3 Дезинфекция рук

В передаче возбудителей внутрибольничной инфекции в стоматологии существенную роль играют руки

Различают три уровня обработки рук медицинского персонала:

1. обычное мытье;

2. гигиеническая обработка рук;

3. хирургическая обработка рук.

Обычное мытье рук обеспечивает удаление грязи и транзиторной микрофлоры, которая попадает на кожу врача во время контакта с пациентом или контаминированными объектами окружающей среды. Осуществляется тщательным мытьем рук:

• до начала работы;

• до и после физического контакта с пациентом;

• при смене одежды и места работы.

Мыть необходимо дважды, т.к. в этом случае эффективность составит 65 – 70 % (при однократном – 40 %).

Лучше использовать жидкое мыло в одноразовых дозаторах.

При использовании мыла в кусках необходимо, чтобы мыльница обеспечивала высыхание мыла перед последующим использованием.

Методика:

1. Снять украшение и часы (т.к. снижается качество);

2. Сухой рукой выдавить жидкое мыло из дозатора или берется сухой рукой сухое мыло;

3. Под струей воды энергично втирать мыло не менее 30 секунд;

4. Смыть остатки мыла под струей воды и повторить;

5. Высушить одноразовым бумажным или индивидуальным полотенцем.

6. Гигиеническая обработка рук

7. • перед одеванием перчаток и после их снятия;

• перед уходом за пациентом с ослабленным иммунитетом или при проведении обходов в палатах (когда нет возможности мыть руки после осмотра каждого больного);

8. • перед и после выполнения инвазивных процедур, малых хирургических манипуляций, ухода за раной или катетером;

9. • после контакта с биологическими жидкостями (например, аварийные ситуации с кровью).

10. Гигиеническая обработка рук состоит из двух этапов: механической очистки рук и дезинфекции рук кожным антисептиком, После окончания этапа механической очистки (двукратное намыливание и ополаскивание) антисептик  или Стериллиум гель (Sterillium Comfort Gel)) на кисти рук в количестве не менее 3 мл и тщательно втирается в кожу до полного высыхания (вытирать руки не следует).

11. Если руки не были загрязнены (например, отсутствовал контакт с пациентом), то первый этап пропускается и можно сразу наносить антисептик

12. Каждое движение повторяется не менее 5 раз.

13. Обработка рук осуществляется в течение 30 секунд – 1 минуты.

14. Хирургическая обработка рук

15. • перед оперативными вмешательствами;

16. • перед серьёзными инвазивными процедурами (например, пункция крупных сосудов).

17. Хирургическая обработка рук состоит из трёх этапов: механической очистки рук, дезинфекции рук кожным антисептиком  закрытии рук стерильными одноразовыми перчатками.

18. 1. В отличии от вышеописанного способа механической очистки на хирургическом уровне в обработку включаются предплечья, для промокания используются стерильные салфетки, а само мытьё рук длится не менее 2 минут.

19. После высушивания дополнительно обрабатываются ногтевые ложа и околоногтевые валики одноразовыми стерильными деревянными палочками, смоченными в растворе антисептика 

20. Щётки применять не обязательно. Если щётки все же применяются, то следует применять стерильные мягкие щётки однократного применения или способные выдержать автоклавирование, при этом пользоваться щётками следует только для обработки околоногтевых областей и только для первой обработки в течение рабочей смены.

21. 2. После окончания этапа механической очистки на кисти рук наносится антисептик  порциями по 3 мл и, не допуская высыхания, втирается в кожу, строго соблюдая последовательность движений.

22. Процедура нанесения кожного антисептика повторяется не менее двух раз, общий расход антисептика — 10 мл, общее время процедуры — 5 минут.

23. 3. Стерильные перчатки надеваются только на сухие руки.

24. При продолжительности работы в перчатках более 3 часов обработка повторяется со сменой перчаток.

25. 4. После снятия перчаток руки вновь протираются салфеткой, смоченной кожным антисептиком ), затем моются с мылом и увлажняются смягчающим кремом.

Билет номер 7

1. 1 Биологический метод исследования в мед.микробиологии (биопроба)

На животных

2 Трансмиссивные болезни

заразные болезни человека, возбудители которых передаются кровососущими членистоногими (насекомыми и клещами).

В передаче возбудителей Т. б. участвуют специфические и механические переносчики. В специфических переносчиках возбудитель либо размножается и накапливается (например, вирусы в теле клещей, малярийные плазмодии в теле комаров), либо созревает до инвазионной стадии (например, личинки филярий в комарах, мошках, слепнях). Передача возбудителя переносчиком осуществляется различными способами. Наиболее часто возбудитель проникает со слюной, которую переносчик вводит в место укола перед началом кровососания. Так вводятся спорозоиты малярийного паразита. Перенос риккетсий вшами и трипаносом триатомовыми клопами происходит во время дефекации переносчика; возбудитель из фекалий проникает затем в ранку на месте укола. Возбудитель вшиного возвратного тифа скапливается в теле вши и может проникнуть в организм человека лишь при раздавливании вши руками и втирании ее гемолифмы в кожу при расчесах. В переносе возбудителей болезни у многих групп насекомых участвуют только самки. У мухи цеце, вшей и у всех групп клещей кровососами и переносчиками являются особи обоего пола. В ряде случаев возбудитель болезни передается переносчиком своему потомству. Такаятрансовариальная передача выявлена у комаров, инфицированных вирусами, и у клещей, инфицированных вирусами и спирохетами (см. Резервуар возбудителя инфекции).

