
- •Перелік абревіатур
- •Лабораторна робота № 1 Якісні реакції на білки
- •Лабораторна робота № 2 Фізико-хімічні властивості білків
- •Лабораторна робота № 3 Висолювання білків
- •Лабораторна робота № 4 Визначення ізоелектричної точки білків
- •Лабораторна робота № 5
- •Лабораторна робота № 6 Фракціонування білків сульфатом амонію
- •Лабораторна робота № 7 Спектрофотометричний і колориметричний методи визначення концентрації речовин
- •Лабораторна робота № 8 Колориметричне визначення концентрації білка методом Бредфорда
- •Лабораторна робота № 9 Спектрофотометричний метод визначення концентрації білка, який ґрунтується на здатності поглинати ультрафіолетове світло
- •Лабораторна робота № 10 Визначення вмісту сечовини в сечі
- •Лабораторна робота № 11 Електрофорез білків у поліакриламідному гелі
- •Іі. Вуглеводи Лабораторна робота № 12 Якісні реакції на вуглеводи
- •Лабораторна робота № 13 Кількісне визначення глюкози і глікогену
- •Лабораторна робота № 14 Кількісне визначення фруктози на основі реакції Селіванова
- •Лабораторна робота № 15 Кількісне визначення піровиноградної кислоти колориметричним методом
- •Лабораторна робота № 16 Визначення концентрації лактату ензиматичним методом
- •Лабораторна робота № 17 Вивчення властивостей жирів
- •Лабораторна робота № 18 Визначення йодного числа ліпідів
- •Лабораторна робота № 19 Кількісне визначення холестеролу (за Блюром)
- •Іv. Нуклеїнові кислоти Лабораторна робота № 20 Визначення сумарного вмісту нуклеїнових кислот
- •Лабораторна робота № 21 Визначення вмісту нуклеїнових кислот з дифеніламіном
- •Лабораторна робота № 22 Визначення активності дезоксирибонуклеаз
- •V. Вітаміни і гормони Лабораторна робота № 23 Кількісне визначення вітаміну с (за Тильманом)
- •Лабораторна робота № 24 Кількісне визначення вітаміну р (катехінів) за Левенталем
- •Лабораторна робота № 25 Реакція вітаміну рр з гідросульфітом натрію
- •Лабораторна робота № 26 Окислення вітаміну в1 до тіохрому
- •Лабораторна робота № 27 Відновлення рибофлавіну
- •Лабораторна робота № 28 Кількісне визначення вітаміну а
- •Лабораторна робота № 29 Кількісне визначення вітаміну d
- •Лабораторна робота № 30 Кількісне визначення вітаміну е
- •Лабораторна робота № 31 Якісні реакції та кількісне визначення адреналіну
- •VI. Ферменти Лабораторна робота № 32 Визначення активності ферментів спектрофотометричним методом
- •Лабораторна робота № 33 Вплив різних чинників на активність α-амілази слини
- •Лабораторна робота № 34 Визначення кінетичних характеристик ферментів на прикладі лактатдегідрогенази
- •Лабораторна робота № 35 Активація та інгібування ферментів (на прикладі фосфофруктокінази)
- •Лабораторна робота № 36 Інгібування лактатдегідрогенази надлишком субстрату
- •Лабораторна робота № 37 Визначення активності амф-дезамінази
- •Лабораторна робота № 38 Очистка амф-дезамінази
- •Лабораторна робота № 39 Очистка лактатдегідрогенази шляхом висолювання сульфатом амонію
- •Vіі. Вільнорадикальні процеси Лабораторна робота № 40 Визначення активності супероксиддисмутази (сод)
- •Лабораторна робота № 41 Визначення активності глутатіонпероксидази
- •Лабораторна робота № 42 Визначення активності глутатіонредуктази
- •Лабораторна робота № 43 Визначення активності глутатіон-s-трансферази
- •Лабораторна робота № 44 Визначення вмісту карбонільних груп у білках
- •Лабораторна робота № 45 Визначення вмісту пероксидів ліпідів
- •Лабораторна робота № 46 Визначення вмісту тбк-активних продуктів
- •Лабораторна робота № 47 Визначення вмісту тіолових груп
- •Лабораторна робота № 48 Визначення вмісту глутатіону
- •Питання контролю рівня знань на підсумкових заняттях
- •Програмові вимоги до куpсу “Біохімія”
- •Рекомендована література Теоретичний курс
- •Практичний курс
Лабораторна робота № 7 Спектрофотометричний і колориметричний методи визначення концентрації речовин
Потрібно знати:
1) межі застосування колориметричного та спектрофотометричного аналізів;
2) закон Бугера-Ламберта-Бера та причини відхилення від закону на практиці;
3) особливості будови фотоелектроколориметра та спектрофотометра;
4) що таке калібрувальний графік та основні вимоги до його побудови.
Потрібно вміти:
1) за законом Бугера-Ламберта-Бера визначити концентрацію речовини у розчині, якщо відома оптична густина цього розчину, коефіцієнт молярної екстинкції речовини та товщина шару кювети, який поглинає світло;
2) приготувати розчин речовини з відомим коефіцієнтом молярного поглинання так, щоб оптична густина цього розчину знаходилась у допустимих межах (для точного аналізу).
