- •2Стол №1
- •3Стол №7
- •4Стол №5
- •5Стол №10
- •8Стол №2
- •9 Методика проведения разгрузочных дней
- •10 Искусственное питание
- •I. Зондовое питание
- •II. Кормление больного через гастростому
- •III. Питание при помощи клизмы
- •IV. Парентеральное питание
- •11 Измерение температуры тела
- •17 18 Ванны
- •21Лечение отека легких (уменьшение венозного притока к сердцу)
- •23Неотложная помощь при коллапсе
- •Причины коллапса
- •Симптомы коллапса
- •Первая медицинская помощь при коллапсе
- •24 Оказание неотложной доврачебной помощи при гипертоническом кризе
- •25 Первая помощь при отравлениях.
- •3Санитарный режим больницы
- •4 Транспортировка пациента в лечебное отделение №18/51
- •5 Уход за полостью рта, носа, глазами № 26/64
- •1 .Уход за полостью рта.
- •2. Уход за носом. № 64
- •3.Уход за глазами. № 64
- •7 Определение массы тела № 2/19
- •8 Приготовление моющих и дезинфицирующих растворов разной концентрации № 8/35
- •I. Общая часть
- •Капли в нос, глаза и уши
- •12 Подмывание больных
- •13 Проведение мероприятий по профилактике пролежней №23/58
- •15 Медицинская диета № 10а
- •Медицинская диета № 10и
- •1610 Искусственное питание
- •I. Зондовое питание
- •II. Кормление больного через гастростому
- •III. Питание при помощи клизмы
- •IV. Парентеральное питание
- •17 Измерение температуры тела
- •18 Емкость для хранения термометров ехт
- •19Уход за больными с лихорадкой
- •20 Наружное применение лекарств
- •23 Применение горчичников № 40/81
- •25 Применение согревающего компресса № 42/83
- •26 Асептика
- •27Стерилизация перевязочного материала
- •31Подкожная инъекция
- •32 Бензидиновая проба
- •Фенолфталеиновая проба
- •Сбор мокроты
- •Факторы, влияющие на результат исследования
- •34 Различия у больных с легочной и сердечной патологией
- •37Подготовка больного к выполнению пункции плевральной полости
- •38Измерение артериального давления
- •39Помощь при острой сердечной недостаточности
- •Неотложная помощь при острой сердечной недостаточности
- •42Забор материала из зева
- •Забор материала из носа
- •43Неотложная помощь при обморокe
- •4421Лечение отека легких (уменьшение венозного притока к сердцу)
- •47 Оказание неотложной доврачебной помощи при гипертоническом кризе
- •48 Техника проведения лекарственных клизм
- •Противопоказания
- •50Исследование кала.
- •52Уход за больными с недержанием мочи
- •Уход за больными с недержанием кала
- •Как облегчить уход за больными людьми с недержанием
- •55Подготовка больного к ирригоскопии
- •56Оказание помощи при рвоте
- •58Подготовка больных к эндоскопическим исследованиям органов желудочно – кишечного тракта
- •Постановка сифонной клизмы
- •62 Взятие мочи для анализа
- •6364Проба по Зимницкому
- •Проба Зимницкого
- •Подготовка пациента.
- •Сбор мочи
- •Ход исследования
- •Нормальные значения пробы Зимницкого
- •64 Берется и засовывается. Перед этим смазать вазелином. Катетеризация мочевого пузыря
- •Введение катетера женщинам
- •Введение катетера мужчинам
- •Промывание мочевого пузыря
- •65 Сбор мочи методом Нечипоренко
- •67Перевозка трупов в морг
26 Асептика
Асептикой называется комплекс мероприятий, обеспечивающий предупреждение попадания микробов в операционную рану. Для этой цели используются организационные мероприятия, физические факторы, некоторые антисептические и химические препараты. Уничтожение микробов и их спор называется стерилизацией. Стерильность может быть достигнута различными способами: обжиганием, прокаливанием, кипячением, автоклавирова-нием, обработкой химическими веществами.
