Добавил:
Upload Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:
МУ Санитарная микробиология.doc
Скачиваний:
0
Добавлен:
01.05.2025
Размер:
871.94 Кб
Скачать

Приготовление питательных сред

Для получения и поддержания культур вне организма (in vitro) необходимы особые субстраты - питательные среды, на которых микроорганизмы осуществляют все жизненные процессы, поэтому их еще называют средами для культивирования.

Тщательное приготовление питательных сред - один из основных этапов микробиологического исследования, требующий особого внимания.

Для приготовления сред использовали дистиллированную воду или равноценную по качеству, то есть свободную от веществ, способных ингибировать или воздействовать на рост микроорганизмов в период испытания. Дистиллированная вода должна соответствовать требованиям ГОСТа 6709-72 «Вода дистиллированная».

Для приготовления растворов, реактивов, красок и индикаторов применяли:

  • реактивы по ГОСТу 13867-68;

  • вспомогательные реактивы и растворы по ГОСТу 4517-87;

  • вспомогательные индикаторы по ГОСТу 4919.1-77.

Для приготовления питательных сред используют два способа:

  • из отдельных сухих или жидких компонентов;

  • из сухой готовой среды.

При использовании промышленных сухих питательных сред их готовят в соответствии с указаниями изготовителя на этикетке.

По истечении установленных сроков годности исходные компоненты и готовые среды не использовали.

С помощью рН-метра измеряют и корректируют рН таким образом, чтобы после стерилизации и охлаждения до 25°С значение рН среды отличалось от требуемого не более чем на 0,2 рН. Корректировку проводят с помощью раствора гидроокиси натрия (NaOH) или соляной кислоты (НС1).

Среды разливали в соответствующие емкости вручную или с помощью автоматических аппаратов.

Стерилизацию питательных сред и реактивов проводят различными способами, в том числе влажным паром и фильтрованием.

Каждую упаковку бутылей, пробирок или чашек Петри маркируют с указанием названия среды и даты приготовления.

Готовые питательные среды хранят, если нет специальных указаний, при комнатной температуре не более 3 суток и при температуре около 4°С не более 1 месяца.

Питательные среды расплавляют на кипящей водяной бане. Перед использованием питательную среду содержат в расплавленном состоянии на бане с терморегулятором при температуре (47±2)°С. Сохраняют расплавленную питательную среду не более 8 ч.

Для исследования часто используют свежеприготовленные среды. Среды, предназначенные для прямого поверхностного посева, разливают в чашки Петри слоем не менее 2 мм, и предварительно асептически подсушивают.

Питательные среды и реактивы:

  1. ВСА (Висмут-сульфит агар). 55 г среды растворяют в 1 дм3 дистиллированной воды, доводят до кипения, кипятят 1-2 мин, фильтруют через ватный тампон, снова доводят до кипения в закрытой колбе, охлаждают при комнатной температуре до 50°С и разливают в стерильные чашки. Не автоклавируется.

  2. Водный раствор кристаллического фиолетового (0,1 г/дм3). 0,01 г кристаллического фиолетового переносят в мерную колбу вместимостью 100 см3 и растворяют в дистиллированной воде. Раствор доливают до меткию

  3. Забуференная пептотая вода. 10 г пептона, 5 г хлористого натрия, 9 г Na2HPО4 •12H2O, 1,5 г КН2РО4 растворяют в 1 дм3 дистиллированной воды, доводят до кипения, устанавливают рН (чтобы после стерилизации был 7,0±0,1 при температуре 25°С), разливают по колбам. Режим стерилизации (121±1)°С 20 мин.

  4. Капустный агар. 200 г измельченной свежей капусты добавляют в 1 дм3 водопроводной воды, доводят до кипения, кипятят в течение 10-14 мин. Фильтруют через ватно-марлевый фильтр. Полученный фильтрат разводят водой в 2 раза, добавляют к нему 20 г глюкозы, 10 г пептона, 10 г углекислого кальция, расплавляют в нем при нагревании 15-20 г агара. Устанавливают рН среды 7,0-7,4, разливают в стерильные колбы. Стерилизуют 20 мин при 120°С. Снова доводят до кипения в закрытой колбе, охлаждают при комнатной температуре до 50°С и разливают в стерильные чашки. Не автоклавируется.

  5. Кесслер. Готовится по прописи на этикетке.

  6. Лактоза ВP. Готовится по прописи на этикетке.

  7. ЛПС (Лактозопептонный раствор). 1 г пептона, 0,5 г лактозы, 0,5 г хлористого натрия растворяют в 100 см3 дистиллированной воды, доводят до кипения, устанавливают рН 7,4-7,6, разливают в пробирки, флаконы, колбы или другую посуду. Стерилизуют при (121±1)°С в течение 20 мин.

