
- •Правила взятия крови для клинико-биохимических исследований.
- •Лабораторная работа №1 «Обнаружение моно, ди и полисахаридов».
- •Реакция №1. «Проба Биаля (обнаружение пентоз)»
- •Реакция №2. «Проба Велька (обнаружение лактозы и мальтозы)»
- •Реакция №3. «Проба Селиванова (обнаружение фруктозы)»
- •Реакция №4. «Обнаружение крахмала»
- •Лабораторная работа №2 «Реакции на выявление свойств углеводов».
- •Реакция №1. «Реакция Троммера»
- •Реакция №2. «Реакция Ниландера»
- •Практические занятия по теме: «Химия липидов» Дата_________________
- •Определение концентрации общих липидов в сыворотки крови.
- •Клинико-диагностическое значение определения общих липидов:
- •Лабораторная работа №5 «Обнаружение липидов»
- •Реакция №1 « Акролеиновая проба (обнаружение глицеринсодержащих липидов)»
- •1. Реакция Сальковского.
- •2. Реакция Либермана-Бурхардта.
- •Лабораторная работа №6 «Определение β-липопротеинов сыворотки крови турбидиметрическим методом»
- •Протокол лабораторной работы №4 «Определение общих липидов»
- •Протокол лабораторной работы №6 «Определение β-липопротеинов сыворотки крови турбидиметрическим методом»
- •Практические занятия по теме: «Химия белков» Лабораторная работа №7 «Цветные реакции на белки и аминокислоты»
- •Реакция №1 «Биуретовая реакция на пептидную связь»
- •Реакция №2 «Нингидриновая реакция»
- •Реакция №3 «Ксантопротеиновая реакция»
- •Реакция №4 «Реакция Адамкевича»
- •Реакция №5 «Реакция Фоля»
- •Протокол лабораторной работы №7 «Цветные реакции на белки и аминокислоты».
- •Современные методы анализа аминокислотного состава белков и пептидов.
- •Лабораторная работа №8 «Реакции осаждения и денатурации белков»
- •Необратимое осаждение
- •Реакция №3 «Осаждение концентрированными минеральными кислотами»
- •Протокол лабораторной работы №8 «Реакции осаждения и денатурации белков».
- •Протокол лабораторной работы №9 «Разделение альбуминов и глобулинов яичного белка методом высаливания».
- •Лабораторная работа №10 «Обессоливание растворов белков».
- •Протокол лабораторной работы №10 «Обессоливание растворов белков»
- •Метод распределительной хроматографии.
- •Метод распределительной хроматографии на бумаге.
- •Лабораторная работа №11 «Разделение смеси аминокислот методом радиальной хроматографии на бумаге».
- •Клинико-диагностическое значение определения аминокислот в сыворотке крови и моче
- •Протокол лабораторной работы №11 «Разделение смеси аминокислот методом радиальной хроматографии на бумаге».
- •Тема: «нуклеиновые кислоты»
- •Лабораторная работа №12 «Реакции на составные компоненты нуклеопротеинов»
- •Протокол лабораторной работы №12 «Реакции на составные компоненты нуклеопротеинов».
- •Лабораторная работа №13: «Обнаружение действия ферментов»
- •Лабораторная работа №14: «Изучение свойств ферментов»
- •Опыт 1 «Определение специфичности амилазы».
- •Опыт 2 «Определение специфичности сахаразы».
- •Лабораторная работа №15: «Регуляция активности ферментов»
- •Протокол лабораторной работы №13 «Обнаружение действия ферментов».
- •Протокол лабораторной работы №14 «Изучение свойств ферментов».
- •Протокол лабораторной работы №15 «Регуляция активности ферментов».
Курс |
Семестр |
Ф.И.О. преподавателя |
Оценка за ведение рабочей тетради |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
Практическое занятие №1 по теме: «Организация работы в биохимической лаборатории» Дата_________________
Биохимические анализы в клинической медицине.
