Контроль якості передстерилізашйної очистки.

Контроль передстерилізаційної очистки проводять санітарно-протиепідемічні і дезінфекційні станції 1 раз у квартал. Самоконтроль у лікувально-профілак­тичних установах проводиться не рідше одного разу на тиждень старшою ме­дичною сестрою відділення, а також самоконтроль в централізованому стери­лізаційному відділенні проводиться працівниками цього відділення. Контролю підлягає 1% від виробів одного призначення, але не менше 3-5 одиниць із партії. Обстежувані вироби повинні бути кімнатної температури (бажано не вище +25'С), гарячі вироби перевірці не підлягають.

Бензидинова проба.

Місце проведення:

стерилізаційне відділення, маніпуляційний кабінет, перев'язувальний кабі­нет, операційний блок.

Оснащення робочого місця:

1. 3% розчин перекису водню.

2. 0,5-1% розчин солянокислого бензидину.

3. 50% розчин оцтової кислоти.

4. Сірчанокислий бензидин.

5. Пробірка — 2 шт.

6. Піпетки — 2 шт.

7. Контрольний інструмент.

Попередня підготовка до виконання навику:

• приготувати реактив №1:

змішати в рівних кількостях 0,5-1% розчин солянокислого бензидину • 3% розчин перекису водню;

• приготувати реактив №2:

У пробірку влити 5мл 50% оцтової кислоти. Додати 0,025г сірчанокис­ лого бензидину. Обережно перемішати, щоб бензидин повністю роз­чинився. Додати 5мл 3% перекису водню;

• приготувати стерильний лоток і стерильну одноразову бавовняну серветку розміром 3-5 см, складену в декілька шарів.

Основні етапи виконання навику:

1. Контрольний інструмент покласти на бавовняну серветку, розміщену у лотку.

2. На контрольний інструмент (скальпель, шпатель, пінцет) за допомогою

піпетки нанести 2-3 краплі реактиву №1 або реактиву №2.

3. Визначити зміну кольору крапель реактиву. Враховувати зміну кольору тільки протягом 1 хв. після контакту реактиву із забрудненою ділянкою

4. Зробити висновок: при зміні кольору реактиву на синьо-зелене забар- влення проба вважається позитивною і вказує на недостатню передсте. рилізаційну обробку інструмента, на залишки білкового характеру (гній, кров тощо).

Ортотолуїдинова проба.

Місце проведення:

стерилізаційне відділення, маніпуляційний кабінет, перев'язувальний кабі­нет, операційний блок.

Оснащення робочого місця:

1. 96^о розчин етилового спирту.

2. Ортотолуїдин.

3. 50% розчин оцтової кислоти.

4. Дистильована вода.

5. 20% розчин перекису водню.

6. 3% розчин перекису водню.

7. Пробірки — Зшт.

8. Піпетки — Зшт.

9. Контрольний інструмент.

Попередня підготовка до виконання навику:

• приготувати реактив №1:

приготувати 4% розчин ортотолуїдина у 96^о етиловому спирті (збе­рігати у холодильнику). Влити у пробірку 5-10мл 4% спиртового розчину ортотолуїдина. Добавити до нього в однаковій кількості 50% розчин оцтової кислоти. Добавити дистильовану воду 5-10 мл,

• приготувати реактив №2:

у пробірку влити 5мл 50% розчину оцтової кислоти. Додати 0,025г ортотолуїдина. Обережно перемішати до повного розчинення орто­ толуїдина. Додати 5мл 3% розчину перекису водню.

• приготувати реактив №3:

приготувати 1% водний розчин ортотолуїдина, влити його в про­бірку. Дрдати в однаковій кількості 3% розчин перекису водню.

• приготувати стерильний лоток і стерильну одноразову бавовняну сервет­ку розміром 3-5 см, складену в декілька шарів.

Основні етапи виконання навику:

1. Контрольний Інструмент покласти на бавовняну серветку, розміщену у лотку.

2. На контрольний інструмент (скальпель, шпатель, пінцет) за допомогою піпетки нанести 2-3 краплі реактиву N«2 або №3. У випадку, якіио н» інструмент наноситься 2-3 краплі реактиву № 1, необхідно на це ж мп:и^е нанести ще 2-3 краплі 20% розчину перекису водню.

3. Визначити зміну кольору крапель реактиву. Враховувати зміну ксг-д>ру тільки протягом 1 хв. після контакту реактиву із забрудненою діл»є

4. Зробити висновок: при зміні кольору реактиву на синьо-зелене згіаре-

5. лення проба вважається позитивною і вказує на недостатню передстерн- лізаційну обробку інструмента, на залишки білкового характеру (гній, кров тощо).