Стерилизация обжиганием. Обжигание не дает хорошей стерилизации и портит инструментарий, поэтому его производят редко, например, при срочных операциях, когда нет готового стерильного инструментария. С этой целью на крышку стерилизатора или в тазик помещают инструменты, наливают небольшое количество 96° спирта и поджигают. После выгорания спирта инструменты можно применять.
Стерилизация сухим жаром (прокаливание) нашла более широкое распространение для стерилизации металлического инструмента. Для этой цели используют специальный сухожаровой шкаф. Шкаф закрывают и включают в электрическую сеть. Через 10—15 минут температура в шкафу повышается до 120—140°С. Постоянство температуры регулируется контактным термометром. Срок стерилизации 30 мин. При этом методе обеспечивается надежная стерилизация и не портятся инструменты.
27Стерилизация перевязочного материала
Получить представление о работе ознакомления с оснащением, оборудованием, методами стерилизации, методами контроля за стерильностью.Пронаблюдать, усвоить и принять непосредственное участие в стерилизации перевязочного материала и операционного белья; Готовить перевязочный материал из марли укладывать их и операционное белье в биксы Шиммельбуша. Правильно поставить биксы в автоклавы с открытыми отверстиями, что положить в биксы и в автоклав для контроля за стерильностью. Ознакомиться как идет автоклавирование, убедиться после автоклавирования, что происходит с бензойной кислотой, с серой и т. д. При хорошей стерилизацией пронаблюдать как проводится проба Микулича. Подготовить и принять участие в стерилизации инструментов и шприцев. Ознакомиться с правилами обработки шприцев и методами контроля, что отсутствует следы крови перед закладкой их сухожаровые шкафы и что используют для контроля и как происходит стерилизация в сухожарном шкафу.
В работе № 1 в материальной или чистой перевязочной учатся делать салфетки, шарики, тампоны, турунды из марли и укладывают по существующим правилам в биксы. В большие биксы укладывают халаты, простыни, колпачки, маски.
В каждый из биксов кладут пенициллиновые флакончики с серой, и закрывают крышку биксов. Инструменты заворачивают в большие простыни, наволочки или пеленки. Их не обязательно класть в биксы.
В работе № 2 другая группа студентов в манипуляционной моют проточной водой с мылом использованные многоразовые шприцы, смывают оставшуюся кровь. Протерев шприцы, укладывают их в биксы.
В работе № 3 студенты все уложенные в биксах совместно с сестрами относят в ЦСО, где совместно с работниками ЦСО ставят на шприцах и иглах амидопириновую пробу, если она отрицательная помещают их в ванную с моющими средствами где они смачиваются в течение 15-20 минут при 50 градусов температуры. Затем споласкивают и моют в проточной воде с серой, а затем вновь споласкивают и ставят фенолфталеиновую пробу, если она отрицательная, то кладут шприцы и иглы в большой стерилизатор и кипятят в течение 5-10 минут для обессоливания. Затем в отдельной комнате после сушки укладывают каждый шприц с двумя иглами в «Крафт-пакеты» и на подставке относят и ставят в сухожаровый шкаф, где при 180 градуса на протяжении 45 минут стерилизуют. Стерильность проверяется также, если мочевина или бензойная кислота расплавилась. В автоклавы кладут биксы с материалами или с инструментами в завернутые в простыни. Биксы обязательно с открытыми отверстиями. И начинают стерилизовать. Чаще стерилизуют в автоклавах под давлением, так как при этом создается высокая температура и даже спороносные погибают.
Чаще стерилизуют при 2 атм давления в течение 30 минут. Это значит температура в автоклаве была не ниже 120 градусов. Об этом скажет и тот контроль который был вложен в автоклав, т. е. бензойная кислота или сера они расплавляются. Только обязательно перед тем как собирать биксы из автоклава боковые отверстия в биксах должны стать закрыты. Затем сестра отделения уносит свои материалы к себе в отделение.
28Стерилизация катетеров в 2% растворе соды (карбоната натрия) ускоряется. Этот раствор губительно действует на оболочки бактериальных спор и несколько повышает точку кипения раствора. В нем стерилизация длится 20 мин с момента закипания.