Важнейшим разделом лабораторной медицины являются биохимические методы, позволяющие объективно оценить и охарактеризовать состав сложных биологических систем, какими являются биологические жидкости организма человека.
Биохимические анализы широко используются в медицине для дифференциальной диагностики заболеваний, прогноза, мониторинга и скрининга. Биохимические исследования помогают подтвердить или опровергнуть диагноз, выявить болезнь доклинической стадии, проследить течение болезни и возможные осложнения, оценить эффективность проводимой терапии. Основная задача клинической биохимии – исследование функционирования живых систем с точки зрения процессов, протекающих в клетках и в клеточных структурах. Однако полученные результаты необходимо рассматривать на уровне органов, тканей, всего организма и во взаимосвязи целого организма с окружающей средой.
Изучение любой биологической системы начинают с изучения ее компонентов. Для клинической диагностики представляют интерес: химический состав биологических жидкостей и тканей организма, распределение жидкости и химических компонентов между органами и тканями, процессы превращения веществ в целом организме и различных его органах, а также регуляция обмена веществ с помощью ферментов, гормонов и других биологически активных соединений.
В биохимической лаборатории проводится исследование крови (цельная кровь, плазма, сыворотка), мочи, ликвора, пота, пищеварительных соков, таких патологических жидкостей, как плевральная, асцитическая, перикардиальная, внутрисуставная и др. Наиболее частым биологическим материалом для биохимического исследования являются кровь и ее составляющие (плазма/сыворотка).
Кровь – жидкая ткань организма, осуществляющая транспорт кислорода и различных питательных веществ к органам и тканям, а также обратный ток продуктов метаболизма от тканей.
Правила работы с дозаторами и режимы дозирования.
Основные режимы дозирования: прямое, обратное, многократное дозирование. Прямое дозирование – весь забранный объём жидкости сбрасывается за один полный ход поршня, оно подходит для дозирования водных растворов. Обратное дозирование – в наконечник набирается объём жидкости больший по сравнению с необходимым. По окончании дозирования в наконечнике остаётся остаточный объём жидкости, который нивелирует погрешность, связанную с образованием пены. Этот способ дозирования используется для биологических, вязких и пенящихся жидкостей, а также дозирования очень малых объемов. Многократное дозирование предполагает повторяющиеся операции дозирования идентичных объемов жидкости. В этом случае используют электронные дозаторы, что позволяет повторять дозирование после однократного заполнения наконечника.
Правила работы с дозаторами: дозатор подбирается в соответствии с объемом, указанным в методике; в реактив опускается только наконечник, который используется только один раз; при заборе реагента кнопка дозатора нажимается до первого упора, а выпускается реагент из дозатора нажатием кнопки до второго упора (в случае прямого дозирования).
Правила взятия крови для клинико-биохимических исследований.
Кровь надо брать утром, натощак (между 8 и 10 часами), до физической нагрузки и проведения диагностических процедур.
За сутки до взятия крови следует исключить прием алкоголя (прием пищи может быть обычным).
Накануне утра (после 2-х часов ночи) не следует курить, принимать пищу и жидкость (разрешается выпить стакан воды между 22 и 5 часами).
Для проведения тестов липидного профиля (холестерин, ЛПВП, ЛПНП, триглицериды) следует сдавать кровь строго натощак, после 12-часового голодания.
Для определения в крови глюкозы, фолиевой кислоты, сывороточного железа, билирубина, калия, фосфора следует обязательно выдерживать минимум 6-ти часовое голодание.
Для определения АКТГ, кортизола кровь сдают только до 10:00.
Для определения уровня мочевой кислоты в предшествующие исследованию дни необходимо отказаться от пищи богатой пуринами (печень, почки), максимально ограничить в рационе мясо, рыбу, кофе, чай.
При исследовании функции щитовидной железы в период лечения препаратами, содержащими гормоны ЩЖ, исследование проводится через 24 ч. после последнего приема препарата; за 2-3 дня до взятия крови исключить прием препаратов, содержащих йод.
