Добавил:
Upload Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:
ФИЗИОЛОГИЯ РАСТЕНИЙ.doc
Скачиваний:
6
Добавлен:
01.03.2025
Размер:
4.47 Mб
Скачать

6.3.1.4. Метаболизм фосфата.

Главный биохимический путь включения фосфата в органические соединения идет через АТФ. С АТФ неорганический фосфат вовлекается в реакции углеводного обмена (см. главы III и IV) и биосинтез фосфолипидов. В состав нуклеиновых кислот АТФ входит как ключевое соединение. Поскольку химическая форма Р не меняется, можно говорить о «химической» компартментации фосфата или распределении Фн между различными типами органических соединений. В Таблице 6.4 приведены времена обновления различных химических Р пулов.

Таблица 6.4. Время обновления и скорость синтеза различных типов фосфорсодержащих органических соединений (по Bieleski R.L., Ferguson I.B., 1983).

Тип соединения

Время обновления

(мин)

Скорость синтеза

(нмоли Р  г-1 мин-1)

АТФ + УТФ (P)

0,50

340

АТФ + АДФ (P)

3,5

85

Гл6Ф

7

95

3ФГА

6,5

50

Фосфорил холин

6

12

Фосфолипиды

130

20

Аденозин Р

160

1

Уридин Р

160

2

ФНК

2800

2

ДНК

2800

0,2

Фн

5

650

Уже через 30 сек поглощенный Фн включается в состав АТФ в -положении.

  

Аденозин – Р ~ Р ~Р

Далее имеет место быстрая обменная реакция между АТФ и УТФ, катализируемая нуклеозиддифосфат киназой, поэтому следует говорить о быстро обновляемом пуле (АТФ+УДФ). Высокая скорость обновления -Р в этом пуле свидетельствует, что примерно 1 из 4 молекул нуклеотидфосфатов окисляется до мононуклеотида. В стационарном состоянии до 45% поглощаемого фосфата проходит через нуклеотидный пул. Второе место по интенсивности вовлечения фосфата в метаболизм занимают реакции фосфорилирования глюкозы и триоз в гликолизе. Менее быстрые реакции включения Р через фосфатидилхолин в состав фосфолипидов биомембран. Обновление «структурного» фосфата в составе нуклеотидов, где АТФ - ключевое соединение, идет чрезвычайно медленно и содержание Р в ДНК достаточно стабильный показатель для вида. Доля же Р в других формах фосфорсодержащих соединений от общего содержания Р меняется в зависимости от типа ткани, возраста и в соответствии с фосфорным питанием.

После заполнения пулов быстро обновляемого органического фосфата, в клетке начинается накопление неорганического Фн. За исключением строгого фосфорного голодания, цитозольная концентрация Фн поддерживается на постоянном уровне (5-10 мМ) независимо от экзогенной концентрации Фн. Постоянство концентрации Фн в цитозоле необходимо для обновления и поддержания химических пулов Р и протекания множества ферментативных реакций. Вакуолярная концентрация, напротив, широко варьирует: быстро возрастает в ответ на улучшение фосфорного питания и снижается вплоть до нуля при фосфатном голодании. Максимальная концентрация в запасном пуле обычно не превышает 25 мМ.

Наиболее значительный прогресс в картировании внутриклеточных пулов Р был достигнут с применением ЯМР-спектроскопии. На рисунке 6.36 представлен достаточно типичный спектр распределения Р между различными клеточными пулами, полученный для суспензионной культуры клеток моркови in vivo.

Фосфорилирование и дефосфорилирование белковых молекул – важнейший способ регуляции их активности. Включение фосфата в молекулу белка приводит к перераспределению в ней электрических зарядов, модификации структуры и функций. Фосфорилирование белков регулирует активность многих ферментов, синтез РНК и белка, как следствие - деление и дифференцировку клеток. Это способ быстрой регуляции метаболической активности на уровне клетки и тканей.

Рассмотрим конкретный пример пост-трансляционного контроля за распределением потоков С между сахарами и аминокислотами в ответ на действие факторов среды. Активность сахарофосфосинтазы (СФС) может модулироваться разными типами фосфорилирования. Если фотосинтез ингибирован, СФС инактивируется фосфорилированием по серину в положении 158. В ответ на водный стресс СФС активируется фосфорилированием по серину 424 через Са2+-зависимую киназу. Пул сахарозы и растворимых сахаров при этом увеличивается.

Известен механизм более тонкой регуляции активности ферментов путем фосфорилирование, в котором принимает участие низкомолекулярный белок 14-3-3. Белки, фосфорилированные по серину, становятся мишенью для присоединения 14-3-3 белка, который связывается с определенным фосфопептидом Арг-Сер-X-фосфоСер-X-Про. После связывания белок-мишень меняет свои свойства: активность, стабильность, субклеточную локализацию и характер взаимодействия с другими белками. Такой тип регуляции: фосфорилирование по серину с последующим связыванием с 14-3-3 белком установлен для многих ферментов: НР, ГС, СФС, ФЕПК, 3ФГА-дегидрогеназы, Н+-АТФазы плазмалеммы и др.

Активности ферментов синтеза сахаров, аминокислот и изопреноидов, а также ферментов расщепления сахарозы и Н+-АТФаза Р-типа в цитозоле регулируются обратимым фосфорилированием белковых молекул по серину/треонину.

Транслокация Р в целом растении. У хорошо обеспеченных Фн растений большая часть поглощенного корнями фосфата транспортируется по ксилеме в более молодые листья. Радиальный транспорт по корню идет в виде фосфорных эфиров сахаров. В ксилему фосфат загружается после дефосфорилирования Гл6Ф и по ксилеме транспортируется в виде Фн (Рис. 6.23). Использование меченого фосфата показало, что он достигает ксилемы примерно за 8 минут. В зависимости от доступности в среде, концентрация Фн в ксилеме варьирует от 1 до 7 мМ.

Наблюдается также быстрая ретранслокация Фн по флоэме. В экспериментах с разделенной корневой системой на растениях фасоли было показано, что через 6 ч после внесения меченого фосфата под одну часть корня он был обнаружен во второй части. Приблизительно половина Фн, ретранслоцированного из надземных органов в корни по флоэме затем переносится в ксилему и возвращается обратно в листья. Если в ксилеме Р всегда транспортируется исключительно как свободный фосфат., то во флоэме обнаруживаются значительные количества органического фосфора.