
- •4.2. Электронный транспорт и синтез атф в митохондриях растений
- •4.2.1. Электрон-транспортная цепь дыхания. Перенос электрона от надн на кислород
- •4.2.2. Комплекс I, или надн-дегидрогеназа. Электронный транспорт в комплексе сопряжен с генерацией δ
- •4.2.3. Комплекс II, или сукцинатдегидрогеназа
- •4.2.4. Комплекс III, или цитохром bc1- комплекс. Электронный транспорт в комплексе сопряжен с генерацией δ
- •4.2.5. Комплекс IV, или цитохромоксидаза. Электронный транспорт в комплексе сопряжен с генерацией δ
- •4.2.6. Электронный транспорт сопряжен с синтезом атф
- •4.2.7. Скорость электронного транспорта. Дыхательный контроль
- •4.2.8. Разобщение электронного транспорта с фосфорилированием
- •4.2.9. Альтернативные над(ф)н-дегидрогеназы
- •4.2.10. Альтернативная оксидаза в митохондриях растений
- •4.2.11. Энергия δ используется для транспорта метаболитов через внутреннюю мембрану митохондрий
4.2.3. Комплекс II, или сукцинатдегидрогеназа
Комплекс II (сукцинат-убихинон-оксидоредуктаза) функционирует как часть ЦТК и как компонент дыхательной цепи. Комплекс был выделен из митохондрий картофеля (Solarium tuberosum), батата (Ipomoea batatas), маша (Vigna radiata), а также из объектов животного происхождения и бактерий. Его кристаллическая структура была определена у ряда бактерий. Комплекс (мол. масса ~ 125 кДа) состоит из четырех крупных полипептидов (А, В, С, D), кодируемых ядерным геномом (рис. 4.16).
.
Рис. 4.16. Организация в мембране и функционирование комплекса П.
Комплекс состоит из 4 крупных полипептидов. Две гидрофильные субъединицы комплекса (А и В) обращены в матрикс и проявляют сукцинатдегидрогеназную активность. Две гидрофобные субъединицы (С и D) встроены в мембрану. При окислении сукцината электроны передаются на ковалентно связанный ФАД, затем на Fe-S-центры, обозначаемые как SI, S2 и S3, и далее на Q, точное место связывания которого остается неизвестным. Транспорт двух электронов сопровождается восстановлением Q с использованием 2Н+ из матрикса. В комплексе обнаружен гем
b560, с неясной функцией
Субъединицы С и D — трансмембранные белки; А и В — представляют гидрофильную часть, обращенную в матрикс. С основной частью могут быть также ассоциированы мелкие гидрофобные белки, функции которых остаются неизвестными.
Редокс-центрами комплекса являются ФАД (Е°' ~ 0,0 В) и три железосерных центра: 2Fe-2S-,
4Fe-4S- и 3Fe-4S-кластеры (Е°' ~ -0,12...0,0 В). Кроме того, в комплексе обнаружен гем b-типа (цитохром b560), который не участвует в электронном транспорте и функция которого неясна. Специфическими ингибиторами комплекса II являются щавелевоуксусная кислота и структурный аналог сукцината — малонат.
Комплекс окисляет сукцинат (Е°' = -0,025 В) до фумарата и восстанавливает убихинон
(Е°' = +0,09 В):
Сукцинат + Q → Фумарат + QH2
Электроны, отнимаемые от сукцината, переносятся сначала на ФАД, а затем через Fe-S-кластеры на Q. Электронный транспорт в комплексе не сопровождается генерацией Δ . Образующиеся при окислении сукцината 2Н+ остаются на той же стороне мембраны, т. е. в матриксе, и затем поглощаются при восстановлении хинона. Таким образом, комплекс II не вносит вклад в энергиза-цию мембраны и работает только как переносчик е от сукцината к убихинону.
4.2.4. Комплекс III, или цитохром bc1- комплекс. Электронный транспорт в комплексе сопряжен с генерацией δ
Комплекс III (убихинол-цитохром с-оксидоредуктаза) выделен из митохондрий сердца быка, цыпленка, кролика и митохондрий дрожжей. В состав комплекса из митохондрий сердца быка (мол. масса -248 кДа) входит порядка 11 белковых субъединиц, 8 из которых представляют собой мелкие гидрофобные мембранные белки с неизвестной (возможно, структурной) функцией. Известно, что комплекс образует в целом 13 белковых петель, пересекающих мембрану. Из всех белков комплекса только цитохром b кодируется митохондриальным геномом.