Резиновые катетеры можно стерилизовать и автоклавированием при давлении 1 атм и температуре 120°С с экспозицией в 10 мин.
Применяется и холодная стерилизация катетеров антисептическими растворами. В этих случаях они помещаются на 3 ч в тройной раствор (карболовая кислота — 3 г, гидрокарбонат натрия — 15 г, формалин — 20 г и стерильная дистиллированная вода — до 1000 мл).
При использовании для стерилизации раствора сулемы (1 : 1000) катетеры выдерживаются в нем до 2 ч, а при стерилизации диоцидом (1:5000) или оксицианидом ртути 1:1000 — 30 мин.
Стерильные резиновые катетеры хранятся в герметичном стерильном шкафу. Они раскладываются в зависимости от их размера по шкале Шарьера и вида.
29Хранение лекарственных средств в отделении
Как удобнее распределить на посту медицинской сестры различные (иногда
до 50 наименований) лекарственные средства? Где их хранить, учитывая, что одни
разлагаются на свету, другие теряют свои свойства при комнатной температуре,
третьи испаряются и т. п.?
Прежде всего следует разделить лекарственные средства в зависимости от способа
введения. Все стерильные растворы в ампулах и флаконах (на флаконах с препаратами,
изготовленными в аптеке, должна быть голубая этикетка) хранят в процедурном
кабинете в стеклянном шкафу. На одной из полок располагают антибиотики и их растворители,
на другой (нижней) — флаконы для капельного вливания жидкостей вместительностью
200 и 500 мл, на остальных полках — коробки с ампулами, не входящими
в список А (ядовитые) или Б (сильнодействующие), т. е. растворы витаминов, дибазола,
папаверина, магния сульфата и др. В холодильнике при определенной температуре (от
+2 до +10 °С) хранятся вакцины, сыворотки, инсулин, белковые препараты
30 Стерилизация кипячением предполагает соблюдение ряда правил и определенной последовательности в обработке шприцев и игл. После выполненной инъекции шприц и иглу многоразового назначения сразу промывают холодной проточной водой, чтобы удалить остатки крови и лекарства (после засыхания сделать это будет труднее). Иглы и шприцы в разобранном виде помещают на 15 мин в горячий (50 °C) моющий раствор, приготовленный из расчета 50 г моющего порошка, 200 мл пергидроля на 9750 мл воды.
После тщательного мытья в указанном растворе с применением «ершиков» или ватно‑марлевых тампонов многоразовые шприцы шприцы и иглы вторично споласкивают в проточной воде.
Использованные многоразовые шприцы и иглы после обеззараживания собирают в специальный контейнер для последующей утилизации.
Затем для проверки качества проведенной обработки выборочно ставят пробы для выявления в иглах и шприцах остатков крови и моющего вещества.
Присутствие следов крови устанавливают с помощью бензидиновой пробы. Для этого смешивают несколько кристаллов бензидина с 2 мл 50 % раствора уксусной кислоты и 2 мл 3% раствора перекиси водорода. Несколько капель полученного раствора вносят в шприц и пропускают через иглу. Появление зеленого окрашивания свидетельствует о наличии в инструментах остатков крови. В таких случаях шприцы и иглы нуждаются в повторной обработке во избежание передачи различных заболеваний (например, сывороточного гепатита, СПИДа).
Остатки моющего средства определяют с помощью пробы с фенолфталеином. Основная реакция, которую дает моющий раствор, обусловливает появление розового окрашивания после добавления нескольких капель 1 % раствора фенолфталеина.
Стерилизация инструментов для инъекций производится кипячением в стерилизаторе, который представляет собой прямоугольную металлическую коробку с крышкой и вставляющейся внутрь решеткой. Решетка имеет ручки или ушки, при помощи которых после кипячения ее вынимают из воды вместе с лежащими на ней инструментами.
