Южная амбарная огневка Plodia interpunctella Hb.

К

Рис. 28. Южная огневка

осмополит. В России в теплых помещениях встречается практически повсеместно, за исключением приполярных районов Сибири и Дальнего Востока. В умеренных широтах этот теплолюбивый вид развивается почти исключительно в помещениях, но на юге европейской части России и на Кавказе может летом давать и 1-2 поколения в природе.

Южная амбарная огневка очень обычна в складах, подсобных помещениях продуктовых магазинов, на мукомольных предприятиях, хлебо- и пивзаводах, кондитерских фабриках, нередко встречается и в квартирах. Является серьезнейшим вредителем продовольственных запасов. Питание происходит главным образом на сухофруктах, сушеных овощах и лекарственных растениях, зерне хлебных злаков и продуктах его переработки, а также какао-бобах, различных бобовых, ядрах грецкого ореха, семенах подсолнечника, кондитерских изделиях (особенно шоколадных конфетах), пряностях и многих других продуктах растительного происхождения. Иногда гусеницы повреждают гербарии, коллекции насекомых, старые соты и пергу пчел. Встречаются и в подстилке гнезд различных птиц. Известны случаи каннибализма, когда активно питающиеся гусеницы поедали пронимф. В южных районах очень сильно вредит сушеным фруктам на консервных заводах и хлебным запасам, представляя даже большую опасность, чем мучная огневка.

Бабочки южной амбарной огневки имеют размах крыльев 13-20 мм и длину тела 7-9 мм. Одна треть переднего крыла беловато-желтая, две трети – красно-коричневые (рис. 46).

Имаго не нуждаются в дополнительном питании. Бабочки летают вечером и ночью, а днем сидят в затененных местах хранилищ. Самцы более подвижны, чем самки. Большая часть вышедших из куколок особей спаривается в первые 1-2 дня. Продолжительность жизни имаго зависит как от участия их в спаривании, так и от температуры, и при 19.4°С составляет 12-19 дней, а при 30 °С – только 5-6 дней. Самцы, как правило, живут несколько дольше. В помещениях, зараженных огневкой, бабочек можно найти сидящими на потолке, стенах, оборудовании, на поверхности продуктов.

Отродившиеся гусеницы быстро ползают, отыскивая трещины, щели либо просто углубления в пищевом субстрате. На 2-й или 3-й день они начинают строить покрытые экскрементами трубчатые ходы, из которых и происходит питание. Иногда при развитии на сухих фруктах трубочки не плетутся, и гусеницы прогрызают ходы внутри плодов. В зерновой насыпи в летнее время гусеницы поселяются в верхнем слое, переплетая его шелковиной на глубину до 10 см, однако по мере похолодания они переходят в более глубокие слои и в январе-феврале встречаются уже на расстоянии 1.5-2 м от поверхности. Продолжительность развития гусениц колеблется в зависимости от сезона в пределах 28-56 дней, а при неблагоприятных условиях может достигать 267 дней. Оказывает на нее влияние и качество корма.

Весь цикл развития огневки заканчивается летом за 60-85 дней, что позволяет ей, в зависимости от температуры и наличия подходящего корма для гусениц, давать ежегодно 1-6 поколений. В лабораторных условиях при постоянной температуре 21.1°С срок развития одной генерации сокращался до 42-56 дней, а при 27-31.1°С – до 36 дней. Пониженные температуры растягивают жизненный цикл до 9-11 месяцев. Оптимальная температура для развития 28-32°С. Нижний тем­пературный порог развития 14,3°С. При температуре 20, 25 и 30°С одно поколение в среднем развивается за 62, 33 и 23 суток соответ­ственно.

Феромоны [⁵³]:

Аттрактант

 Диапауза – период покоя в развитии живых организмов. Обычно диапауза наблюдается в зимний период для переживания неблагоприятных условий.

 Имаго (лат. имаго – образ (подобие) – окончательная стадия индивидуального развития членистоногих животных со сложным жизненным циклом.

 Пигидий - задний сегмент брюшка насекомого.

 Синантропные организмы (от греческого syn – вместе и antropos – человек) - животные, существование которых тесно связано с человеком и с населенными пунктами.

1 Tran Bruno M.D., Credland P.F. // Biol. J. Linn. Soc. 1995. V. 56. № 3. P. 483-503.

2 Morris B.D., Foster S.P., Harris M.O. Identification of 1-octacosanal and 6-methoxy-2-benzoxazolinone from wheat as ovipositional stimulants for Hessian fly, Mayetiola destructor // J. Chem. Ecol. 2000. V. 26. P. 859-873.