Функциональными компонентами комплекса, несущими редокс-центры, являются:
— цитохром b, в составе которого есть два тема b-типа с разными редокс-потенциалами: гем bL с низким (Е°' ~ -0,075...0,09 В) и гем bн с высоким (Е°' ~ +0,05 В) потенциалом;
—- железосерный белок Риске, в составе которого есть 2Fe-2S-ueHTp (E°' ~ ~ +0,28 В);
— цитохром С1 (Е°' ~ +0,23...+0,25 В);
— центры связывания для убихинона: Qin-центр и Qout-центр. Известно, что in vivo комплекс функционирует как димер. Ингибитором комплекса является антибиотик антимицин А, который связывается и блокирует Qin-центр. Кроме того, места связывания хинонов блокируются антибиотиками, получаемыми из миксобактерий, — миксотиазолом и стигмателлином. Цитохром bc1-комплекс окисляет восстановленный убихинон и восстанавливает цитохром с (Е°' ~ +0,25 В) согласно уравнению
QH2 + 2 цит. с+3 + 2Н — Q + 2 цит. с+2 + 4 Н
Электронный транспорт в комплексе сопряжен с переносом протонов из матрикса (in) в межмембранное пространство (out) и генерацией на мембране Δ . События, которые при этом происходят, известны как Q-цикл, который был постулирован П.Митчеллом (1976). Принцип
Q-цикла состоит в том, что перенос Н+ через мембрану происходит в результате окисления и восстановления хинонов на самом комплексе. При этом хиноны соответственно отдают и забирают 2Н+ из водной фазы избирательно с разных сторон мембраны (рис. 4.17, А, Б).
В структуре комплекса III есть два центра, или два «кармана», в которых могут связываться хиноны. Один из них, Qout-центp, расположен между 2Fe-28-центром и гемом bL вблизи внешней (out) стороны мембраны, обращенной в межмембранное пространство. В этом кармане связывается восстановленный QH2. Другой, Qin-карман, предназначен для связывания окисленного убихинона (Q) и расположен вблизи внутренней (in) стороны мембраны, контактирующей с матриксом. Транспорт электрона в комплексе организован следующим образом. Сначала первый QH2 связывается и окисляется в Qout-центре, освобождая при этом 2Н+ в межмембранное пространство. При этом один е уходит на 2Fe-2S-центр белка Риске и далее на цитохром с1 и цитохром с (рис. 4.17, А). В результате в Qout-центре остается анион-радикал — семихинон Q (см. подразд. 2.12 и рис. 2.8). В Qout-центре Q крайне нестабилен и быстро отдает второй электрон на гем bL и далее на гем bH. Расположение этих гемов в комплексе перпендикулярно плоскости мембраны, в результате чего электрон пересекает мембрану в направлении к Qin-центру. В этом «кармане» уже связан окисленный Q, который принимает один е с гема bH и восстанавливается до семихинона (Q ), находящегося здесь в более стабильном состоянии. Затем все события повторяются при окислении второго QH2 (рис. 4.17, Б).
Рис. 4.17. Организация в мембране комплекса III и работа Q-цикла.
В электронном транспорте участвуют: 2Fe-2S-центp белка Риске, темы bL и bH цитохрома b,
цитохром с1 а также убихиноны, связанные в Qi- и Q0-центрах.