Перед стерилизацией следует проверить чистоту стерилизатора и, если он окажется недостаточно чистым, вымыть его щеткой в горячей воде с мылом и содой и вытереть. Закладывая в стерилизатор шприцы (инструменты), нужно осмотреть их и, если на них будет обнаружен маслянистый налет (камфарное масло), его следует протереть сухой ватой или вымыть с мылом и промыть каким‑нибудь растворителем жира (спиртом, эфиром), после чего разобрать, завернуть в марлю и положить в стерилизатор.
Перед стерилизацией каждую иглу нужно тщательно проверить на проходимость. Это делают или с помощью мандрена, или пропустив через иглу струю воды. При этом нужно проверить и остроту иглы, внимательно осмотрев ее через лупу.
Иглы стерилизуют без мандренов, завернув в марлю, чтобы предохранить от соприкосновения острием с металлическими стенками стерилизатора, отчего они могут затупиться, и избежать образования накипи на инструментах. Кроме шприцев и игл, в стерилизатор помещают два анатомических пинцета и крючки для решетки.
Кипятить инструменты лучше всего в дистиллированной воде, в крайнем случае в кипяченой и профильтрованной воде комнатной температуры. Предварительное кипячение и фильтрация освобождают воду от части солей, которые могут во время стерилизации образовать на инструментах накипь. Вода не должна быть очень холодной, чтобы не лопнули цилиндры шприцев. В стерилизатор наливают столько воды, чтобы она покрыла все инструменты. Длительность кипячения составляет 30 минут.
Однако такой способ не гарантирует полной стерилизации: не погибают вирусы, некоторые микробы и споры, есть возможность заражения через шприц и иглы болезнью Боткина (инфекционная желтуха). Надежнее стерилизовать инструменты горячим воздухом с температурой 180–200 °C в течение 45 мин после предварительного мытья и пятиминутного кипячения с целью освобождения их от остатков лекарства.
Для больных, получающих курсовое лечение (антибиотики и др.) как на дому, так и в стационаре, рекомендуется иметь разовые шприцы. Во время стерилизации инструментов медицинская сестра должна подготовить свои руки к проведению процедуры: вымыть их теплой водой с мылом и щеткой; протереть их, особенно пальцы, спиртом; смазать настойкой йода околоногтевые складки кожи.
Обычно инъекции производят в процедурном кабинете стационара или поликлиники. Больным, соблюдающим постельный режим, инъекции делают в палате или на дому.
В процедурном кабинете на рабочем столике сестры, кроме стерилизатора, должен стоять бикс (стерилизационная коробка) со стерильным материалом (ватными тампонами, марлевыми салфетками, палочками с ватой), флакон со спиртом, флакон с настойкой йода, лоток для использованных инструментов и материала и стеклянная банка, наполненная дезинфицирующей жидкостью, в которую погружен стерильный корнцанг или пинцет. В качестве дезинфицирующей жидкости рекомендуется применять раствор Каретникова. Столик должен иметь хорошее местное освещение.
Приступая к манипуляциям со стерильными инструментами, нужно твердо усвоить, что все, к чему прикасаются руки, теряет стерильность, потому что даже очень чистые, в обычном понимании этого слова, руки не являются стерильными. Особенно досадно нарушить стерильность всех инструментов, положив в стерилизатор с прокипяченными инструментами уже использованный. В таком случае все надо прокипятить повторно. (Длительное и повторное кипячение портит инструменты – острые части тупятся, поверхность становится шероховатой.)
После кипячения крышку со стерилизатора снимают и кладут на стол внутренней (стерильной) поверхностью вверх. Корнцангом достают крючки, беря их руками за один конец, а другим (стерильным), цепляя решетку, вынимают ее из воды вместе с инструментами и ставят поперек стерилизатора. Затем корнцангом достают пинцеты, разворачивают ими марлю и выбирают нужные для инъекции шприц и иглу: поршень берут за рукоятку, цилиндр – с наружной стороны, а иглу – за муфту. Шприц собирают пинцетами над крышкой стерилизатора, надевают и закрепляют вращательными движениями иглу и кладут на крышку (игла не должна ни с чем соприкасаться)
