Оснащение занятия.

Оборудование: скарификаторы, штатив Панченкова, капилляр Панченкова, пробирки, вата, спирт.

Реактивы: 5 % раствор лимоннокислого натрия или

10 % трилон Б (ЭДТА)

Алгоритм определения соэ.

1. Ознакомьтесь с капилляром Панченкова и штативом.

2. Промойте капилляр Панченкова 5 % цитратом натрия, а затем наберите ¼ капилляра цитрата натрия и поместите в центрифужную пробирку.

3. Обработайте палец пациента.

4. Проколите палец пациента скарификатором до упора.

5. Наберите кровь в капилляр Панченкова до метки "К" без пузырьков воздуха. Суженный конец капилляра оботрите ваткой от остатков крови.

6. Опустите капилляр с кровью в пробирку с цитратом и тщательно перемешайте.

7. Наберите в капилляр смесь крови с цитратом до метки "К", зажмите указательным пальцем верхнее отверстие капилляра.

8. Поставьте вертикально капилляр в штатив Панченкова, суженным отверстием надавив на одну из резинок штатива и опустив указательный палец с верхнего отверстия. Укажите время постановки реакции. Ровно через 1 час снимайте показания.

Ошибки при выполнении анализа соэ.

Ошибки при постановке СОЭ могут быть связаны с различными факторами:

• При комнатной температуре СОЭ определяется не позже, чем через 2 часа после взятия крови. В случае хранения крови при +4⁰С, СОЭ определяется не позднее, чем через 6 часов, но перед выполнением кровь прогревают до комнатной температуры.

• Исследование СОЭ должно проводиться при 18-25⁰С. При более высоких температурах значение СОЭ увеличивается, при низких – замедляется.

• Перед проведением анализа кровь хорошо перемешивают, что обеспечит лучшую воспроизводимость результатов.

• При отсутствии резкой границы между эритроцитным столбиком и плазмой (регенеративных анемиях), над компактной массой эритроцитов образуется светлая "вуаль" в несколько миллиметров из разведенных эритроцитов (главным образом из ретикулоцитов). В таком случае определяется граница компактного слоя, а эритроцитарная вуаль причисляется к столбику плазмы.

• Стеклянные капиллярные пипетки могут быть заменены на пластмассовые (полипропил, поликарбонат), однако они требуют проверки и оценки степени корреляции полученных результатов со стеклянными капиллярами.

• Нарушение соотношения кровь/цитрат (неточное дозирование цитрата или крови), стояние пробы под наклоном, на свету, в тепле, более 4х часов с цитратом, во влажном капилляре.

II. Блок контролирующих материалов.

А: Инструкция к самостоятельной работе на занятии.

1. При подготовке рабочего места к работе предусмотреть все необходимое и не загромождать стол лишними реактивами и оборудованием.

2. Предварительно работать с имитацией крови.

3. Обратить внимание на возможные ошибки при определении СОЭ.

4. Произвести определение СОЭ.

5. Записать в тетрадь алгоритм методики и полученный результат:

6. Оценить полученные результаты.

7. При уборке рабочего места, обработке капилляров и перчаток соблюдать правила техники безопасности при работе с заведомо инфицированными материалами и электроприборами.

Б: Тема считается усвоенной, если студент может:

а) Ответить на вопросы (вопросы для самоконтроля):

1. Почему необходимо кровь смешивать с цитратом натрия?

2. Как называется та прозрачная жидкость, которая образуется при стоянии капилляра Панченкова в штативе в течение часа?

3. Чему равно одно деление в капилляре Панченкова?

4. Какие ошибки могут быть допущены при взятии крови на СОЭ?

5. Почему очень важно соблюдать время при постановке СОЭ?

6. Как надо обработать капилляр и резиночки штатива Панченкова после окончания исследования?

7. Как дезинфицируют капилляры после забора крови?

8. Как правильно обработать и простерилизовать скарификаторы после работы?

б) Выполнить практическую работу.