А — первый QH2 связывается в Q0-центре и окисляется, отдавая 2Н+ в межмембранное пространство. При этом
1 е уходит на 2Fe-2S-центp и далее на цитохром С1 и цитохром С. В Q0-центре остается нестабильный семихинон Q , который отдает второй электрон на гем bL и далее на гем bH. В итоге второй электрон попадает в Qi-центр и восстанавливает окисленный хинон с образованием более стабильного семихинона Q ; Б — при окислении второго QH2 один электрон опять уходит на 2Fe-2S-центp и последовательно восстанавливает цитохромы с1 и с. Второй электрон через гемы bL и bН попадает в Qi-центр и восстанавливает Q с образованием QH2. При этом 2Н+ захватываются из матрикса. Образованный в Qi-центре QH2 уходит в мембранный пул и может быть вновь окислен на комплексе. Транспорт двух электронов через комплекс сопровождается восстановлением двух цитохромов с и переносом 4Н+ через мембрану за счет работы Q-цикла
Один е уходит на 2Fe-2S-центp и далее на цитохромы с1 и с, а второй е передается через два гема в Qin-карман; здесь семихинон Q принимает второй электрон и полностью восстанавливается до QH2, захватывая 2Н+ из матрикса. Восстановленный таким образом QH2 покидает Qin-центр, уходит в мембранный пул и может быть вновь окислен в Qout-центре комплекса. Таким образом, при окислении двух QH2 в Qout-центpe каждый раз 2Н+ уходят в межмембранное пространство. Из 4е , отданных в комплекс, 2е идут на восстановление цитохрома с, т.е. уходят по цепи, а два других последовательно восстанавливают Q до QH2 в Qin-центре, что сопровождается захватом из матрикса еще 2Н+. Написав общее уравнение, а затем сократив его, получим выражение, приведенное выше:
2QH2 + 2цит.c3+ + 2H + Q = 2Q + QH2 + 2цит.с2+ + 4H ,
или QH2 + 2цит. с3+ + 2H = Q + 2цит.с2+ + 4H
В итоге на каждый е , уходящий по цепи, 2Н+ переносятся из матрикса в межмембранное пространство (2е /4Н+).
Необходимым и парадоксальным условием работы Q-цикла является тот факт, что время жизни и состояние семихинонов в двух центрах связывания разное. В Qout-центpe Q нестабилен и действует как сильный восстановитель, способный отдать е на низкопотенциальный гем bL. В Qin-центре образуется относительно долгоживущий Q потенциал которого позволяет ему действовать в качестве окислителя, принимая электроны с гема bн. Еще один ключевой момент
Q-цикла связан с расхождением двух электронов, входящих в комплекс, по двум разным путям. Механизм такой транспортной «развязки» интригует исследователей. Изучение кристаллической структуры комплекса показало, что позиция 2Fe-2S-центpa относительно других редокс-центров может смещаться. Оказалось, что белок Риске имеет подвижный домен, на котором
собственно и расположен 2Fe-2S-центp. Принимая электрон и восстанавливаясь, 2Fe-2S центр меняет свое положение, отдаляясь от Qout-центpa и тема bL на 1,64 нм (2,12 нм) и тем самым приближаясь к цитохрому с1; Отдав электрон цитохрому, 2Fе-2S-центр, наоборот, сближается с Qout-центром для установления более тесного контакта. Таким образом, функционирует своеобразный челнок (шаттл), гарантирующий уход второго электрона на гемы bL и bН. Пока это единственный пример, когда электронный транспорт в комплексах связан с подвижным доменом в структуре белка.
Данные рентгеноструктурного анализа, позволяющие определить положение активных групп относительно друг друга, дают основание думать, что электронный транспорт возможен не только между двумя темами комплекса, но и между двумя темами bL, расположенными на разных комплексах, ассоциированных в димер.
Комплекс III полифункционален. Недавние исследования на митохондриях пшеницы (Triticum aestivum), картофеля (Solatium tuberosum) и шпината (Spinada oleracea) показали, что одна (две) из субъединиц комплекса, обращенных в матрикс, обладает MPP(Mitochondrial Processing Рерtidasе)-пептидазной активностью и принимает участие в транспорте белков в митохондрии (см. подразд. 4.2.11). Следует сказать, что среди комплексов, способных генерировать Δ , комплекс III наиболее универсальный. Он присутствует не только в митохондриальной мембране, но и в мембранах хлоропластов и хроматофоров. В ЭТЦ фотосинтеза функционирует цитохром
b6 f-комплекс, аналогичный цитохром bc1-комплексу дыхательной цепи.
Итогом сложной работы комплекса III является восстановление цитохрома с. Цитохром с — это небольшой (мол. масса ~ 12,5 кДа) белок, единственный белок цепи, не интегрированный в мембрану. Цитохром с курсирует вдоль мембраны в межмембранном пространстве и переносит по одному е на следующий и последний комплекс дыхательной цепи — цитохромоксидазу.