3 Контроль качества дезинфекции, предстерилизационной очистки, стерилизации изделий медицинского назначения осуществляется специалистами Роспотребнадзора. Самоконтроль качествадезинфекции, предстерилизационной очистки и стерилизации проводит персонал лечебно-профилактических учреждений в рамках производственного контроля.  Основным регламентирующим нормативным документом являются <Методические указания по дезинфекции, предстерилизационной очистке и стерилизации изделий медицинского назначения> №МУ–287–113 от 30 декабря 1998 года. Контроль качества дезинфекции осуществляется методом смывов, которые берут с поверхности изделий медицинского назначения до проведения дезинфекции и после неё. У изделий, имеющих функциональные каналы, рабочий конец изделия опускают в пробирку со стерильной водопроводной водой или нейтрализатором и с помощью стерильного шприца или пипетки промывают канал этим раствором. Контролю подлежит 1% от одновременно обработанных изделий, но не менее 3-5 единиц. О качественно проведенной дезинфекции говорит отсутствие роста санитарно-показательной микрофлоры (БГКП, синегнойной палочки, золотистого стафилококка).  Контроль качества предстерилизационной очистки проводят путем простановки проб на наличие остаточных количеств крови (амидопириновая и азопирамовая проба), остаточных количеств щелочных компонентов моющих средств(фенолфталеиновая проба). Контролю подлежат 1% от партии, но не менее 3 единиц инструментов.  В случае появления положительных проб всю партию подвергают повторной очистке до появления отрицательных результатов проб. Результаты контроля отражают в журнале учета качества предстерилизационной очистки.  Эффективность стерилизации оценивают на основании результатов бактериологических исследований, проводимых с применением биологических индикаторов а также при контроле стерильности мединструментов.  Контроль стерильности изделий медицинского назначения проводят методом посевов в бактериологических лабораториях. Контролю подлежит не менее 1% от одновременно простерилизованных изделий, но не менее двух изделий одного наименования.  Работу стерилизаторов контролируют физическим, химическим, бактериологическим методами.  Билет номер 8

1 Задачи.

    Качественное проведение микробиологических исследований.

     Полное обеспечение лечебно-диагностического процесса информацией с использованием методов микробиологии.

     Выявление специфических реакций организма человека на возбудителей, вызывающих и поддерживающих инфекционный процесс.

     Проведение фармакокинетических исследований для оценки эффективности антибактериальной терапии.

     Участие в разработке рекомендаций по противоэпидемическим мероприятиям и улучшению противоэпидемического режима в лечебно-профилактическом учреждении.

 

Основные направления работы.

 

Лаборатория выполняет более 60 методов  бактериологических, серологических, молекулярно-генетических исследований 

 

 Наряду с идентификацией и определением антибиотикорезистентности создаёт базу данных для постоянного мониторирования микробного пейзажа и уровня антибиотикорезистентности;

возможность проведения кинетических измерений;

возможность ИФА диагностики инфекционных заболеваний с     использованием отечественных и импортных тест-систем.

бактериологам - проведение идентификации микроорганизмов с использованием коммерческих тест-систем, ведение базы данных, прошедших экспертную оценку, и составление отчётов;

эпидемиологам - сведения о смене микрофлоры в ЛПУ и наличие госпитальных штаммов для своевременного проведения санитарно -противоэпидемических мероприятий с целью профилактики внутрибольничной инфекции;

Виды бактериологических исследований проводимых лабораторией.

Диагностика кишечных инфекций:

Диагностика инфекций вызываемых  патогенными энтеробактериями (сальмонеллёз, дизентерия, холера, иерсиниоз, патогенная кишечная палочка, кампилобактериоз);

Диагностика условно-патогенных энтеробактерий. 

 

     Виды исследований:

      Контроль качества стерилизации

      Контроль качества дезинфекции

      Контроль качества обработки рук

      Контроль качества обеззараживания воздуха

      Контроль качества приготовления лекарственных форм

      Контроль качества приготовления молочных смесей

 

 

2 Любые прививки должны проводиться только здоровым детям, поскольку все вводимые в организм препараты существенно изменяют обмен веществ. Выполнять это положение необходимо не только для получения полноценного иммунологического эффекта, но главным образом для безопасности здоровья прививаемого, профилактики поствакцинальных осложнений.  В связи с этим при разработке наставления о применении любого иммунопрепарата (вакцины, сыворотки, глобулина и т. п.) особое внимание уделяется разделу противопоказаний по состоянию здоровья, запрещающему аппликацию препарата.  Противопоказания могут быть постоянными (абсолютными) и временными. Они варьируют в зависимости от характера иммунопрепарата, его реактогенности.

