, исследуемый материал

Реактивы: раствор метиленового синего

Алгоритм действий:

1. Нанести стеклянной палочкой на предметное стекло 1 каплю каловой эмульсии

2. Добавить 1 каплю раствора метиленового синего и перемешать с каловой эмульсией

3. Накрыть покровным стеклом

4. Микроскопировать: капли жирных кислот окрашиваются метиленовой синью в интенсивно синий цвет, а капли нейтрального жира остаются бесцветными

Г) Препарат с 50% раствором глицерина.

Препарат предназначен для выявления яиц гельминтов.

Оснащение: дезраствор, одноразовые перчатки, бланк анализа кала, пробирки, предметные стекла, покровные стекла, стеклянные палочки, исследуемый материал

Реактивы: 50% раствор глицерина

Алгоритм действий:

1. Нанести стеклянной палочкой на предметное стекло 1 каплю каловой эмульсии

2. Добавить 1 каплю раствора 50% раствора глицерина и перемешать с каловой эмульсией

3. Накрыть покровным стеклом

4. Микроскопировать: глицерин просветляет детрит и предохраняет препарат от высыхания, что способствует лучшему выявлению яиц гельминтов.

-------------------------------------------------------------------------------------------------------------------

№ 27.

Ситуационная задача.

При исследовании мочи на мочевом анализаторе получены следующие результаты:

Glu –

Prot -5 mg|100 ml

Bil –

Uro –

pH – 6,0

SG – 1, 020

Keto –

Nit –

Leu -25|ml

Blood –

Задания:

1. Оценить результат с позиции «норма» - «патология» и аргументировать свой ответ.

2. Перечислить правила работы с тест - полосками.

3. Подготовить препараты мокроты для микроскопического исследования.

4. Назвать правила санэпидрежима при работе с мочой.

№ 27.

1. Glucose – глюкоза отрицательная (норма)

Protein – белок 5 мг на 100 мл (протеинурия)

Bilirubin – билирубин отрицательный (норма)

Urobilinogen - уробилиноген отрицательный (норма)

pH – реакция кислая (норма)

Specifik Gravity – удельный вес 1,020 (норма)

Ketones – кетоновые тела отрицательные (норма)

Nitrate – нитраты (степень бактериоурии) НЕТ (норма)

Leukocytes – лейкоциты 25 (лейкоцитурия)

Blood – гематурия (эритроциты в моче) Нет (норма)

Выявлены: протеинурия и лейкоцитурия. Необходимо определить количество белка с пирогаллоловым красным и провести микроскопическое исследование мочевого осадка.

2. При работе с полосками необходимо соблюдать целый ряд пра­вил.

• Пеналы всегда должны быть плотно закрыты.

• Хранить пеналы необходимо при комнатной температуре в сухом месте.

• Не подвергать полоски воздействию яркого света, влажного воз­духа, различных химических реагентов.

• Нельзя касаться реагенных зон.

• Для работы используется определенное количество полосок, остальные должны быть плотно закрыты.

Для исследования необходимо использовать вторую порцию утрен­ней мочи, собранную в чистую сухую посуду, так как первая порция может содержать примесь спермы, элементы воспаления уретры, вла­галища. Анализ лучше проводить не позднее 2 ч после мочеиспуска­ния, так как моча, которая хранится дольше, может загрязняться бак­териальной флорой. Реакция мочи может сдвигаться в щелочную сторону из-за аммиака, выделяемого бактериями в мочу. Кроме того, глюкоза может разрушаться микроорганизмами, и результаты будут занижены или вообще станут отрицательными. Концентрация желч­ных пигментов уменьшается от воздействия дневного света, и их количество можно не выявить. При стоянии мочи разрушаются фор­менные элементы. Если посуда содержит остатки моющих средств, то возникают ложные результаты.

Проводить исследование экспресс-методами необходимо строго по инструкции, прилагаемой к каждому пакету тест-полосок. При про­ведении анализа полоску достают из пенала (который сразу же плотно закрывают), опускают в сосуд с хорошо перемешанной мочой на время, указанное в инструкции. Достают полоску, избыток мочи удаляют о край сосуда и сравнивают с цветной шкалой, прилагаемой к экс­пресс-методу.

Проведение анализа мочи с помощью тест-полосок

1. Погрузите тест - полоску в мочу на 2-3 секунды, смочив все реагенные зоны.

2. Удалите остатки мочи, проведя тест-полоской по краю сосуда с пробой или слегка прикоснувшись ребром тест-полоски к фильтровальной бумаге (салфетке).

3. Через 1 минуту сравните цветовое окрашивание реагентной зоны тест-полоски с цветовой шкалой на упаковке.

3. Алгоритм № 7.

4.Остатки мочи и использованные пробы сливают в промаркированную емкость с делениями и засыпают сухой хлорной известью, нейтральным гипохлоритом кальция из расчета 1:5 на 1 час. После дезинфекции мочу сливают в канализацию.

Дезинфекцию посуды осуществляют погружением в 3% раствор хлорамина, осветленной хлорной извести в течении 30 минут или 1% раствора хлорамина и хлорной извести в течение 60 минут. Лабораторную посуду кипятят в р-ре моющих средств в течение 15 минут, промывают, ополаскивают, высушивают

Алгоритм № 7. Приготовление препарата мокроты для микроскопического исследования.

1. Мокроту, помещенную в чашку Петри, рассматривают на черном и белом фоне.

2. Узким шпателем и иглой (можно пользоваться деревян­ными лучинами) выбирают различные составные части мокроты (комочки гноя, слизи, крови, тканевые клочки).

3. Отоб­ранный материал помещают на предметное стекло. При этом более плотные по консистенции частицы помещают ближе к центру намечаемого препарата, а менее плотные, так же как и слизисто-гнойные, гнойно-слизистые, кровя­нисто окрашенные образования, — по периферии.

4. Мате­риал накрывают покровным стеклом. Количество материа­ла, взятого для одного препарата, должно быть таково, чтобы мокрота не выходила за пределы покровного стекла.

5. Если мокрота имеет вяз­кую или тягучую консистенцию, то на покровное стекло слегка надав­ливают, чтобы материал распределился равномерно тонким слоем.

6. Препараты сначала просматривают под малым увеличением (объ­ектив 8, окуляр 7), затем под большим (объектив 40, окуляр 7) увели­чением микроскопа.

-----------------------------------------------------------------------------------------------------------------

№ 28.

Ситуационная задача.

При исследовании мочи на мочевом анализаторе получены следующие результаты:

Glu 50 mg|100 ml

Prot –

Bil –

Uro -–

pH – 5,0

SG – 1, 030

Keto 1

Nit - –

Leu –

Blood –