
- •4.2. Электронный транспорт и синтез атф в митохондриях растений
- •4.2.1. Электрон-транспортная цепь дыхания. Перенос электрона от надн на кислород
- •4.2.2. Комплекс I, или надн-дегидрогеназа. Электронный транспорт в комплексе сопряжен с генерацией δ
- •4.2.3. Комплекс II, или сукцинатдегидрогеназа
- •4.2.4. Комплекс III, или цитохром bc1- комплекс. Электронный транспорт в комплексе сопряжен с генерацией δ
- •4.2.5. Комплекс IV, или цитохромоксидаза. Электронный транспорт в комплексе сопряжен с генерацией δ
- •4.2.6. Электронный транспорт сопряжен с синтезом атф
- •4.2.7. Скорость электронного транспорта. Дыхательный контроль
- •4.2.8. Разобщение электронного транспорта с фосфорилированием
- •4.2.9. Альтернативные над(ф)н-дегидрогеназы
- •4.2.10. Альтернативная оксидаза в митохондриях растений
- •4.2.11. Энергия δ используется для транспорта метаболитов через внутреннюю мембрану митохондрий
4.2. Электронный транспорт и синтез атф в митохондриях растений
4.2.1. Электрон-транспортная цепь дыхания. Перенос электрона от надн на кислород
В
предыдущем разделе были рассмотрены
окислительные превращения глюкозы
в биохимических реакциях, в результате
которых образуются небольшое количество
АТФ и восстановительные эквиваленты в
виде НАДН и ФАДН2.
Заключительный этап дыхания связан с
трансформацией энергии на сопрягающей
мембране и синтезом основной массы АТФ.
Образованные в ЦТК НАДН и ФАДН2
окисляются в ЭТЦ дыхания, локализованной
во внутренней мембране митохондрий.
Окисление сопровождается транспортом
2е
по
цепи переносчиков на О2,
который восстанавливается до воды.
Переносчиками электронов (кроме
убихинона) в дыхательной цепи служат
белки, содержащие простетические группы.
Это флавопротеиды, в составе которых
есть ФМН или ФАД, цитохромы и железосерные
белки (см. подразд. 2.2). Способность этих
соединений отдавать или принимать
электроны может быть охарактеризована
через стандартный редокс-потенциал
Е°'.
В
дыхательной цепи перенос электрона
от НАДН (Е°'
=
-0,32) на О2
(Е°' = +0,82) идет через цепь переносчиков по градиенту, т. е. от соединений с более отрицательным к соединениям с более положительным редокс-потенциалом (рис. 4.13).
Рис. 4.13. Схематичное расположение основных компонентов электрон-транспортной цепи дыхания в соответствии со значениями редокс-потенциала
Последовательность расположения в цепи переносчиков впервые была определена в начале 50-х гг. XX в. Б.Чансом. Дело в том, что многие компоненты дыхательной цепи имеют разные спектры поглощения в окисленном и восстановленном состояниях. При использовании высокочувствительной спектрофотометрии удалось определить их переходы из окисленного в восстановленное состояние и обратно во времени. Обнаружение ингибиторов, избирательно блокирующих электронный транспорт на разных участках, оказалось чрезвычайно полезным в этих исследованиях.
В митохондриальной мембране ЭТЦ организована сложным образом. В составе основной цепи,
т. е. общей для животных, растений и грибов, есть четыре трансмембранных белковых комплекса (I — IV) и АТФ-синтаза (комплекс V) (см. рис. 4.13, 4.14).
Рис. 4.14. Электрон-транспортная цепь внутренней мембраны растительных
митохондрий.
В состав
основной цепи, общей для митохондрий
животных и растений, входят комплексы
I
— IV,
связь между которыми осуществляют
подвижные переносчики электронов —
убихинон (Q)
и цитохром с. Для каждого комплекса
известен специфический ингибитор:
ротенон, антимицин A,
KCN
и СО. Комплексы I,
III
и IV
работают как протонные помпы: стрелками
указана транслокация Н+
из матрикса в межмембранное пространство.
Энергия Δ
обеспечивает работу АТФ-синтазы,
катализирующей синтез АТФ из АДФ и Фн.
Дыхательная цепь растений дополнительно
содержит четыре ротеноннечувствительные
НАД(Ф)Н-дегидрогеназы и альтернативную
оксидазу (АО). НАД(Ф)Н-дегидрогеназы
расположены на внешней (ДГex)
и внутренней (ДГin)
сторонах мембраны. Альтернативная
оксидаза является второй терминальной
оксидазой растений и восстанавливает
О2
до воды в обход комплексов III
и IV.
Специфическим ингибитором альтернативной
оксидазы является салицилгидроксамовая
кислота (SHAM).
