- •Перелік абревіатур
- •Лабораторна робота № 1 Якісні реакції на білки
- •Лабораторна робота № 2 Фізико-хімічні властивості білків
- •Лабораторна робота № 3 Висолювання білків
- •Лабораторна робота № 4 Визначення ізоелектричної точки білків
- •Лабораторна робота № 5
- •Лабораторна робота № 6 Фракціонування білків сульфатом амонію
- •Лабораторна робота № 7 Спектрофотометричний і колориметричний методи визначення концентрації речовин
- •Лабораторна робота № 8 Колориметричне визначення концентрації білка методом Бредфорда
- •Лабораторна робота № 9 Спектрофотометричний метод визначення концентрації білка, який ґрунтується на здатності поглинати ультрафіолетове світло
- •Лабораторна робота № 10 Визначення вмісту сечовини в сечі
- •Лабораторна робота № 11 Електрофорез білків у поліакриламідному гелі
- •Іі. Вуглеводи Лабораторна робота № 12 Якісні реакції на вуглеводи
- •Лабораторна робота № 13 Кількісне визначення глюкози і глікогену
- •Лабораторна робота № 14 Кількісне визначення фруктози на основі реакції Селіванова
- •Лабораторна робота № 15 Кількісне визначення піровиноградної кислоти колориметричним методом
- •Лабораторна робота № 16 Визначення концентрації лактату ензиматичним методом
- •Лабораторна робота № 17 Вивчення властивостей жирів
- •Лабораторна робота № 18 Визначення йодного числа ліпідів
- •Лабораторна робота № 19 Кількісне визначення холестеролу (за Блюром)
- •Іv. Нуклеїнові кислоти Лабораторна робота № 20 Визначення сумарного вмісту нуклеїнових кислот
- •Лабораторна робота № 21 Визначення вмісту нуклеїнових кислот з дифеніламіном
- •Лабораторна робота № 22 Визначення активності дезоксирибонуклеаз
- •V. Вітаміни і гормони Лабораторна робота № 23 Кількісне визначення вітаміну с (за Тильманом)
- •Лабораторна робота № 24 Кількісне визначення вітаміну р (катехінів) за Левенталем
- •Лабораторна робота № 25 Реакція вітаміну рр з гідросульфітом натрію
- •Лабораторна робота № 26 Окислення вітаміну в1 до тіохрому
- •Лабораторна робота № 27 Відновлення рибофлавіну
- •Лабораторна робота № 28 Кількісне визначення вітаміну а
- •Лабораторна робота № 29 Кількісне визначення вітаміну d
- •Лабораторна робота № 30 Кількісне визначення вітаміну е
- •Лабораторна робота № 31 Якісні реакції та кількісне визначення адреналіну
- •VI. Ферменти Лабораторна робота № 32 Визначення активності ферментів спектрофотометричним методом
- •Лабораторна робота № 33 Вплив різних чинників на активність α-амілази слини
- •Лабораторна робота № 34 Визначення кінетичних характеристик ферментів на прикладі лактатдегідрогенази
- •Лабораторна робота № 35 Активація та інгібування ферментів (на прикладі фосфофруктокінази)
- •Лабораторна робота № 36 Інгібування лактатдегідрогенази надлишком субстрату
- •Лабораторна робота № 37 Визначення активності амф-дезамінази
- •Лабораторна робота № 38 Очистка амф-дезамінази
- •Лабораторна робота № 39 Очистка лактатдегідрогенази шляхом висолювання сульфатом амонію
- •Vіі. Вільнорадикальні процеси Лабораторна робота № 40 Визначення активності супероксиддисмутази (сод)
- •Лабораторна робота № 41 Визначення активності глутатіонпероксидази
- •Лабораторна робота № 42 Визначення активності глутатіонредуктази
- •Лабораторна робота № 43 Визначення активності глутатіон-s-трансферази
- •Лабораторна робота № 44 Визначення вмісту карбонільних груп у білках
- •Лабораторна робота № 45 Визначення вмісту пероксидів ліпідів
- •Лабораторна робота № 46 Визначення вмісту тбк-активних продуктів
- •Лабораторна робота № 47 Визначення вмісту тіолових груп
- •Лабораторна робота № 48 Визначення вмісту глутатіону
- •Питання контролю рівня знань на підсумкових заняттях
- •Програмові вимоги до куpсу “Біохімія”
- •Рекомендована література Теоретичний курс
- •Практичний курс
Лабораторна робота № 14 Кількісне визначення фруктози на основі реакції Селіванова
Потрібно знати:
1) структурні формули найрозповсюдженіших у живому світі дисахаридів – сахарози, лактози, трегалози, мальтози, целобіози;
2) роль фруктози та її ефірів в організмі.
Потрібно вміти:
1) написати рівняння реакцій, характерних для дисахаридів, здатних і нездатних відновлювати інші сполуки;
2) написати рівняння біохімічних реакцій, в яких беруть участь фосфорні ефіри фруктози;
3) написати рівняння реакції перетворення фруктози в оксиметилфурфурол в кислому середовищі.