К ним относятся злокачественные новообразования, кахексия, лейкозы, апластическая анемия, конституциональная дисгаммаглобулинемия, тяжелые нефрозо-нефриты, коллагенозы, цирроз печени, сахарный диабет, тиреотоксикоз, тяжелая эпилепсия, психические заболевания, хронические аллергозы, деструктивные формы туберкулеза, декомпенсация сердечнососудистой системы и др.  К временным противопоказаниям относят состояние после перенесенного острого инфекционного заболевания (прививать можно не ранее чем через один месяц после выздоровления, а переболевших вирусным гепатитом или менингитом — через 6—12 месяцев), острых травм, экссудативного диатеза, авитаминозов, острого психоза, тонзиллита, а также после контакта с инфекционным больным.  По жизненным показаниям, без учета установленных противопоказаний проводятся прививки против бешенства (под наблюдением врача, желательно в стационарных условиях).  Особое внимание должно быть уделено введению сывороточных препаратов сенсибилизированным к гетерогенному белку людям, поскольку имеется реальная возможность возникновения острых и небезопасных для жизни анафилактических реакций. При применении вакцин кроме основных возможны специальные (частные) противопоказания. Так, при проведении ревакцинации против туберкулеза, бруцеллеза, туляремии от прививок отстраняются лица, переболевшие этими инфекциями и положительно реагирующие на аллергические пробы. 

3 Стерилизация — полное уничтожение всех видов микроорганизмов и их спор на поверхности и внутри различных предметов, а также в жидкостях и воздухе. Применяется в медицине, микробиологии, гнотобиологии, пищевой промышленности и в других областях. С. является основой асептики, имеет большое значение в борьбе с госпитальной инфекцией.  Методы стерилизации 

• Паровая стерилизация

• Воздушная стерилизация

• Радиационная стерилизация

• Стерилизация ультрафиолетовой радиацие

• Химическая стерилизация

Паровой метод стерилизации  применяют для изделий из коррозийностойких металлов, стекла, текстиля, резины. Стерилизацию производят насыщенным паром под избыточным давлением в паровом стерилизаторе - автоклаве.  Сочетанное воздействие на микроорганизмы влажностью и высокой температурой является основой парового метода стерилизации. 

Воздушная стерилизация  Данный метод стерилизации осуществляется горячим воздухом в воздушных стерилизаторах при температуре 180—200 °С. Все формы микроорганизмов погибают из-за пирогенетического разложения веществ белковой природы. Для воздушной стерилизации в аптеках используют шкаф сушильно-стерилизационный

Радиационная стерилизация (ионизирующая)  Радиационная стерилизация применима для крупного производства. Лучистая энергия при определенных величинах поглощенных доз вызывает в клетках нарушение метаболических процессов, вызывающих их гибель.

Стерилизация ультрафиолетовой радиацией  Ультрафиолетовая радиация используется для обеззараживания воздуха, воды и многих других объектов в различных отраслях народного хозяйства..

Химическая стерилизация  Позволяют стерилизовать оптические изделия, радио- и электронную аппаратуру, а также изделия из термонестойких материалов, металла, стекла. Стерилизация эффективна в том случае, когда химическое средство поглощается стерилизуемым объектом.

Билет номер11

1 Основные правила работы в базовой лаборатории предусматривают: запрещение работ с пипеткой при помощи рта, приема пищи, курения, хранения пищи, применение косметических средств в рабочих помещениях; дезинфекцию рабочих поверхностей не реже 1 раза в день и после каждого попадания на них заразного материала; мытье рук после работы с заразным материалом, животными и перед уходом из лаборатории; проведение работ таким образом, чтобы свести к минимуму возможность образования аэрозоля; обеззараживание всех инфицированных материалов перед выбросом или повторным использованием; помещение заразного материала, предназначенного к уничтожению вне лаборатории, в прочные непромокаемые контейнеры, которые надежно закрывают перед удалением из лаборатории; не использовать лабораторную спецодежду и средства индивидуальной защиты вне лаборатории; дезинфицирование всех инфицированных предметов; применение очков или других средств для защиты глаз и лица от брызг или образующихся при работе частиц; допуск в рабочую зону только лиц, предупрежденных о потенциальной опасности и выполнивших специальные требования (например, иммунизация). Во время работы двери лаборатории должны быть закрыты. Должны про- водиться текущая дезинсекция и дератизация лабораторных помещений. Нельзя вносить в лабораторию животных, не предназначенных для работы.

Шприцы и иглы при работе с инфекционными жидкостями нельзя использовать вместо приборов автоматического пипетирования; вместо остроконечных игл, когда это возможно, надо применять тупоконечные канюли. Работа с кровью, заразным материалом и зараженными животными должна вестись в резиновых перчатках; после работы перчатки снимают с соблюдением правил асептики и перед удалением из лаборатории автоклавируют. У всех сотрудников лаборатории перед допуском к работе берут пробы крови и сохраняют фоновый образец сыворотки для определения антител; необходим периодический отбор проб крови персонала в соответствии с характером работы и степенью риска. В лаборатории должна быть инструкция по технике безопасности, которую персонал должен знать и строго выполнять и периодически сдавать зачет, подтверждающий знание этой инструкции.