I
— комплекс I:
НАДН-дегидрогеназа; II
— комплекс II:
сукцинатдегидрогеназа; III
— комплекс III:
цитохром b6
fкомплекс;
IV
— комплекс IV:
цитохромоксидаза
Каждый из комплексов состоит из многих субъединиц белка, часть которых кодируется митохондриальной ДНК, а часть ядерным геномом. Переносчики электронов входят в состав комплексов: их простетические группы, или редокс-центры, формируют пути переноса электрона. Связь между комплексами осуществляют подвижные переносчики: убихинон и цитохром с. Участники транспорта могут функционировать как двухэлектронные (флавопротеиды и убихинон) и одноэлектронные (цитохромы и Fe-S-белки) переносчики.
Общая схема работы основной дыхательной цепи (далее ДЦ) такова (рис. 4.14). Образованный в матриксе в ходе ЦТК НАДН окисляется на комплексе I, который представляет собой НАДН-дегидрогеназу. Окисление НАДН сопровождается переносом 2 е на убихинон или просто хинон (Q — от англ. quinon). Как было показано в гл. 2 «Биоэнергетика», для полного восстановления Q необходимо два атома водорода. Поэтому, принимая 2 е , убихинон захватывает недостающие 2Н+ из матрикса и переходит в восстановленную форму убихинола (QH2). Убихинон может быть также восстановлен в результате окисления сукцината на комплексе II, который представляет собой сукцинатдегидрогеназу и является также компонентом ЦТК. Окисление сукцината до фумарата в ЦТК сопровождается восстановлением ФАД — простетической группы комплекса II, с которой е передаются на убихинон.
Убихинон в виде пула Q и QH2 растворен в липидном бислое мембраны. С пула QH2 электроны уходят на комплекс III, или цитохром b6 f -комплекс, с которого передаются на цитохром с, локализованный в межмембранном пространстве. Этот небольшой водорастворимый белок действует как одноэлектронный переносчик между комплексами III и IV, перемещаясь путем диффузии вдоль мембраны. Комплекс IV, или цитохромоксидаза, — последний комплекс ДЦ, терминальная оксидаза всех аэробных организмов. Комплекс акцептирует электроны с цитохрома с и передает их на О2, который в итоге восстанавливается до Н2О.
Для полного восстановления О2 необходимо 4 е , поэтому 4 цитохрома с должны быть окислены на комплексе IV, чтобы произошла реакция
О2 + 4Н+ + 4 е = 2Н2О
Перенос е в цепи по градиенту редокс-потенциала представляет собой экзергонический процесс с отрицательным значением ∆G0'. Освобождаемая при этом свободная энергия запасается на мембране в форме Δ . Электронный транспорт сопряжен с генерацией Δ , так как неразрывно связан с направленным переносом ионов Н+ через мембрану. Три комплекса цепи — I, III, IV — функционируют как протонные помпы, перекачивая протоны из матрикса в межмембранное пространство. Энергия Δ реализуется для синтеза АТФ из АДФ и Фн на
АТФ-синтазных комплексах (F0F1-АТФазах), также интегрированных во внутреннюю мембрану митохондрий.
Сопряженный с электронным транспортом синтез АТФ получил название окислительного фосфорилирования. Такой является основная, или «стандартная», дыхательная цепь, общая для животных и растений, но у растений в отличие от животных дыхательная цепь организована сложнее: помимо комплексов I— IV она содержит пять дополнительных ферментов: четыре НАД(Ф)Н-дегидрогеназы, способные наряду с комплексом I окислять НАДН, а также и НАДФН. Но наиболее интересная и удивительная особенность дыхания растений связана с присутствием во внутренней мембране растительных митохондрий альтернативной оксидазы. Альтернативная оксидаза (АО) окисляет QH2 и восстанавливает О2 до воды и является, таким образом, второй терминальной оксидазой в дыхательной цепи растений. С пула QH2 электроны могут идти по двум направлениям — по цитохромному пути через комплексы III и IV, или по альтернативному пути через альтернативную оксидазу (рис. 4.14). Электронный транспорт по альтернативному пути не сопровождается генерацией Δ поэтому большая часть энергии электронного потока рассеивается в виде тепла.
Рассмотрим подробно события, которые происходят на комплексах ДЦ и которые являются предметом интенсивного изучения во многих лабораториях мира. Все комплексы удалось выделить из мембран и исследовать (за исключением комплекса I) их трехмерную молекулярную структуру с разрешением 0,29 нм с помощью ренгеноструктурного анализа. В то же время события на комплексах нельзя считать до конца установленными, и полученные факты
только приближают нас к истине. При этом следует признать, что исследований на растительных объектах было мало, и во многом наши знания базируются на аналогиях с другими, более изученными системами животного или бактериального происхождения.