
- •Предмет, завдання і методологія біотехнології рослин
- •Історія розвитку методу культури клітин, тканин та органів рослин
- •Організація і обладнання біотехнологічної лабораторії
- •Посуд, інструменти і матеріали
- •Миття посуду
- •Методи стерилізації посуду
- •Методи стерилізації інструментів
- •Контрольні запитання і завдання
- •Живлення культури тканин
- •Мінеральне живлення
- •Вуглеводневе живлення
- •Стимулятори росту
- •Фітогормони
- •Рослинні екстракти
- •Приготування живильних середовищ
- •Стерилізація живильних середовищ
- •Стерилізація рослинного матеріалу
- •Контрольні запитання і завдання
- •Культура ізольованих органів і зародків
- •Контрольні запитання і завдання
- •Культура ізольованих клітин і тканин
- •Культура калюсних тканин
- •Особливості калюсних клітин
- •Генетика калюсних клітин
- •Культура клітинних суспензій
- •Культивування ізольованих клітин
- •Методи оцінки результатів
- •Мікроклональне розмноження рослин
- •Методи мікроклонального розмноження рослин
- •Етапи мікроклонального розмноження рослин
- •Контрольні запитання і завдання
- •Кріоконсервація клітин рослин
- •Контрольні запитання і завдання
- •Клітинна селекція
- •Спонтанні та індуковані мутанти
- •Контрольні запитання і завдання
- •Культура рослинних клітин і речовини вторинного синтезу
- •Фактори, які впливають на вихід продуктів
- •Компоненти середовища
- •Фізичні фактори
- •Селекція і відбір
- •Утворення вторинних речовин в культурах рослинних тканин
- •Глікозиди
- •Контрольні запитання і завдання
- •Культура ізольованих протопластів і соматична гібридизація
- •Виділення і очистка ізольованих протопластів картоплі
- •Виділення протопластів із мезофілу листка
- •Виділення протопластів із культури клітин
- •Культивування ізольованих протопластів
- •Умови культивування протопластів
- •Злиття ізольованих протопластів
- •Селекція соматичних гібридів
- •Генетична трансформація
- •Вектори для генетичної трансформації рослин
- •Плазміди агробактерій як вектори для трансформації
- •Вектори на основі днк-вмісних вірусів рослин
- •Методи перенесення чужинних генів у рослини
- •Трансгени і екологія
- •Контрольні запитання і завдання
- •Практичний курс Приготування і стерилізація живильних середовищ
- •Робота 1. Приготування маточних розчинів для середовища Мурасиге і Скуга (мс)
- •Робота 2. Приготування середовища Мурасиге і Скуга (мс). Стерилізація середовища автоклавуванням
- •Робота 3. Стерилізація рідких середовищ пропусканням через бактеріальний фільтр (холодна стерилізація)
- •Стерилізація рослинного матеріалу Робота 4. Стерилізація насіння і вирощування асептичних рослин
- •Робота 5. Стерилізація бульб, коренеплодів і кореневищ
- •Робота 6. Стерилізація листків
- •Робота 7. Стерилізація меристем
- •Калюсна культура Робота 8. Отримання первинного калюсу із різних експлантатів асептичних рослин
- •Робота 9. Дослідження явища фізіологічної полярності
- •Робота 10. Отримання перевивної калюсної культури
- •Робота 11. Дослідження впливу співвідношення ауксин:цитокінін у живильному середовищі на ріст калюсної тканини та її тип
- •КлітиннА суспензіЯ Робота 12. Отримання клітинної суспензії з калюсної тканини
- •Мікроклональне розмноження рослин Робота 13. Мікроклональне розмноження рослин живцями
- •Робота 14. Стебловий органогенез із листкових дисків тютюну
- •Середовища для мікроклонального розмноження тютюну та моркви (1 л середовища)
- •Робота 15. Ризогенез із листкових дисків тютюну
- •Робота 16. Прямий ембріогенез
- •Хід роботи
- •Робота 17. Непрямий ембріогенез
- •Культура ізольованих протопластів вищих рослин Робота 18. Виділення і культивування ізольованих протопластів вищих рослин
- •Словник термінів
- •Список літератури
Робота 1. Приготування маточних розчинів для середовища Мурасиге і Скуга (мс)
Мета роботи: Приготувати маточні розчини макро- і мікросолей, вітамінів, фітогормонів, Fe-хелату.
Матеріали і обладнання: NH4NO3 , KNO3 , CaCl2, Mg SO4·7H2O, KH2PO4, H3BO3, MnSO4·4H2O, ZnSO4·4H2O, KI, Na2MoO4·2H2O, CuSO4·5H2O, CoCl2·6H2O, FeSO4·7H2O, Na2EDTA·2H2O, спирт, 1N НCl i 1N КOH, ваги, магнітний змішувач, плитка, лопатки (шпателі), лабораторний посуд - стакан або колба об’ємом 1 л, мірні циліндри 500 мл, 100 мл, мірні піпетки - 5 мл, 1 мл, пляшки з темного скла - 1 л, 100 мл, 50 мл, 25 мл.