  8. МСА (молочно-солевой агар). К 1 дм3 расплавленного или охлажденного до 45-60°С рыбо- или мясопептонного агара, содержащего 65 г хлорида натрия (рН 7,2-7,4), добавляют асептически 100 см3 стерильного обезжиренного молока. Среду тщательно перемешивают и разливают в чашки Петри.

  9. МИС (молочно-ингибиторная среда). К 85 см3 расплавленного и охлаждённого до 50°С рыбопептонного агара, добавляют 15 см3 обезжиренного стерильного молока, 1,25 см3 водного раствора кристаллического фиолетового (0,1 г/дм3), 1 см3 раствора теллурита калия массовой концентрацией 20 г/дм3, 200 000 ЕД полимексина М сульфата. Среду не стерилизуют, разливают в стерильные чашки Петри и хранят при температуре (4±2)°С не более 10 суток.

  10. Пептонная вода. Пептонную воду готовят аналогично ПСР без добавления хлористого натрия.

  11. ПСР (пептонно-солевой раствор). В 1 дм3 дистиллированной воды растворяют 8,5 г хлористого натрия и 1 г пептона при медленном нагревании. При необходимости полученный раствор фильтруют, устанавливают рН 7,0±0,1, разливают в колбы, пробирки или другую посуду, укупоривают, стерилизуют при (121±1)°С в течение 30 мин.

  12. Раствор метиленовой синего. 10 г метиленового синего со 100 см3 96%этилового спирта. Смесь ставят в термостат на 24 ч при 37°С, затем смесь фильтруют. Для приготовления рабочего раствора смешивают 5 см3 насыщенного раствора краски с 195 см3 дистиллированной воды.

  13. РПА (рыбо-пептонный агар). Готовят по прописи на этикетке, устанавливают рН 7,0, фильтруют, разливают по флаконам. Режим стерилизации - (121±1)°С 20 мин.

  14. Рыбопептонный бульон с глюкозой. К 1 дм3 рыбопептонного бульона перед стерилизацией добавляют 10 г глюкозы, устанавливают рН 7,0 - 7,2 и стерилизуют при температуре (121±1)°С в течение 20 мин.

  15. РПБ (рыбопептонный бульон). Готовится по прописи на этикетке.

  16. Сабуро. 40 г глюкозы, 10 г пептона, 18 г агара растворяют в 1 дм3 дистиллированной воды, подогревают до расплавления, охлаждают, устанавливают рН (чтобы после стерилизации был 6,5±0,1 при температуре 25°С), разливают в колбы. Режим стерилизации - (121±1)°С 15 мин. Есть готовая среда: на 250 см3 воды 12,5 г бульона Сабуро и 4,5 г агара.

  17. Селенитовая среда. Готовят по прописи на этикетке. Не автоклавируется.

  18. Солевой бульон. В 1 дм3 рыбо- или мясопептонного бульона растворяют 65 г хлорида натрия, фильтруют, устанавливают рН 7,0-7,2. Стерилизуют при температуре 121 °С 20 минут. Количество хлорида натрия можно увеличить до 90 г.

  19. Среда Китт - Тароцци. Для приготовления среды Китт - Тароцци стерильные пробирки заполняют на 1,0 - 1,5 см кусочками рыбы и заливают приготовленным рыбо-пептонным бульоном с глюкозой и агаром. В 1 дм3 рыбо-пептоного бульона вносят 10 г глюкозы и 1,5 г агара, который при нагревании постепенно расплавляют (высота слоя бульона в обычных пробирках 12-13 см, в высоких 15-18 см) и стерилизуют 20 мин при температуре (121±1) °С. Требуемую величину рН проверяют до и после стерилизации, должно быть (7,1 ±0,1). При посевах в свежеприготовленную среду Китт - Тароцци (не более 3 сут с момента приготовления) добавлять агар, вазелиновое масло или наслаивать на ее поверхность голодный агар не обязательно.

  20. Среда Плоскирева.. 55 г среды растворяют в 1 дм3 дистиллированной воды , доводят до кипения, кипятят 1-2 мин, фильтруют через ватный тампон, снова доводят до кипения в закрытой колбе, охлаждают при комнатной температуре до 50°С и разливают в стерильные чашки. Не автоклавируется.

  21. Трехсахарный агар. Готовят по прописи на этикетке, разливают по 6-7 см3 в пробирки. Режим стерилизации - (121± 1 )°С 10 мин.

  22. Физиологический раствор. 8,5 г хлорида натрия растворяют в 1 дм3 дистиллированной воды, фильтруют, устанавливают рН 7,0±0,1. стерилизуют при температуре 121 °С 20 мин.

  23. Цитратная плазма кролика. Для реакции плазмокоагуляции препарат выпускается в сухом виде. Готовят непосредственно перед употреблением согласно прописи в прилагаемом наставлении.

