
- •Предмет, завдання і методологія біотехнології рослин
- •Історія розвитку методу культури клітин, тканин та органів рослин
- •Організація і обладнання біотехнологічної лабораторії
- •Посуд, інструменти і матеріали
- •Миття посуду
- •Методи стерилізації посуду
- •Методи стерилізації інструментів
- •Контрольні запитання і завдання
- •Живлення культури тканин
- •Мінеральне живлення
- •Вуглеводневе живлення
- •Стимулятори росту
- •Фітогормони
- •Рослинні екстракти
- •Приготування живильних середовищ
- •Стерилізація живильних середовищ
- •Стерилізація рослинного матеріалу
- •Контрольні запитання і завдання
- •Культура ізольованих органів і зародків
- •Контрольні запитання і завдання
- •Культура ізольованих клітин і тканин
- •Культура калюсних тканин
- •Особливості калюсних клітин
- •Генетика калюсних клітин
- •Культура клітинних суспензій
- •Культивування ізольованих клітин
- •Методи оцінки результатів
- •Мікроклональне розмноження рослин
- •Методи мікроклонального розмноження рослин
- •Етапи мікроклонального розмноження рослин
- •Контрольні запитання і завдання
- •Кріоконсервація клітин рослин
- •Контрольні запитання і завдання
- •Клітинна селекція
- •Спонтанні та індуковані мутанти
- •Контрольні запитання і завдання
- •Культура рослинних клітин і речовини вторинного синтезу
- •Фактори, які впливають на вихід продуктів
- •Компоненти середовища
- •Фізичні фактори
- •Селекція і відбір
- •Утворення вторинних речовин в культурах рослинних тканин
- •Глікозиди
- •Контрольні запитання і завдання
- •Культура ізольованих протопластів і соматична гібридизація
- •Виділення і очистка ізольованих протопластів картоплі
- •Виділення протопластів із мезофілу листка
- •Виділення протопластів із культури клітин
- •Культивування ізольованих протопластів
- •Умови культивування протопластів
- •Злиття ізольованих протопластів
- •Селекція соматичних гібридів
- •Генетична трансформація
- •Вектори для генетичної трансформації рослин
- •Плазміди агробактерій як вектори для трансформації
- •Вектори на основі днк-вмісних вірусів рослин
- •Методи перенесення чужинних генів у рослини
- •Трансгени і екологія
- •Контрольні запитання і завдання
- •Практичний курс Приготування і стерилізація живильних середовищ
- •Робота 1. Приготування маточних розчинів для середовища Мурасиге і Скуга (мс)
- •Робота 2. Приготування середовища Мурасиге і Скуга (мс). Стерилізація середовища автоклавуванням
- •Робота 3. Стерилізація рідких середовищ пропусканням через бактеріальний фільтр (холодна стерилізація)
- •Стерилізація рослинного матеріалу Робота 4. Стерилізація насіння і вирощування асептичних рослин
- •Робота 5. Стерилізація бульб, коренеплодів і кореневищ
- •Робота 6. Стерилізація листків
- •Робота 7. Стерилізація меристем
- •Калюсна культура Робота 8. Отримання первинного калюсу із різних експлантатів асептичних рослин
- •Робота 9. Дослідження явища фізіологічної полярності
- •Робота 10. Отримання перевивної калюсної культури
- •Робота 11. Дослідження впливу співвідношення ауксин:цитокінін у живильному середовищі на ріст калюсної тканини та її тип
- •КлітиннА суспензіЯ Робота 12. Отримання клітинної суспензії з калюсної тканини
- •Мікроклональне розмноження рослин Робота 13. Мікроклональне розмноження рослин живцями
- •Робота 14. Стебловий органогенез із листкових дисків тютюну
- •Середовища для мікроклонального розмноження тютюну та моркви (1 л середовища)
- •Робота 15. Ризогенез із листкових дисків тютюну
- •Робота 16. Прямий ембріогенез
- •Хід роботи
- •Робота 17. Непрямий ембріогенез
- •Культура ізольованих протопластів вищих рослин Робота 18. Виділення і культивування ізольованих протопластів вищих рослин
- •Словник термінів
- •Список літератури
КлітиннА суспензіЯ Робота 12. Отримання клітинної суспензії з калюсної тканини
Мета роботи: набуття навичок по отриманню клітинних суспензій; отримати суспензійну культуру картоплі (тютюну, топінамбура тощо).