3 Foster, S.P., Harris, M.O., and Millar, J.G. Identification of the sex pheromone of the Hessian fly, Mayetiola destructor (Say) // Naturwissenschaften. 1991. V. 78. P. 130-131.

4 Tóth M., Furlan L., Yatsynin V.G., Ujvary I., Szarukan I., Imrei Z., Tolasch T., Francke W., Jossi W.. Identification of pheromones and optimization of bait composition for click beetle pests (Coleoptera: Elateridae) in Central and Western Europe // Pest Manage. Sci. 2003. 59. P.417-425.

5 Staddon B.W., Abdollahi A., Parry J., Rossiter, M., Knight D.W. Major component in male sex pheromone of cereal pest Eurygaster integriceps Puton (Heteroptera: Scutelleridae) identified as a homosesquiterpenoid // J. Chem. Ecol. 1994. V. 20. P. 2721-2731.

6 Ubik K., Vrkoc J., Zdarek J., Kontev Ch. Vanillin: possible sex pheromone of an insect // Naturwissenschaften. 1975. V. 62. P. 348.

7 Vrkoc J., Ubik K., Zdarek J., Kontev Ch. Ethyl acrylate and vanillin as components of the male sex pheromone complex in Eurygaster integriceps (Heteroptera, Scutelleridae) // Acta Entomol. Bohemoslov. 1977. V. 74. P. 205-206.

8 Cross J.H., Byler R.C., Cassidy R.F., Jr. Silverstein R.M., Greenblatt R.E., Burkholder W.E., Levinson A.R., Levinson H.Z. // J. Chem. Ecol. 1976. V. 2. P. 57.

9 Yarger R.G., Silverstein R.M., Burkholder W.E. // J. Chem. Ecol. 1975. V. 1. P. 323.

10 Nara J.M., Lindsay R.C., Burkholder W.E. // J. Agric. Food Chem. 1981. V. 29. P. 68.

11 Mori K. // Tetrahedron. 1974. V. 30. P. 3817.

12 Mori K., Kuwahara S., Levinson H.Z., Levinson A.R. // Tetrahedron. 1982. V. 38. P. 2291.

13 Kodama H., Ono M., Kohno M., Ohnishi A. // J. Chem. Ecol. 1987. V. 13. P. 1871.

14 Kodama H., Mochizuki K., Kohno M., Ohnishi A., Kuwahara Y. // J. Chem. Ecol. 1987. V. 13. P. 1859.

15 Kuwahara Y., Fukami H., Howard R., Ishii S., Matsumura F., Burkholder W.E. // Tetrahedron. 1978. V. 34. P.1769.

16 Hodges R.J., Hall D.R., Mbugua J.N., Likhayo P.W. // Bull. Entomol. Res. 1998. V. 88. P. 131.

17 Cork A., Hall D.R., Hodges R.J., Pickett J.A. // J. Chem. Ecol. 1991. V. 17. P. 789.

18 Bashir T., Birkinshaw L.A., Farman D., Hall D.R., Hodges R.J. // J. Stored Prod. Res. 2001. V. 39. P. 159.

19 Williams H.J., Silverstein R.M., Burkholder W.E., Khorramshahi A. // J. Chem. Ecol. 1981. V. 7. P. 759.

20 Cogburn R.R., Burkholder W.E., Willams H.J. // Environ. Entomol. 1984. V. 13. P. 162.

21 Pierce A.M., Pierce H.D., Jr. Borden J.H., Oehlschlager A.C. // J. Chem. Ecol. 1991.V. 17. P. 581.

22 Oehlschlager A.C., King G.G.S., Pierce H.D., Jr. Pierce, A.M., Slessor K.N., Millar J.G., Borden J.H. // J. Chem. Ecol. 1987. V. 13. P. 1543.

23 Pierce A.M., Pierce H.D., Jr., Borden J.H., Oehlschlager A.C. // J. Chem. Ecol. 1991. V. 17 P. 581.

24 Oehlschlager A.C., King G.G.S., Pierce H.D., Jr. Pierce A.M., Slessor K.N., Millar J.G., Borden J.H. // J. Chem. Ecol. 1987. V. 13. P. 1543.

