
Буферы для электрофореза
Почему мы используем именно такие вещества? Так исторически сложилось.
Основа почти у всех в качестве катионного компонента – Трисгидроксиметиламинометан.
Преимущества:
рКа 8.3, вблизи физиологического
дешев
достаточно велик
эффективный заряд при рН=рКа 0.5.
Недостаток:
Сильная зависимость рКа от температуры. Очень плохой буфер для ПЦР. Надо начинать с рН около 7, чтобы к 60º прийти к нужному рН.
Что касается анионных компонетов, тут был выбор, поскольку была эволюция.
Первые разработчики буферов, биологи, работали с белками. Их задачей было сохранить белки в целости, не инактивировать их. Следуя принципу алхимиков, подобное старались смешивать с подобным. Фосфат присутствует во всех биологических системах и ничем инородным не является. Соответственно, почему бы его не использовать. Ацетат – аналогично.
Потом пришли физхимики и сказали: это плохие компоненты. Например, фосфат всегда диссоциирован по первой ступени, буферность обеспечивает вторая, ее рКа как раз в районе физиологического рН. Но его эффективный заряд 1.5, а в квадрате все 2.25. И размер маловат. Примерно как у уксусной кислоты, а хотелось бы больше.
Ацетат имеет небольшой рН. И может использоваться только в качестве специфического буфера в кислой среде, а в диапазон 7-8 не работает никак (рКа=4.75)
Самым лучшим показалась борная кислота. Диссоциирует только по первой ступени, заряд 0.5, размер большой.
Сейчас Трис-Борат употребляется редко и в основном по-инерции (??????????)
Недостатки – более слабая, чем угольная, и еще и образует полибораты. Оставили на воздухе, СО2 вытеснил борную, образовались полибораты – осадок и гетерогенная система, и гетерофазная. На посуде остается налет полиборатов, которые удаляются щелочью. Кроме того, взаимодействует с компонентами. Например, с нуклеиновыми кислотами, и даже с глицерином образует аддукты. Образует высоко полимерные комплексы, имитируя разделяемые биополимеры. Заряд у него отрицательный, каждая единица – минус. Дшинный аддукт с глицерином похож на двуцепочечную НК.
Фирма Омершан предложила буфер на основе сульфаминокислоты – таурина. Осадком не выпадает, с БП не взаимодействует. Размер еще больше, чем у бората. Правда, эффективный заряд великоват. Но аминогруппа компенсирует. И засчет того, что цвиттерион, рКа смещается ближе к 8 – достаточно эффективно поддерживает буферную емкость.
Можно использовать серин. Дешевый реагент, одобрено И.В. Морозовым. На опыте даже лучше таурина. Плюс еще любые ферменты в присутствии серина работают. Если выделяем из буфера, можем использовать как субстрат для любых реакций – нуклеинового обмена, обмена белков. То же самое, подобное в подобном.
С боратом такой номер не пройдет, он инактивирует большинство ферментов.
Катионный компонент:
(HOCH2 )3CNH2 pKa 8.3 (20oC)
∆ pKa / 10oC -0.310
Анионные компоненты:
H3PO4 pKa1 = 2.1, pKa2 = 7.2, pKa3 = 12.5 (18oC)
CH3COOH pKa = 4.75 (20oC)
H3BO3 pKa ~ 8.5
H2NCH2CH2SO3H (Taurine) pKa1 = 1.5, pKa2 = 9.06 (25oC)
HOCH2CH(NH2)COOH (Serine) pKa1 = 9.21, pKa2 = 2.20 (25oC)
Проводимость растворов буферов
Буфер |
Катион |
Анион |
pH |
Проводимость mmhos/cm |
TPE |
50 mM TrisOH |
H3PO4 |
7.0-7.5 |
1800 |
TAE, 2.5x |
100 mM TrisOH |
50 mM CH3COOH |
7.5-8.0 |
3300 |
TAE |
40 mM TrisOH |
20 mM CH3COOH |
7.5-8.0 |
1500 |
TBE |
50 mM TrisOH |
50 mM H3BO3 |
8.0-8.5 |
610 |
Tris:Taurine |
89 mM TrisOH |
28.5 mM Taurine |
9.0 |
900 |
Tris:Serine |
50 mM TrisOH |
48 mM Serine |
8.5 |
680 |
Но иногда даже ТРЕ нужен. Был эксперимент, смотрели скорость проникновения (быстрая кинетика) алкилирующих частиц в клетку и какие полимеры алкилирует. Реагент меченый, высоко активный, кинетика 20 с. А дальше непонятно, как такой эксперимент поставить. Инкубировали 20с, а дальше надо быстро зафиксировать, чтобы никаких реакций больше не происходило. Добавить ТХУ не пойдет, т.к. алкилирующий агент будет алкилировать даже в кислых рН. Значит, надо сразу БП разделить, и в том числе сразу отделить алкилирующий агент. Через 20 с нанести на э/ф и быстро включить ток. Алкилирующий агент сразу уйдет, у него подвижность очень высокая. Проблема – наносим на гель сразу очень много посторонних примесей, в т.ч. ионогенных. Это и среда, и взвесь клеток, и БП внутри цитоплазмы. Картина совершенно нерепрезентабельна. Очень большая перегрузка, большое количество ионогенных примесей. И никакие концентрации ТВЕ эту картину не улучшали. Взяли ТРЕ, только напряжение уменьшили после отделения алкилирующего агента. И все получилось, опубликовали. Это из-за большой проводимости.