Фотометричні методи ґрунтуються на законі поглинання монохроматичного світла Бугера-Ламберта-Бера, який визначає співвідношення між початковою інтенсивністю світла та інтенсивністю світла, яке пройшло через розчин (І):
Величина “lg(I0/I)” характеризує ступінь ослаблення інтенсивності світла після проходження променя через розчин. Її називають оптичною густиною (D) розчину або його екстинкцією. Згідно з рівнянням, існує лінійна залежність D від концентрації речовини, яка поглинає світло (с), товщини шару, який поглинає (1), і коефіцієнта молярного поглинання (). Цей коефіцієнт дорівнює оптичній густині 1 М розчину, якщо товщина світлопоглинаючого шару дорівнює 1 см. Чим більша величина , тим вища чутливість спектрофотометричного методу визначення речовини.
Концентрацію досліджуваної речовини визначають за величиною оптичної густини при відомих і l:
Як контроль використовують розчинник або розчин, який містить всі компоненти, окрім досліджуваної речовини. При визначенні слід пам’ятати, що оптична густина визначається найточніше в інтервалі 0,1–0,5; якщо D досліджуваного розчину більше від 0,5, то розчин бажано розвести розчинником.
Спектрофотометрія ґрунтується на вимірюванні поглинання монохроматичного світла, тобто світла з певною довжиною хвилі. Сучасні спектрофотометри дають високомонохроматизований потік світла. Розчини для досліджень мають бути прозорими, без завислих частинок чи повітряних бульбашок, які розсіюють світло. Розчини повинні бути кімнатної температури, щоб не конденсувалась водяна пара на стінках кювет. Кювети для спектрофотометрії повинні бути чистими, сухими і без подряпин. Не можна торкатися пальцями оптичних стінок кювет! Для роботи в області ультрафіолетового світла використовують кварцові кювети, а у видимій області – пластикові (крім випадків, коли у суміші є їдкі речовини чи органічні розчинники) або скляні.
Поряд зі спектрофотометрію широко використовують колориметрію. Багато сполук, що характеризуються незначним поглинанням світла, після взаємодії з іншими речовинами дають забарвлені продукти, концентрація яких пропорційна концентрації вихідних речовин. Такі кольорові реакції використовують для виявлення речовини в розчині та визначення її концентрації, яка пропорційна оптичній густині. Широке застосування знайшли колориметричні методи кількісного визначення неорганічного фосфату і фосфорвмісних сполук, глікогену, глюкози, фруктози, білка тощо. Для роботи зазвичай використовують спрощені спектрофотометри або фотоелектроколориметри (ФЕК).
Сучасний ФЕК – це оптичний прилад, в якому монохроматизація потоку світла досягається за допомогою світлофільтрів. Колориметричний аналіз проводять, порівнюючи поглинання досліджуваного розчину з поглинанням стандартних проб. Стандартні проби готують із розчину відомої концентрації. При цьому враховують межі чутливості конкретного методу. Контрольна проба містить всі компоненти, крім речовини, яку досліджують. Необхідно пам’ятати, що інтенсивність забарвлення визначається концентрацією речовини, але залежить також від температури і часу розвитку забарвлення. Тому стандартні і дослідні проби слід готувати в суворо визначених однакових умовах.
Результати колориметрування стандартних проб оформлюють у вигляді графіка, тобто залежності інтенсивності забарвлення від кількості речовини, яку аналізують. По осі абсцис відкладають вміст речовини, а по осі ординат – значення оптичної густини відповідної проби.
Калібрувальний графік повинен мати вигляд прямої, яка виходить з початку координат. Для отримання калібрувального графіка достатньо 5–6-ти стандартних проб. Визначивши оптичну густину дослідних проб (проти контрольної проби), проводять розрахунки за допомогою калібрувального графіка. Якщо оптична густина дослідної проби виходить за межі графіка, то роблять нову пробу так, щоб її оптична густина знаходилась в області точок калібрувального графіка. За графіком визначають вміст речовини, яка аналізується, і, знаючи об’єм розчину, розраховують її концентрацію.
Хід роботи.
1) Визначення концентрації пероксиду водню Н2О2
Спектофотометрування проводять у кварцовій кюветі. Пероксид водню поглинає в ультрафіолетовій області з максимумом поглинання при 240 нм. Коефіцієнт молярного поглинання 240 = 39,4 М–1см–1.
Досліджуваний розчин має приблизну концентрацію 1 М. Якщо 1 М розчин розвести в 100 разів (10 мМ), то оптична густина повинна становити 0,394. Об’єм розчину, який треба взяти для визначення оптичної густини, дорівнює 2 мл. Тобто, щоб отримати 10 мМ розчин Н2О2 в кюветі, треба взяти 0,02 мл 1 М Н2О2 і 1,98 мл води. Контрольна проба повинна містити тільки воду. Вища точність визначення досягається з використанням мірних колб. У даному прикладі можна використати мірну колбу на 25 мл. Слід взяти 0,25 мл вихідного (~ 1 М) розчину Н2О2, перенести в колбу і довести об’єм водою до мітки 25 мл.
Визначити оптичну густину розчину і розрахувати істинну концентрацію Н2О2 у вихідному розчині.
2) Визначення концентрації NADH
Максимум поглинання NADH (а також іншого відновленого коферменту – NADPH) знаходиться при довжині хвилі 340 нм: 340 = 6220 М–1см–1.
Досліджуваний розчин має приблизну концентрацію 16 мМ. Розрахувати об’єм цього розчину, який треба взяти, щоб отримати оптичну густину 0,311 (об’єм кювети 2 мл). Після вимірювання оптичної густини розрахувати істинну концентрацію досліджуваного розчину.