Добавил:
Upload Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:
лекция 4-2.doc
Скачиваний:
9
Добавлен:
21.09.2019
Размер:
193.02 Кб
Скачать

Буферы для электрофореза

Почему мы используем именно такие вещества? Так исторически сложилось.

Основа почти у всех в качестве катионного компонента – Трисгидроксиметиламинометан.

Преимущества:

  1. рКа 8.3, вблизи физиологического

  2. дешев

  3. достаточно велик

  4. эффективный заряд при рН=рКа 0.5.

Недостаток:

Сильная зависимость рКа от температуры. Очень плохой буфер для ПЦР. Надо начинать с рН около 7, чтобы к 60º прийти к нужному рН.

Что касается анионных компонетов, тут был выбор, поскольку была эволюция.

Первые разработчики буферов, биологи, работали с белками. Их задачей было сохранить белки в целости, не инактивировать их. Следуя принципу алхимиков, подобное старались смешивать с подобным. Фосфат присутствует во всех биологических системах и ничем инородным не является. Соответственно, почему бы его не использовать. Ацетат – аналогично.

Потом пришли физхимики и сказали: это плохие компоненты. Например, фосфат всегда диссоциирован по первой ступени, буферность обеспечивает вторая, ее рКа как раз в районе физиологического рН. Но его эффективный заряд 1.5, а в квадрате все 2.25. И размер маловат. Примерно как у уксусной кислоты, а хотелось бы больше.

Ацетат имеет небольшой рН. И может использоваться только в качестве специфического буфера в кислой среде, а в диапазон 7-8 не работает никак (рКа=4.75)

Самым лучшим показалась борная кислота. Диссоциирует только по первой ступени, заряд 0.5, размер большой.

Сейчас Трис-Борат употребляется редко и в основном по-инерции (??????????)

Недостатки – более слабая, чем угольная, и еще и образует полибораты. Оставили на воздухе, СО2 вытеснил борную, образовались полибораты – осадок и гетерогенная система, и гетерофазная. На посуде остается налет полиборатов, которые удаляются щелочью. Кроме того, взаимодействует с компонентами. Например, с нуклеиновыми кислотами, и даже с глицерином образует аддукты. Образует высоко полимерные комплексы, имитируя разделяемые биополимеры. Заряд у него отрицательный, каждая единица – минус. Дшинный аддукт с глицерином похож на двуцепочечную НК.

Фирма Омершан предложила буфер на основе сульфаминокислоты – таурина. Осадком не выпадает, с БП не взаимодействует. Размер еще больше, чем у бората. Правда, эффективный заряд великоват. Но аминогруппа компенсирует. И засчет того, что цвиттерион, рКа смещается ближе к 8 – достаточно эффективно поддерживает буферную емкость.

Можно использовать серин. Дешевый реагент, одобрено И.В. Морозовым. На опыте даже лучше таурина. Плюс еще любые ферменты в присутствии серина работают. Если выделяем из буфера, можем использовать как субстрат для любых реакций – нуклеинового обмена, обмена белков. То же самое, подобное в подобном.

С боратом такой номер не пройдет, он инактивирует большинство ферментов.

Катионный компонент:

(HOCH2 )3CNH2 pKa 8.3 (20oC)

pKa / 10oC -0.310

Анионные компоненты:

H3PO4 pKa1 = 2.1, pKa2 = 7.2, pKa3 = 12.5 (18oC)

CH3COOH pKa = 4.75 (20oC)

H3BO3 pKa ~ 8.5

H2NCH2CH2SO3H (Taurine) pKa1 = 1.5, pKa2 = 9.06 (25oC)

HOCH2CH(NH2)COOH (Serine) pKa1 = 9.21, pKa2 = 2.20 (25oC)

Проводимость растворов буферов

Буфер

Катион

Анион

pH

Проводимость mmhos/cm

TPE

50 mM TrisOH

H3PO4

7.0-7.5

1800

TAE, 2.5x

100 mM TrisOH

50 mM CH3COOH

7.5-8.0

3300

TAE

40 mM TrisOH

20 mM CH3COOH

7.5-8.0

1500

TBE

50 mM TrisOH

50 mM H3BO3

8.0-8.5

610

Tris:Taurine

89 mM TrisOH

28.5 mM Taurine

9.0

900

Tris:Serine

50 mM TrisOH

48 mM Serine

8.5

680

Но иногда даже ТРЕ нужен. Был эксперимент, смотрели скорость проникновения (быстрая кинетика) алкилирующих частиц в клетку и какие полимеры алкилирует. Реагент меченый, высоко активный, кинетика 20 с. А дальше непонятно, как такой эксперимент поставить. Инкубировали 20с, а дальше надо быстро зафиксировать, чтобы никаких реакций больше не происходило. Добавить ТХУ не пойдет, т.к. алкилирующий агент будет алкилировать даже в кислых рН. Значит, надо сразу БП разделить, и в том числе сразу отделить алкилирующий агент. Через 20 с нанести на э/ф и быстро включить ток. Алкилирующий агент сразу уйдет, у него подвижность очень высокая. Проблема – наносим на гель сразу очень много посторонних примесей, в т.ч. ионогенных. Это и среда, и взвесь клеток, и БП внутри цитоплазмы. Картина совершенно нерепрезентабельна. Очень большая перегрузка, большое количество ионогенных примесей. И никакие концентрации ТВЕ эту картину не улучшали. Взяли ТРЕ, только напряжение уменьшили после отделения алкилирующего агента. И все получилось, опубликовали. Это из-за большой проводимости.