- •Некотороые опасные Болезни кукурузы в условиях Харьковской области и способы ограничения их вредоносности
- •Реферат
- •Раздел 2. Объекты и методы исследования 36
- •Раздел 3. Результаты собственных исследований 40
- •Введение
- •Раздел 1. Обзор литературы
- •История систематики рода Fusarium Link
- •Общая характеристика рода Fusarium
- •Морфологические и биологические особенности Fusarium moniliforme и вызываемые им заболевания
- •1.4. Современные протравители для контроля фузариозов кукурузы
- •1.5. Охрана труда и безопасность в чрезвычайных ситуациях
- •Раздел 2. Объекты и методы исследования
- •2.1. Выделение гриба в чистую культуру и подготовка растений к инокуляции
- •2.2. Методы инокуляции растений
- •2.3. Оценка чувствительности культур f. Moniliforme к фунгицидам
- •Раздел 3. Результаты собственных исследований
- •3.1. Установление причин массовой гибели всходов кукурузы
- •3.2. Оценка паразитических свойств изолятов f. Moniliforme
- •3.3. Оценка биологической эффективности фунгицидов
- •Рекомендации
- •Аннотация
- •Анотація
- •Список литературы
Раздел 2. Объекты и методы исследования
Работа выполнялась в лаборатории кафедры микологии и фитоиммунологии ХНУ им. В.Н. Каразина в 2013-2015 гг. Полевая часть работы, а именно отбор проб больных растений производился на базе агрофирмы «Урожай» Валковского района Харьковской области в 2013 г.
Объектами исследования были семена и пораженные части растений кукурузы гибрида M2893, изоляты гриба Fusarium moniliforme Sheld., выделенные собственноручно, а также четыре современных фунгицидных протравителя семян, названия и краткая характеристика которых представлена в таблице 1.
2.1. Выделение гриба в чистую культуру и подготовка растений к инокуляции
Из пораженных семян кукурузы в чистую культуру нами были выделены изоляты гриба F. moniliforme. Выделение в чистую культуру проводилось с использованием стандартных микологических методов. Посев осуществлялся в чашки Петри на агаризованную питательную среду Чапека [4; 5].
Культивирование изолятов для наращивания ими достаточной биомассы и формирования конидий проводилось при комнатной температуре (18-20⁰С) в течение 7 суток [4; 5].
2.2. Методы инокуляции растений
Семена кукурузы помещали в пластиковые стаканчики с универсальной почвой и выращивали в ростовой камере. Дальнейшие исследования проводили с 14-ти дневными проростками, достигшие стадии четырех листочков. Опыт проводился в трехкратной повторности [4;5].
В рамках дипломной работы нами проводилось заражение листьев кукурузы. При заражении листьев, листья 14-ти дневных проростков кукурузы аккуратно срезали стерильным лезвием у черешка и помещали на увлажненную фильтровальную бумагу в чашки Петри. На подготовленные листья осторожно помещали высечки культуры гриба диаметром 5 мм, мицелием вниз. Последующая инкубациярастений проводилась в течение 10 суток. Диаметр некротической зоны измеряли на 3, 7 и 10 сутки [4].
2.3. Оценка чувствительности культур f. Moniliforme к фунгицидам
Для оценки чувствительности гриба F. moniliforme к фунгицидам были выбраны два метода: бумажных дисков и лунок [4].
При тестировании методом бумажных дисков предварительно вырезали диски из фильтровальной бумаги диаметром 2 см. Колбы для разведения фунгицидов и бумажные диски предварительно стерилизовали в сухожаровом шкафу. Перед непосредственным выполнением опыта в стерильных колбах готовили растворы фунгицидов с нормой расхода, указанной в таблице 1. В качестве контроля использовалась стерильная дистиллированная вода. С помощью стерильного пинцета бумажные диски смачивали в растворе фунгицида и помешали на поверхность среды Чапека в Чашки Петри в центральной их части. После этого производили крестообразный засев культур гриба в четырех местах по краям чашки Петри. Инкубирование чашек с культурами производили при комнатной температуре. Измерение зоны отсутствия роста колонии производили на 3, 7 и 14 сутки (от края диска к краю колонии). Для каждой чашки рассчитывали средне значение. Опыт проводился в трехкратной повторности [5].
При использовании метода лунок раствор фунгицида вносили в предварительно изготовленные лунки в среду Чапека в центральной части чашек Петри. Для изготовления лунок в не полностью застывший агар помещали небольшие фрагменты стеклянных палочек длиной 20-22 мм и шириной 4 мм, которые стерильным пинцетом изымались после застывания среды. Объем среды в каждой чашке Петри составлял 20 мл. Затем производили крестообразный засев культур гриба в четырех местах по краям чашки Петри, а в лунки с помощью шприца вносилось необходимое количество рабочего раствора препарата. Инкубирование чашек с культурами производили при комнатной температуре. Измерение зоны отсутствия роста проводилась на 3, 7 и 14 сутки. Опыт проводился в трехкратной повторности [42; 43].
Полученные результаты обобщались по формуле Эбботта:
К = (Дк-До/Дк) × 100%, где
К – отсутствие роста колонии;
Дк – диаметр колонии в контроле, мм;
К – диаметр колонии в опытном варианте, мм [4; 5].
Таблица 1. Обобщающая характеристика изучаемых фунгицидов
Фунгицид |
Действующее вещество, г/л |
Норма расхода, л/т |
Содержание в исходном растворе, % |
расход препарата на 10 мл, мл |
Фирма производитель |
Максим XL |
25 г/л флудиоксонилу 10 г/л металаксилу-М |
1 |
0,25 г/л флудиоксонилу 0,1 г/л металаксилу-М |
1 |
Syngenta (Швейцария) |
Иншур Перформ |
40 г/л пираклостробин 80 г/л тритиконазол |
0,5 |
0,4 г/л пираклостробин 0,8 г/л тритиконазол |
0,5 |
BASF (Германия) |
Кинто Дуо |
20 г/л тритиконазол 60 г/л прохлораз |
2 |
0,2 г/л тритиконазол 0,6 г/л прохлораз |
2 |
BASF (Германия) |
Февер |
300 г/л протиоконазол |
0,9 |
3 г/л протиоконазол |
0,9 |
Bayer (Германия) |
Витавакс |
200 г/л карбоксин 200 г/л тирам |
3 |
2 г/л карбоксин 2 г/л тирам |
3 |
Crompton Greaves Limited (Великобритания) |
