Добавил:
Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:
Биотехнология Лабы.pdf
Скачиваний:
22
Добавлен:
12.11.2019
Размер:
504.72 Кб
Скачать

ПС =

D ×4

× P,

 

n ×ТЕ ×10

де n - кількість розчину, взятого на аналіз, мл; Р – розведення досліджуваного розчину.

Реактиви:

 

 

 

 

 

Розчин

субстрату – 2 %-й

розчин казеїну. Для його

приготування 2,0 г

повітряно-сухого казеїну (вологість 8–10

%)

заливають

100 мл 1/15 М

фосфатного

буферу рН8,0 і

нагрівають

до

повного

розчинення осаду на

водяній бані, перемішуючи скляною паличкою. Після охолодження розчину перевіряють рН потенціометрично і у разі необхідності доводять до значення 8,0 додаванням 1 н NaOH або 1 н HCl. Розчин можна зберігати у холодильнику не більше трьох діб .

2 %-й розчин гемоглобіну (субстрат). Для його приготування наважку 2 г

повітряно-сухого

гемоглобіну розтирають у ступці з

невеликою кількістю

дистильованої

води, переносять

кількісно у мірну

колбу 100намл,

підкислюють 0,3 н HCl до рН 3,0 і

об’єм доводять до мітки дистильованою

водою. Розчин необхідно готовити щодня, бо він нестійкий.

 

0,3 М розчин трихлороцтової кислоти. Для його приготування беруть наважку 50 г ТХО беруть на технічних терезах, переносять у колбу на1 л і доводять до мітки дистильованою водою, після чого фільтрують.

Визначення активності лужної протеази ( метод ФОЛП)

Метод розроблено на основі методу Ансона спеціально для визначення активності лужних протеаз.

За одиницю протеолітичної активності взято таку кількість ферменту, яка каталізує гідроліз 1 г білка (казеїну) в строго визначених умовах– рН 10,5 і при температурі 40 оС, тривалість гідролізу 1 год.

Метод базується на визначенні тирозину, що утворюється в результаті гідролізу білка, з реактивом Фоліна, як і метод Ансона.

Техніка визначення

У дві пробірки заввишки20 см і діаметром2 см наливають по5 мл субстрату і витримують при температурі40 ºС в ультратермостаті протягом 10 хв для досягнення розчином зазначеної температури.

Потім у першу пробірку додають 2,5 мл дистильованої води (контроль), а

в другу – 2,5

мл досліджуваного

ферментного

розчину(дослід). Пробірки

ставлять у термостат з температурою 40 ºС на 1 год.

 

Після

закінчення гідролізу

в кожну

пробірку додають5 млпо

0,3 М розчину ТХО, щоб припинити ферментативну реакцію та осадити непрогідролізований казеїн. Суміш швидко перемішують і для більш повного осадження витримують 15 хв при температурі40 ºС в термостаті. Потім розчини фільтрують через паперові фільтри і у фільтраті визначають кількість прогідролізованого білка за тирозином.

56

Для цього по2 мл фільтрату наливають у широкі пробірки, повільно приливають у кожну по5 мл 0,5 М розчину вуглекислого натрію та по1 мл робочого розчину реактиву Фоліна, безперервно перемішуючи, витримують в ультратермостаті при температурі 40 ºС для розвитку забарвлення 30 хв, а потім фотометрують на ФЕК з довжиною хвилі 656–677 нм при використанні кювет 5

мм. Оптичну густину розчинів вимірюють по відношенню до

контрольної

проби.

 

 

 

 

 

Розрахунок

проводять

за

формулою, виведеною

для

визначення

протеолітичної активності бактеріальних ферментних препаратів:

 

ПС =

4,7D + 0,1

1000 , од/г або од/мл,

 

 

 

 

n

 

де 4,7 і 0,1 – постійні коефіцієнти, отримані експериментально; D – оптична

густина досліджуваного розчину; n – кількість ферментного препарату в

2

мл реакційної суміші, мг; 1000 – перерахунок на 1 г препарату.

Приклад розрахунку. На аналіз взято0,1 г ферментного препарату, розчинено в 100 мл дистильованої води. Із цього розчину зроблено розведення

– 5 мл до 100 мл, на протеоліз відібрано 2,5 мл. Після додавання ТХО об’єм реакційної суміші дорівнює12,5 мл. На визначення тирозину взято2 мл і отримано оптичну густину 0,193.

Тоді кількість ферментного препарату в 2 мл фільтрату буде дорівнювати:

n =

 

100 × 5 × 2,5

× 2

= 0,02 м,

100 ×100 ×12,5

 

 

 

ПС

=

4,7 × 0,193

+ 0,1

×1000 = 50500

 

 

 

0,02

 

 

 

Реактиви:

1. Розчин казеїну 1%-й. Для його приготування 2 г (порошку) і вносять у конічну колбу на 300 мл і приливають 140 мл карбонатно-гідрокарбонатного буфера рН 10,7. Колбу ставлять на магнітну мішалку і розчин перемішують протягом 30 хв. Потім, продовжуючи перемішування, колбу з субстратом вміщують у водяну баню з температурою70 ºС до повного розчинення, охолоджують до 40 ºС і при цій температурі доводять рН до10,5, додаючи 1 М розчин їдкого натрію.

Розчин казеїну кількісно переносять у мірну колбу на200 мл і додають карбонатно-гідрокарбонатний буфер до об’єму180 мл. Потім розчин казеїну охолоджують проточною водою до температури20 ºС і об’єм субстрату доводять до 200 мл тим самим буфером. Розчин зберігають у холодильнику не більше 3 діб.

2.0,2 М карбонатно-гідрокарбонатний буфер. Готують його змішуванням

умірній колбі на 200 мл розчин А – 45 мл, розчину Б – 5 мл, об’єм доводять до мітки дистильованою водою.

57

Соседние файлы в предмете Биотехнология