Принцип якісної реакції Селіванова ґрунтується на здатності кетоз у вільному стані реагувати з концентрованою соляною кислотою. У випадку фруктози ця реакція проходить з утворенням оксиметилфурфуролу:
Оксиметилфурфурол в присутності резорцину при нагріванні дає продукти конденсації, які мають червоне забарвлення:
Р
еактиви.
Реактив Селіванова: 0,1% розчин резорцину в 96% етиловому спирті; стандартні розчини (0,5 мг/мл) глюкози, фруктози, сахарози в 1 М соляній кислоті; 30% соляна кислота; досліджувані розчини фруктози, глюкози чи сахарози.
Хід роботи.
Побудова калібрувального графіка
Для побудови калібрувального графіка в 5 пробірок налити відповідно по 0,2; 0,4; 0,6; 0,8 і 1,0 мл стандартного розчину фруктози і об’єм кожної пробірки довести до 1 мл. В контрольну пробірку налити 1 мл дистильованої води. Потім у всі пробірки додати по 1 мл 0,1% розчину резорцину і по 3 мл 30% соляної кислоти. Перемішати і помістити у водяну баню з температурою 80°С. Через 8 хв проби охолодити і визначити інтенсивність червоного забарвлення на фотоелектроколориметрі при довжині хвилі 490 нм. Дані подати графічно, відкладаючи по осі абсцис кількість фруктози в пробі, а на осі ординат – відповідну величину оптичної густини.
2) Визначення концентрації фруктози у досліджуваних розчинах
Досліджувані проби, які містять 0,1–0,5 мг фруктози, обробити так само, як і стандартні. За калібрувальним графіком розрахувати у них точний вміст фруктози.
Лабораторна робота № 15 Кількісне визначення піровиноградної кислоти колориметричним методом
Потрібно знати:
1) хімічні формули піровиноградної кислоти та інших органічних кислот, присутніх в живих організмах, а саме – щавлевої, молочної, щавлевооцтової, янтарної, яблучної, фумарової тощо;
2) за допомогою яких хімічних перетворень (карбоксилювання/декарбоксилювання, гідроксилювання, окислення/відновлення, гідратація/дегідратація) можна отримати з однієї органічної кислоти іншу;
3) роль піровиноградної кислоти в організмі, шляхи її утворення та утилізації.
Потрібно вміти:
1) написати реакцію взаємодії піровиноградної кислоти з 2,4–динітрофенілгідразином.
Піровиноградна кислота – одна з ключових оксокислот у живих організмах. Вона є попередником цілої родини сполук, зокрема, аланіну та оксалоацетату. За рахунок цього вона є спільною ланкою в обміні вуглеводів, білків та ліпідів. Визначення вмісту піровиноградної та інших оксокислот у тканинах може мати діагностичне значення.
Принцип методу ґрунтується на реакції оксогрупи з 2,4-динітрофенілгідразином (ДНФГ). В результаті цієї реакції утворюються динітрофенілгідразонові похідні, які поглинають світло з певною довжиною хвилі. Довжина хвилі, при якій спостерігається максимальне поглинання, залежить від сполуки, яка реагує з ДНФГ. Метод дозволяє визначати широкий спектр сполук, які містять карбонільну групу (див. роботу № 44). Така неспецифічність є, водночас, недоліком методу.
Реактиви.
Охолоджена 10% трихлороцтова кислота, 0,1% розчин 2,4-динітрофенілгідразину (до 100 мг ДНФГ додають 100 мл розведеної (1:4) соляної кислоти, після чого фільтрують), толуол, 30% розчин КОН в 70% етиловому спирті.
Хід роботи.
Для аналізу взяти 1 мл досліджуваної рідини або тканину в кількості 0,8–1,0 г. Білки осадити дев’ятикратним об’ємом охолодженої 10% трихлороцтової кислоти. Суміш ретельно розтерти у порцеляновій ступці і центрифугувати при охолодженні протягом 10 хв при 5000 g. Надосадову рідину (супернатант) злити, і 0,5 мл перенести у пробірку. Контролем слугує 0,5 мл дистильованої води.
Для побудови калібрувального графіка приготувати п’ять проб з кінцевою концентрацією пірувату від 0,05 до 0,3 мкМ. У всі пробірки додати по 0,2 мл розчину 2,4-динітрофенілгідразину, перемішати і через 5 хвилин додати по 1,3 мл толуолу. Вміст пробірок струшувати протягом трьох хвилин. Суміш залишити відстоюватись для розшарування толуолу та води. З верхнього толуолового шару відібрати піпеткою 0,5 мл рідини і перенести у чисту пробірку. Додати 1,5 мл спиртового розчину КОН. Через 20 хв оптичну густину проб визначити на ФЕКу при довжині хвилі 465 нм проти контрольної проби.