25 Pierce A.M., Pierce H.D., Jr. Oehlschlager A.C., Czyzewska E., Borden J.H. // J. Chem. Ecol. 1987. V. 13. P. 1525.

26 Pierce A.M., Pierce H.D., Jr. Oehlschlager A.C., Borden J.H. // J. Agric. Food Chem. 1985. V. 33. P. 848.

27 Pierce A.M., Pierce H.D., Jr., Borden J.H., Oehlschlager A.C. // J. Chem. Ecol. 1991. V. 17 P. 581

28 White P.R., Chambers J., Walter C.M., Wilkins J.P.G., Millar J.G. // J. Chem. Ecol. 1989. V. 15. P. 999.

29 Millar J.G., Oehlschlager A.C. // J. Org. Chem. 1984. V. 49. № 13. P. 2332.

30 Arnaud L., Lognay G., Verscheure M., Leenaers L., Gaspar C., Haubruge E. // J. Chem. Ecol. 2002. V. 28. P. 523.

31 Phillips T.W., JiangX.-L., Burkholder W.E., Phillips J.K., Tran H.Q. // J. Chem. Ecol. 1993. V. 19. P. 723.

32 Закладной Г.А., 1983. Защита зерна и продуктов его переработки от вредителей. М.: Колос. 216 с.

33 Arnaud L., Lognay G., Verscheure M., Leenaers L., Gaspar C., Haubruge E. // J. Chem. Ecol. 2002. V. 28. P. 523.

34 Landor P.D., Landor S.R., Mukasa J. // J. Chem. Soc. Chem. Comm. 1971. P. 1638.

35 Shu S., Koepnick W. L., Mbata G. N., Cork A., Ramaswamy S. B. // J. Stored Prod. Res. 1996. V. 32 P. 21.

36 Phillips J.K., Chong J.M., Andersen J.F., Burkholder W.E. // Entomol. Exp. APl. 1989. V. 51. P. 149.

37Phillips J.K., Miller S.P.F., Andersen J.F., Fales H.M., Burkholder W.E. // Tetrahedron Letters. 1987. № 28. Р. 6145.

38 Wu W.-Q., Cottrell C.B., Hansson B.S., Löfstedt C. Comparative study of pheromone production and response in Swedish and Zimbabwean populations of turnip moth, Agrotis segetum // J. Chem. Ecol. 1999. V. 25. P. 177-196.

39 Wu W.-Q., Hansson B.S., Löfstedt C. Electrophysiological and behavioural evidence for a fourth sex pheromone component in the turnip moth, Agrotis segetum // Physiol. Entomol. 1995. V. 20. P. 81-92.

40Vick K.W., Su H.C.P., Sower L.L., Mahany P.G., Drummond P.C. // Experientia. 1974. № 20. Р. 17.

41 Mori K., Harada H., Zagatti P., Cork A., Hall D.R. // Liebig's Ann. Chem. 1991. P. 259.

42 Hall D.R., Cork A., Lester R., Nesbitt B.F., Zagatti P. // J. Chem. Ecol. 1987. V. 13 P. 1575.

43 Read J.S. Haines C.P. // J. Chem. Ecol. 1979. V. 5. P. 251.

44 Cox P. D. // J. of Stored Products Research. 1974. V. 10. № 1. P. 43.

45Kehat M., Eitam A., Blumberg D., Dunkelblum E., Anshelevich L., Gordon D. // Phytoparasitica. 1992. V. 20. P. 99.

46 Brady, U.E., Daley, R.C. // Ann. Entomol. Soc. Am. 1972. V. 65. P. 1356.

47 Tóth M., Repasi V., Szöcs G. // Acta Phytopathol. Entomol. Hung. 2002. V. 37. Р. 375.

48 Zhu J.-W., Ryne C., Unelius C.R., Valeur P.G., Löfstedt C. // Entomol. Exp. APl. 1999. V. 92. Р. 137.

49 Teal P.E.A., Heath R.R., Dueben B.D., Coffelt J.A., Vick K.W. // J. Chem. Ecol. 1995.V. 21. P. 787.

50 Mudd A. // J. Chem. Ecol. 1985 V. 11. № 51. P. 57.

51 Kuwahara Y., H. Hara S. Ishii, Fukami H. // Agric. Biol. Chem. 1971. V. 35. P. 447.

52Brady U.E. // Life Sciences. 1971.V. 10. P. 797.

53. Zhu J.-W., Ryne C., Unelius C.R., Valeur P.G., Löfstedt C. // Entomol. Exp. APl. 1999. V. 92. Р. 137.