Матеріали і обладнання: калюсна культура картоплі (тютюну, топінамбура тощо), вирощена на середовищі для калюсу №1 ( табл. 8 ), колби Ерленмейера на 250 мл з рідким (без агару) середовищем для калюсу №1 (100 мл середовища на колбу), стерильні чашки Петрі, фольга, пінцети, скальпелі, спирт, спиртівка, ламінар-бокс, шейкер, стерильні лійки з нейлоновими фільтрами.
ХІД РОБОТИ
1. Перенести шматочки калюсної тканини у стерильну чашку Петрі.
2. Стерильним пінцетом подрібнити калюс на фрагменти.
3. Фрагменти калюсної тканини помістити у колби Ерленмейера з рідким живильним середовищем ( 2-3г/100 мл ).
4. Колби з рослинним матеріалом культивувати у темряві на шейкері при 120 об/хв.
5. Через 10-14 днів середовище з клітинною суспензією профільтрувати через нейлон.
6. Фільтрат розділити на 3 порції, які розлити у стерильні колби Ерленмейера.
7. До клітинної суспензії додати свіже середовище, довести об’єм до 100 мл.
8. Колби з суспензійною культурою знову помістити на шейкер.
9. Субкультивування клітинної суспензії проводити кожні 14-18 днів.
Для цього у ламінар-боксі із колби з клітинною суспензією забрати 50-60 мл ( 2/3 об’єму) середовища з клітинами і замінити свіжим середовищем того ж складу. Відібране середовище перенести у стерильну колбу Ерленмейера і свіжим середовищем довести об’єм до 100 мл.
Мікроклональне розмноження рослин Робота 13. Мікроклональне розмноження рослин живцями
Мета роботи: оволодіти методикою вегетативного розмноження рослин in vitro, яка базується на активації пазушних меристем.
Матеріали і обладнання: асептичні рослини картоплі, гвоздики або тютюну, стерильне середовище МС (у пробірках для рослин картоплі і гвоздики або баночках для рослин тютюну), стерильні чашки Петрі, скальпелі, пінцети, спирт, спиртівка, ламінар-бокс.
ХІД РОБОТИ
1. Пробірку з рослиною протерти спиртом і обпалити горло у полум’ї спиртівки.
2. Стерильним пінцетом витягти рослину-регенерант із пробірки, в якій вона росла і помістити її у стерильну чашку Петрі.
3. Підтримуючи рослину пінцетом, скальпелем порізати стебло на сегменти довжиною приблизно 10 мм так, щоб частина над брунькою становила 2-3 мм, а під нею - 5-7 мм. Обрізати листки.У верхівки рослини листки не обрізати.
4. Пінцетом перенести кожний сегмент у пробірку з живильним середовищем МС.
Пазуха листка має знаходитись над середовищем.
5. Культивувати при температурі 250-280С, освітленні 2-3 клк, 16-годинному фотоперіоді, відносній вологості повітря 70-75%.
6. Через 3-4 тижні з пазушних бруньок розвиваються рослини-регенеранти, які знову можна використати для розмноження живцюванням та інших цілей.
Робота 14. Стебловий органогенез із листкових дисків тютюну
Мета роботи: отримати рослини тютюну, регенеровані із листкових дисків.
Матеріали і обладнання: рослини тютюну, вирощені in vitro, баночки зі стерильним середовищем МС, чашки Петрі з середовищем МКР-1 (табл. 15), стерильні чашки Петрі, скальпелі, пінцети, спирт, спиртівка, парафілм, ламінар-бокс.
Таблиця 15