Добавил:
Upload Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:
ФИЗИОЛОГИЯ РАСТЕНИЙ.doc
Скачиваний:
6
Добавлен:
01.03.2025
Размер:
4.47 Mб
Скачать

6.3.3. Сера (Харитонашвили е.В.).

Растения, как первичные продуценты серусодержащих органических соединений, наряду с микроорганизмами, играют ключевую роль в круговороте серы в биосфере. Поглощение серы растениями происходит в основном из почвы в виде SO42- иона. После поглощения сульфат-ион может накапливаться в тканях корней и надземных органов в невосстановленном виде. Восстановление сульфата, необходимое для включение серы в состав органических соединений, происходит в пластидах, преимущественно в хлоропластах.

6.3.3.1. Серусодержащие органические соединения.

С ера в первую очередь необходима для синтеза и регуляции количества и качества производимого растениями белка, так как входит в состав двух серусодержащих аминокислот: цистеина и метионина, различающихся по положению серы в молекуле.

Цистеин – главный продукт ассимиляторного восстановления серы и ключевой компонент биосинтеза белка, глутатиона и фитохелатинов. SH-группы цистеиновых остатков участвуют в образовании ковалентных, водородных, меркаптидных связей, поддерживающих трехмерную структуру белковой молекулы. Свободные тиоловые группы определяют каталитическую активность многих ферментов, например, взаимодействие белка с коферментом. Четыре SH-группы, хелатируя атом железа, формируют железосерные центры в белках - компонентах электронтраспортных цепей в энергопреобразующих мембранах.

Метиониновые остатки придают молекуле белка гидрофобные свойства, что важно при стабилизации активной конформации белковой молекулы. S-аденозилметионин участвует в реакциях трансметилирования. Метионил-тРНК выступает инициатором роста полипептидных цепей. Донором S для биосинтеза метионина является цистеин.

Из наиболее функционально важных серусодержащих органическихе молекул следует назвать ацетилкоэнзим А, липоевую кислоту, биотин, тиаминпирофосфат (витамин В1). SH-группа коэнзиам А образует высокоэнергетическую тиоэфирную связь с ацильными группами кислот. В частности, ацетил-СоА служит переносчиком ацетильной группы в реакциях биосинтеза жирных кислот, углеводов и аминокислот. Ряд вторичных соединений образуется из цистеина при замещении и окислении сульфгидрильной группы, например, аллиины и -аминоакриловая кислота. Серу содержат многие растительные масла, в том числе, горчичное и чесночное. У растений серусодержащие вторичные метаболиты широко представлены в семействах Liliaceae, Brassiaceae, Mimosaceae.

6.3.3.2. Поглощение и транспорт сульфата.

Поглощение сульфата корнями в широком диапазоне концентраций описывается двухфазной кривой. Механизм транспорта – симпорт с протоном со стехиометрией 3Н+/SO42-. При диссипации протонного градиента поглощение SO42- снижается.

Молекулярно-генетический анализ выявил семейство генов транспортеров сульфата на плазмалемме. Белки семейства сульфатных транспортеров различаются по сродству к SO42- и различным образом экспрессируются. По крайней мере, можно говорить о двух типах транспортных систем: высокого сродства Sultr1 или ST1 (Km порядка 10 мкмолей) и низкого сродства Sultr2 или ST2 (Km порядка 100 мкмолей) с молекулярной массой 69 –75 кДа. ST1 экспрессируются исключительно в корнях, ST2 – как в корнях, так и в листьях. Предполагаемая структура белков сульфатных транспортеров – 12 мембраносвязанных доменов, типичных для катионных симпортеров, С- и N- концы обращены в цитозоль. В отличие от фосфатного транспортера, центральная аминокислотная петля, обращенная в цитозоль, отсутствует. Время полуобновления белков сульфатных транспортеров невелико: примерно 2,5 часа и это делает возможным контроль за поглощением на уровне транскрипции. Главным фактором индукции ST1 выступает сульфатное голодание, а синтез de novo ST2 в этой ситуации выражен незначительно или отсутствует.

Хотя транспорт сульфата в вакуоль значителен, сульфатные транспортеры на тонопласте пока не идентифицированы. Известно, что поток SO42- в вакуоль зависит от электрохимического потенциала на тонопласте, механизм транспорта в этом случае – унипорт, а движущей силой выступает электрический градиент на этой мембране. Таким образом, транспорт SO42- через плазмалемму и тонопласт принципиально различаются.