Для розчинів макросолей і вітамінів бажано стерильний посуд.
ХІД РОБОТИ
Приготувати розчини макро- і мікросолей.
Маточні розчини макросолей готують у концентраціях, що у 10 разів перевищують потрібні, а маточні розчини мікроелементів – у концентраціях у 100 разів більших.
Макро МС - 1 л розчину солей; по 100 мл розчину солей на 1 л середовища.
NH4NO3 16,5 г
KNO3 19,0 г
CaCl2 3,3 г
Mg SO4·7Н2О 4,2 г
KH2PO4 1,7 г
Мікро МС - 100 мл розчину солей; по 1 мл розчину солей на 1 л середовища.
H3BO3 620 мг
MnSO4·4H2O 2,23 г
ZnSO4·4H2O 860 мг
KI 83 мг розчиняти окремо
Na2MoO4·2H2O 25 мг розчиняти окремо
CuSO4·5H2O 2,5 мг
CoCl2·6H2O 2,5 мг
2. Приготувати розчин Fe-хелат.
100 мл розчину; по 5 мл на 1 л середовища.
FeSO4·7H2O 557 мг
Na2EDTA·2H2O 745 мг
Наважки розчинити окремо у бідистиляті, злити і довести до кипіння.
3. Приготувати розчини фітогормонів: 2,4-Д і кінетин.
Розчини фітогормонів готують таким чином: цитокініни (кінетин, зеатин, БАП) спочатку розчиняють у невеликій кількості 1N розчину лугу або кислоти, ауксини (ІОК, НОК, 2,4-Д) - у краплі етанолу, підігрівають і додають відповідний об’єм бідистильованої води; гібереліни розчиняють у бідистильованій воді.
Концентрація 1 мг/мл.
Приготувати розчини вітамінів В1, В6 і РР.
Розчиняти у бідистильованій воді.
Концентрація 1 мг/мл.
Робота 2. Приготування середовища Мурасиге і Скуга (мс). Стерилізація середовища автоклавуванням
Мета роботи: приготувати живильне середовище Мурасиге і Скуга (МС) і простерилізувати середовище автоклавуванням.
Матеріали і обладнання: маточні розчини макро- і мікро солей, Fe-хелату і вітамінів, мезо-інозит, сахароза, агар, 1 N HCl і 1N КОН, ваги, шпателі, магнітний змішувач, рН-метр, плитка, автоклав, стакан або колба об’ємом 1 л, мірні циліндри - 500 мл, 100 мл, мірні піпетки - 5 мл, 1 мл, ватні пробки або фольга.
ХІД РОБОТИ
Для приготування 1 л середовища Мурасиге і Скуга (МС) необхідно взяти:
Макро МС 100 мл
Мікро МС 1 мл
Fe-хелат 5 мл
В1 1 мг
В6 1 мг
РР 0,5 мг
мезо-інозит 100 мг
сахароза 30 г (3%)
агар 7 г
1. Для приготування 1 л середовища МС колбу або стакан (1 л) помістити на магнітний змішувач, налити 250-300 мл бідистиляту і додати точно відмірену кількість розчинів макро- і мікросолей, Fe-хелат, вітамінів і фітогормонів, якщо останні входять до складу середовища.
2. Зважити потрібну кількість мезо-інозиту, сахарози і органічних добавок, якщо вони входять до складу середовища. Кожну наважку розчинити у окремій порції бідистильованої води.
3. Довести рН до 5,6-5,8 за допомогою 1N КОН або 1N НСl.
4. Наважку агару помістити у термостійку колбу або стакан, залити холодною бідистильованою водою (300-400 мл), залишити на 20 хв. для набухання і нагріти, постійно помішуючи до повного розчинення агару.
При приготуванні рідкого середовища агар не додається.
5. Додати розчинений агар до розчину 1 і довести до потрібного об’єму бідистильованою водою. Розчин і воду підігріти.
6. Розлити тепле середовище у колби або пробірки і закрити ватними пробками або фольгою.
У колби наливаємо середовище до 1/2-2/3 об’єму.
7. Простерилізувати середовище в автоклаві при тиску 0,8-1 атм (температура 115-1200С ) 20-25 хв залежно від об’єму (табл. 2).
Після закінчення стерилізації середовища в автоклаві варто повільно зменшувати тиск в апараті і відкривати кришку тільки після того, як внутрішній тиск буде дорівнювати зовнішньому ( на манометрі стрілка буде на 0). Інакше, через різку зміну тиску може статися змочування середовищем пробок і навіть їх виштовхування.