  24. Щелочная полимиксиновая среда. Основа среды - к 400 см3 мясо-пептонного бульона по ГОСТ 10444.1 добавляют 5 г натрия хлорида, 10 г глюкозы, 10 см3 дрожжевого экстракта. Основу среды стерилизуют при 110°С в течение 12 минут, охлаждают и добавляют 250 см3 раствора натрия карбоната массовой концентрацией 21,2 г/дм3 и 250 см3 раствора бикарбоната натрия массовой концентрацией 10 г/дм3. Устанавливают рН таким образом, чтобы при 25°С он составлял (10,1±0,1). После этого к среде добавляют 200 000 ЕД полимиксина М сульфата, 5 см3 спиртового раствора бромтимолового синего. Среду хранят в защищенном от света и высыхания виде при (4±2)°С не более 7 суток. Непосредственно перед использованием среду разливают по 5 см3 в стерильные пробирки.

  25. Щелочной агар. Готовится по прописи на этикетке.

  26. Эндо. 40 г растворяют в 1 дм3 дистиллированной воды, доводят до кипения, фильтруют через ватный тампон, снова доводят до кипения в закрытой колбе, охлаждают при комнатной температуре до 50°С и разливают в стерильные чашки. Не автоклавируется.

Приложение 7

Таблица Мак-Креди

Числовая

характерис-

тика

тика

НВЧ при параллельном

заражении пробирок в количестве

Числовая

характерис-

тика

НВЧ при параллельном

заражении пробирок в количестве

двух

трех

четы­рех

пяти

двух

трех

четы­рех

пяти

000

001

002

003

010

011

012

013

020

021

022

030

031

040

041

100

101

102

103

110

111

112

113

120

121

122

123

130

131

132

140

141

200

201

202

203

210

211

212

213

220

221

222

223

230

231

232

0,0

0,5

0,5

0,09

0,9

0,6

1,2

1,3

2,0

2,0

3,0

2,5

5,0

6,0

13,0

20,0

25,0

70,0

110,0

0,0

0,3

0,3

0,6

0,6

0,4

0,7

1,1

0,7

1,1

1,1

1,5

1,6

0,9

1,4

2,0

1,5

2,0

3,0

2,0

3,0

3,5

4,0

3,0

3,5

4,0

0,0

0,2

0,5

0,7

0,2

0,5

0,7

0,9

0,5

0,7

0,9

0,7

0,9

0,9

1,2

0,3

0,5

0,8

1,0

0,5

0,8

1,1

1,3

0,8

1,1

1,3

1,6

1,1

1,4

1,6

1,4

1,7

0,6

0,9

1,2

1,6

0,9

1,3

1,6

2,0

1,3

1,6

2,0

1,7

2,0

0,0

0,2

0,4

0,2

0,4

0,6

0,4

0,6

0,6

0,2

0,4

0,6

0,8

0,4

0,6

0,8

0,6

0,8

1,0

0,8

1,0

1,1

0,5

0,7

0,9

1,2

0,7

0,9

1,2

0,9

1,2

1,4

1,2

1,4

240

241

300

301

302

303

310

311

312

313

320

321

322

323

330

331

332

333

340

341

350

400

401

402

403

410

411

412

413

414

420

421

422

423

424

430

431

432

433

434

440

441

442

443

444

450

2,5

4,0

6,5

4,5

7,5

11,5

16,0

9,5

15,0

20,0

30,0

25,0

65,0

110,0

140,0

2,0

3,0

1,1

1,6

2,0

2,5

1,6

2,0

3,0

3,5

2,0

3,0

3,5

3,0

3,5

4,0

5,0

3,5

4,5

2,5

3,5

5,0

7,0

3,5

5,5

8,0

11,0

14,0

6,0

9,5

13,0

17,0

20,0

11,5

16,5

20,0

30,0

35,0

25,0

40,0

70,0

140,0

160,0

1,4

0,8

1,1

1,4

1,1

1,4

1,7

2,0

1,4

1,7

2,0

1,7

2,0

2,0

2,5

2,5

1,3

1,7

2,0

2,5

1,7

2,0

2,5

2,0

2,5

3,0

2,5

3,0

4,0

3,5

4,0

4,0

Числовая

характерис-

тика

НВЧ при параллельном

заражении пробирок в количестве

Числовая

характерис-

тика

НВЧ при параллельном

заражении пробирок в количестве

двух

трех

четырех

пяти

двух

трех

четырех

пяти

451

500

501

502

503

504

510

511

512

513

520

521

522

523

524

525

530

531

532

533

534

535

540

541

542

543

544

545

550

551

552

553

554

555

5

2,5

3,0

4,0

6,0

7,5

3,5

4,5

6,0

8,5

5,0

7,0

9,5

12,0

15,0

17,5

8,0

11,0

14,0

17,5

20,0

25,0

13,0

17,0

25,0

30,0

35,0

45,0

25,0

35,0

60,0

90,0

100,0

180,0

Приложение 8