Непосредственно перед взятием крови пациенту необходимо предоставить отдых в положении сидя в течение 15-30 минут.
В процессе взятия крови рука пациента располагается под углом 450.
Лежачим больным взятие крови осуществляется между 7 и 9 часам; при этом рука пациента, лежащего в постели, должна находиться в горизонтальном положении.
При взятии крови путем венопункции время сдавливания сосудов жгутом должно быть минимальным. Больному не следует сжимать и разжимать пальцы, так как это вызывает местный стаз, гипоксию сдвиги в распределении некоторых веществ (холестерол, калия, натрия, кальция и др.).
У катетеризированного больного следует проводить флеботомию на другой руке либо производить взятие крови выше места ввода раствора, предварительно временно прекратить подачу раствора (на 1-2 минуты), взять первые 5 мл крови из катетера и утилизировать, взять необходимый объем крови для исследования и продолжить инфузию.
Для получения сыворотки кровь берут без атникоагулянта. Сыворотка используется для определения общего белка, альбумина, глюкозы*, холестерола, триглицеридов, жирных кислот, общих липидов, липопротеидов, остаточного азота, мочевины, креатинина, билирубина, мочевой кислоты, ферментов, электролитов, ВИЧ, RW.
* для определения глюкозы используются также специальные пробирки с антикоагулянтом и стабилизатором глюкозы.
Для получения плазмы в пробирку предварительно добавляют антикоагулянт (антикоагулянт подбирают в зависимости от требуемых лабораторных тестов смотри таблицу 1). Плазма используется в тех случаях, если надо определять концентрацию аналитов в форменных элементах крови, например, электролиты в эритроцитах; для гематологических анализаторов.
При исследованиях системы гемостаза на фоне приема препаратов, влияющих на свертывание крови, необходимо отметить это в направлении.
Для исследования системы гемостаза (коагулологические тесты) к взятию крови применяют ряд дополнительных требований:
Кровь берут в силиконированные или специальные пластиковые пробирки;
В пробирку предварительно добавляют антикоагулянт – цитрат натрия в соотношении 1:9 (1 часть антикоагулянта и 9 частей крови);
Первые 5-6 капель вытекающей крови нельзя использовать для коагулограммы, эту порцию крови можно применять для других биохимических исследований;
Рекомендуется в процессе взятия крови на непродолжительное время (2-3 секунды) расслабить жгут.
Качество получаемого лабораторией образца существенно зависит от манипуляций процедурной сестры.
Таблица 1
Наиболее часто применяемые антикоагулянты и противопоказания к их использованию для лабораторных исследований.
Антикоагулянт |
Лабораторные тесты, определению которых мешает применяемый антикоагулянт |
Натрия оксалат (щавелево-кислый натрий) |
Электролиты (калий, натрий, кальций), щелочная фосфатаза, альфа-амилаза, рН крови. |
Аммония оксалат (щавелево-кислый аммоний) |
Аммиак, щелочная фосфатаза, альфа-амилаза, рН крови. |
Тринатрийцитрат (лимонноксилый натрий) |
Альфа-амилаза. |
Этилендиаминтетрауксусная кислота или ее динатриевая соль: ЭДТА – натрий (синонимы: селектон Б, хелатон, версен, трилон Б). |
Электролиты (калий, натрий, кальций), остаточный азот, коагулограмма. |
Гепарин (с активностью 1000 Ед в 1 мл) |
Коагулограмма |
Натрия гепаринат или калия гепаринат |
Электролиты (калий, натрий), коагулограмма. |
Лития гепаринат |
Щелочная фосфатаза, коагулограмма. |
Аммония гепаринат |
Аммиак, коагулограмма. |
Цитратно-глюкозная смесь |
Электролиты, глюкоза. |
Практическое занятие №2 по теме: «Химия углеводов» Дата_________________